Name: Metodi per studiare il ruolo di regolamentazione dei piccoli RNA ribosomiale e di occupazione Plasmodium falciparum (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 22 s
Description: Scopri metodi per studiare i microRNA eritrocitari nella regolazione post-trascrizionale di Plasmodium falciparum. Questa tecnica combina trasfezione, isolamento di RNA e profilo dei polisomi per analizzare l'occupazione ribosomiale.

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Questa ricerca è stata finanziata dalla Doris Duke Charitable Foundation, dal Burroughs Wellcome Fund, dal NIH R21DK080994, dal fondo per il progetto pilota del Duke Chancellor, dalla Roche Foundation for Anemia Research e dalla Bill and Melinda Gates Foundation. G.L. è supportato da Duke's UPGG e NIH (Grant # 5R01AI090141-03) e K.A.W. dal NSF Graduate Research Fellowship Program.

1: Isolamento di RNA di piccole dimensioni da P. falciparum Durante l&#39;IDC <ol><li> Ottenere i parassiti della malaria nella cultura asessuata 29. NOTA: La dimensione culturale necessaria varierà in base alla applicazione desiderata; tuttavia, una cultura 10 ml al 3-5% parassitemia e 5% ematocrito offre ampio RNA per PCR in tempo reale (RT-PCR). La tecnica è stata inizialmente ottimizzato per le culture asincrone, ma quando si desiderano punti temporali specifici durante il ciclo di infezione, parassiti anello-stage può essere sincronizzato da sincronizzazione sorbitolo entro e non oltre 10-12 ore dopo l&#39;invasione. La sincronizzazione deve essere ripetuta dopo un ciclo (circa 48 ore) 29. </li><li> Cellule infettate Pool insieme (~ 5 x 10 9 RBC al 3-5% parassitemia) e riempire PBS freddo alla parte superiore del tubo e centrifugare a 800 xg per 5 minuti senza freno per far sedimentare le cellule rosse. </li><li> Dopo la centrifugazione, rimuovere il surnatante con cura utilizzando una pipetta di aspirazione, in allegatoa vuoto, in quanto il pellet eritrocitaria è facile da rimuovere. Lavare il pellet ancora una volta con 1x PBS freddo. </li><li> Pellet Risospendere cellulare in freddo 0,15% saponina (in 1x PBS) e posto in ghiaccio per 30 min. </li><li> Cellule centrifugare a 1.500 xg per 12 min a 4 ° C, rimuovere il surnatante (che sarà di colore rosso scuro) e risospendere pellet in PBS freddo. Ripetere questo passaggio ancora una volta. NOTA: Al fine di garantire che i microRNA presenti erano riflettente dei microRNA all&#39;interno di parassiti, e non la contaminazione eritrocitaria, una serie di condizioni di isolamento di parassiti sono stati testati: 1) saponina lisi, 2) saponina lisi combinata con trattamento RNaseA dei miRNA cellula ospite e 3 ) metil-beta-ciclodestrina trattamento per rimuovere il parassita dal eritrociti host. Tutti i trattamenti hanno dato risultati simili. </li><li> Lyse il parassita pellet isolato utilizzando la raccomandata 600 ml di tampone di lisi. Questo volume di tampone di lisi è sufficiente per culture fino a ~ 30 ml a 2% e 5% ematocrito parassitemia. NOTA: Per le culture parassita più grandi, questo volume può essere aumentato. È importante garantire la completa lisi del pellet parassita nel vortex approfondita per almeno 1 min. Inoltre, per facilità di estrazione, i campioni lisati possono essere trasferiti in una provetta da 1,7 ml microcentrifuga. </li><li> Aggiungere 60 microlitri, o 1/10 volume del tampone di lisi utilizzato nel passaggio 6, di additivo omogenato (acetato di sodio 2 M, pH 4). </li><li> Lasciare i campioni in ghiaccio per 10 minuti. </li><li> Aggiungere 600 microlitri, o un volume uguale alla quantità di tampone di lisi aggiunto nel passaggio 6, di acido fenolo cloroformio a ciascun campione e vortex per 1 min. </li><li> Separate le fasi acquosa ed organica mediante centrifugazione dei campioni a 10.000 xg per 5 min. Questa rotazione è più lungo di quello proposto dal kit per assicurare che tutte emoglobina / emozoina è nella fase organica. </li><li> Raccogliere il (acquosa) strato superiore e trasferirlo