28 novembre 2014
Descriviamo un semplice test colorimetrico quantitativo che misura specificamente l'attività proteolitica del Granzima B (GzmB) umano, di topo o di ratto. Questo protocollo può essere facilmente adattato per determinare l'attività proteasica di altre serina proteasi in granuli mediante l'idrolisi di altri substrati peptidici sintetici con un'appropriata sequenza di riconoscimento.
L'obiettivo generale del seguente esperimento è misurare l'attività proteolitica del granzima ine proteasi B. Ciò si ottiene preparando prima un lisato delle cellule di interesse e quindi aggiungendo rapidamente il substrato ai campioni. L'attività del granzima B viene quindi misurata mediante una reazione colorimetrica. In definitiva, la scissione altamente specifica di alla as s benzo da parte del granzima B può essere valutata in base alla sua specificità di substrato unica per i residui di una parte acida.
Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come il rilevamento dell'espressione della grande zona B mediante PCR o Western blot, è che l'idrolisi del benzile è specifica per la grande zona B e indica anche che la proteasi è attiva. Per preparare la cellula, i lisati isolano prima le cellule NK primarie dalle sospensioni unicellulari della milza da sei neri selvatici di tipo C 57, o controllano i topi privi del gene del granzima B mediante selezione negativa utilizzando kit disponibili in commercio secondo le istruzioni del produttore dopo che le cellule sono state attivate. Lavare la coltura tre volte in PBS alla massima velocità per due o tre secondi, quindi risospendere il pellet contenente un minimo di 5 milioni di cellule NK in 100 microlitri di tampone di lisi Nont P 40 su ghiaccio per 20 minuti.
Quindi centrifugare il lisato in una microcentrifuga per 10 minuti a 15.000 g e trasferire l'agente supino in una provetta nuova. Dopo aver determinato la concentrazione proteica, secondo l'appropriato protocollo disponibile in commercio, conservare lo stato a una concentrazione minima di circa due milligrammi per millilitro a 20 gradi Celsius negativi per eseguire un saggio di attività del grande zima B. Successivamente, diluire un minimo di 100 microgrammi di lisato proteico per campione in cumuli di tampone appena preparati fino a un volume finale di 160 microlitri.
Quindi, utilizzando una pipetta multicanale, caricare 50 microlitri di campione per pozzetto in triplicato in una piastra inferiore a U in vinile da 96 pozzetti. Avendo cura di includere tre pozzetti di controllo solo tampone, aggiungere 100 microlitri di DTNB diluito a ciascuno. Bene, quindi aggiungere rapidamente 50 microlitri di substrato benzoilico di alala chiede s appena diluito a ciascuno dei pozzetti tampone da solo, seguito da eventuali controlli negativi e terminando con i campioni positivi attesi.
Misurare l'attività dell'aase mediante idrolisi dell'alala come benzile in un lettore di micropiastre a una densità ottica di 405 nanometri utilizzando un protocollo di saggio cinetico che effettua 25 letture ogni 15 secondi. Infine, utilizzare il software di lettura delle piastre per calcolare il tasso massimo di scissione del substrato per ciascun pozzetto, quindi trasferire i dati grezzi al software di analisi statistica appropriato utilizzando topi knockout per il gene granzyme. È stato scoperto che il substrato peptidico sintetico alala come benzile è specificamente idrolizzato dal granzima B. Un'ulteriore robusta scissione del substrato sintetico può essere misurata nei lisati cellulari di cellule NK primarie wildtype, ma non nelle cellule NK di animali knockout per granzima B come controllo.
In questo esperimento, l'attività proteolitica del granzima A, che ha una specificità del substrato simile alla tripsina ed è presente nei lisati di entrambi i tipi di cellule, è stata uguale misurata dall'idrolisi del benzile BLT, I-E-P-D-P-N-A è stato utilizzato genericamente per testare l'attività del granzima B in tutte le specie. In questo esperimento rappresentativo, l'analisi delle sequenze di tetra peptidi ha rivelato che il granzima B umano, ma non di topo, può scindersi in modo efficiente dopo la sequenza IEPD, che corrisponde alla sequenza di riconoscimento sia nell'offerta umana che in quella di topo. Al contrario, la diminuzione della quantità di lisato di cellule di leucemia NK umana da 30 microgrammi a 10 microgrammi si traduce ancora in una quantità sufficiente di grammo dell'enzima B per idrolizzare il substrato I-E-P-D-P-N-A.
Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come scegliere il substrato appropriato e i controlli sperimentali per l'analisi in vitro dell'enzima B rosso umano e murino.
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Questo articolo presenta un saggio colorimetrico quantitativo per la misurazione dell'attività proteolitica della Granzima B (GzmB) in campioni umani, di topo o di ratto. Il metodo può essere adattato ad altre proteasi sieriniche dei granuli utilizzando diversi substrati peptidici sintetici.
La misurazione accurata dell'attività proteolitica della Granzima B è essenziale per validare la funzione dei linfociti citotossici nello sviluppo dell'immunoterapia. Questo saggio colorimetrico fornisce un'indicazione diretta e specifica dell'attività della proteasi, consentendo una valutazione meccanicistica del legame al bersaglio e del potenziale pro-apoptotico nei modelli preclinici. La sua compatibilità interspecie supporta la continuità traslazionale dagli studi su roditori alle applicazioni umane.
Il saggio si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio all'ottimizzazione del composto leader, in cui l'attività funzionale della proteasi fornisce informazioni sull'efficacia biologica e sul meccanismo d'azione.