in una nuova provetta. Ripetere i passaggi 9 e 10 se la fase acquosa è bianco o (più probabilmente) di colore marrone, che suggerisce proTEIN contaminazione. </li><li> Determinare il volume del supernatante risultante dalla pipetta e quindi aggiungere 1,25 volumi di etanolo 100% (~ 800 microlitri) e miscelare invertendo la provetta 1,7 ml 5 volte. </li><li> Passare ogni campione attraverso una cartuccia filtro RNA associazione fornito (diversi diversi dei quali sono disponibili in commercio) da una centrifugazione a 14.000 xg per 1 minuto o utilizzando un collettore sotto vuoto. </li><li> Lavare la cartuccia filtrante con 700 ml di miRNA Wash Buffer 1 utilizzando una microcentrifuga, spinning a 14000 g per 1 min. </li><li> Lavare la cartuccia filtrante con 500 microlitri di tampone di lavaggio 2/3 volte per centrifugazione a 14.000 xg per 1 minuto ciascuno. </li><li> Eluire RNA con 100 microlitri DEPC in acqua, che è stato preriscaldato a 95 ° C, in due lavaggi di 50 microlitri, centrifugazione a 14.000 xg per 1 minuto ciascuno. Misurare la concentrazione di RNA tramite assorbimento UV a 260 nm. NOTA: Un gel di RNA (o TBE-urea acrilamide o denaturazione gel di agarosio formaldeide) può be utilizzato per valutare la distribuzione delle dimensioni delle RNA isolati. NOTA: Questo RNA è adatto per l&#39;analisi mediante microarray, RNA-sequenziamento, macchia settentrionale e del test di protezione della ribonucleasi. </li></ol> 2: Quantificazione degli RNA di piccole dimensioni da P. falciparum Durante l&#39;IDC <ol><li> Determinare la concentrazione di singoli campioni isolati al punto 1 mediante spettrofotometria UV a 260 nm. </li><li> Generare primer PCR in tempo reale per le specie di RNA desiderati. Per miRNA da solo, abbiamo usato miRNA premade saggi qPCR, mentre per mRNA o fusione miRNA-mRNA abbiamo progettato primer per SYBR green. Per gli RNA di fusione, il primer forward era sequenza miRNA stesso (miR-451: AAACCGTTACCATTACTGAGTT), mentre il contrario era un gene-specifico Primer ~ 100 bp a valle del miRNA nella sequenza mRNA (PKA-R: ATCGAACATGCTGTGAACAT). </li><li> Effettuare cDNA dai campioni di RNA utilizzando sia un primer tornante per miRNA (utilizzare 20-40 ng di RNA) da solo o esameri casuali per mRNA e / o miRNASpecie -mRNA fusione (con 1 mg di RNA). Mescolare RNA e primers per 5 min a 65 ° C, poi raffreddare a temperatura ambiente. In seguito, aggiungere mix trascrittasi inversa (0,5 microlitri trascrittasi inversa, inibitori 0,5 microlitri RNasi, 1 dNTP microlitri (2,5 mm ciascuno), 4 pl 5x tampone, 2 microlitri 0.1M DTT, 1 ml H 2 O). <ol><li> Campioni eseguito su un termociclatore in grado di rilevare sia SYBR sonde verde o TaqMan. SYBR green quantitativa PCR 30 per geni specifici è stato eseguito come un 3-step PCR, 95 ° C per 15 sec, disponibilità temperatura di ricottura Primer meno 5 ° C per 30 sec e 68 ° C per 30 sec per 40 cicli, utilizzando un SYBR commerciale master mix verde. miRNA PCR in tempo reale è stato eseguito come due fasi PCR, 95 ° C per 15 sec e 60 ° C per 1 min per 40 cicli. </li><li> Quantificare test utilizzando il metodo ΔΔCt e normalizzare contro sia Rab GTPasi (PF08_0110) o 18S rRNA 31. </li></ol></li></ol> 3: Introduzionedi piccoli RNA in Malaria Parassiti <ol><li> Pellet 300 ml di globuli rossi per trasfezione (250 ml di globuli rossi, circa 1.5 x 10 9 cellule, in ultima analisi, da utilizzare) nei media malaria completo per centrifugazione a 800 xg per 5 minuti a freno 1. </li><li> Lavare gli eritrociti due volte con RPMI e risospendere in cytomix completa (120 mM KCl; 0,15 mm CaCl 2; 10 mm K 2 HPO 4 / KH 2 PO 4, pH 7,6; 25 mM HEPES, pH 7,6; 2 mM EGTA, pH 7,6; 5 mM MgCl 2; pH regolato con KOH) al 50% di ematocrito dopo centrifugazione a 800 xg per 5 min a freno 1. </li><li> Trasferire le cellule di un 0,2 cm elettroporazione cuvetta. </li><li> Aggiungere 10 mg, o adeguate quantità, di oligonucleotidi sintetici personalizzato alle cuvette e sospendere nuovamente le culture. </li><li> Regolare il elettroporatore a 310 V / 950 uF e fornire un impulso per ogni provetta. </li><li> Risospendere le 300 ml di globuli rossi all&#39;interno della cuvetta in pre-riscaldato mal completoAria supporti e piastra in piastre da 24 pozzetti e incubare a 37 ° C in un contenitore ermetico con miscela di gas del sangue malaria (3% O 2, 5% CO 2). </li><li> Dopo 4 ore, di infettare i globuli rossi trasfettate con trofozoiti fine sincronizzati ad una parassitemia finale di circa 1%. </li><li> Aggiungere globuli rossi appena trasfezionati ogni 4-6 giorni a culture infette e determinare la parassitemia% da FACS utilizzando YoYo-1 colorazione, come indicato al punto 4. </li></ol> 4: Determinazione della eritrociti microRNA effetto su Parasite infezione Tasso <ol><li> Prendete 100 ml di cultura risospeso di micropipettatore e posto in una provetta da 1,7 ml microcentrifuga. Lavare due volte con 1 ml di PBS 1x e centrifugare in una microcentrifuga da tavolo per centrifugazione a 800 xg per 5 min. </li><li> Risospendere pellet in 1 ml di 0,025% glutaraldeide. Incubare i campioni per 20 minuti a RT. NOTA: i campioni possono essere conservati qui per diverse settimane a 4 ° C. In seguito, il pellet infetto RJacket per centrifugazione a 800 xg per 5 min. Lavare due volte con 1 ml di PBS 1x. </li><li> Risospendere pellet in 1 ml di 0,015% saponina. Incubare a 4 ° C per 15 min. Pellet infettato globuli rossi mediante centrifugazione a 800 xg per 5 min. Lavare due volte con 1 ml di PBS 1x. Repeat.4.3. Risospendere le cellule in 1 ml di 1x PBS contenente 1 ml (1,000X) macchia del DNA. </li><li> Determinare i gradi di parassitemia su un citofluorimetro, a 488 nm di eccitazione e ~ 530 nm (FL-1) emissioni. </li><li> In primo luogo, porta il citofluorimetro basata sulla FSC e SSC di concentrarsi su globuli rossi. Quindi misurare i gradi di parassitemia (globuli rossi infetti) nel RBC gated per fluorescenza nel canale FL-1. NOTA: dopo i parassiti stadio sono 10 volte più fluorescente di precedenti parassiti palcoscenico, e ~ 100X sopra globuli rossi infetti. Inoltre, la raccolta a bassa velocità tende a ridurre il rumore. Infine, questo approccio è stato paragonato a 3 H-ipoxantina incorporazione e Giemsa, sia come riportato in precedenza 13, e tutte le tecniche gavdi e risultati simili. </li></ol> 5: biotina-tagging e eluizione di miRNA-mRNA Fusion Prodotti <ol><li> Direttamente ordinare oligonucleotidi sintetici personalizzato RNA con desthiobiotin (DB-) covalentemente legati alla fine del 5 &#39;. </li><li> Trasfettare globuli rossi infetti con Desthiobiotin-coniugata (DB-) miRNA e non modificato miRNA (controllo negativo), come indicato al punto 3. </li><li> Infettare globuli rossi transfettate con P. falciparum parassiti ad una parassitemia iniziale di 0,5% (punto 1.1). </li><li> Estrarre l&#39;RNA parassita 4 giorni (96 ore), più tardi, come descritto in precedenza al punto 1. </li><li> Incubare 10 mg di parassita di RNA con 50 ml confezionati perline streptavidina, ha aggiunto tramite micropipetta, e ruotare su un rotatore provetta per 1 ora a 4 ° C. </li><li> Pellet le perline a 800 xg per 30 secondi e lavare con 20 mM KCl e 1 / 1.000 RNase Inhibitor. </li><li> Eluire RNA dalle perline di concorrenza con biotina 2 mm e 200 microlitri di buffer RNA cattura di eluizione (20 mM KCl, 1/1, 000 RNase Inhibitor e 2 mm biotina) a 4 ° C durante la notte con rotazione. </li><li> Determinare il grado di arricchimento indicato P. trascrizioni falciparum con SYBR green qRT-PCR, e microRNA arricchimento (controllo positivo) per TaqMan qPCR come indicato al punto 2. </li></ol> 6: Separazione polysome determinare la ribosomiale Occupazione di P. falciparum <ol><li> Posizionare soluzione di saccarosio 5 ml di 15% (400 acetato mM di potassio, HEPES potassio 25 mM, pH 7,2, 15 mM di acetato di magnesio, 200 mM cicloeximide, 1 mM DTT, 1 mM PMSF, 40 U / ml RNase Inhibitor, e il 15% di saccarosio ) in un tubo ultracentrifuga SW41 (14 x 89 mm). </li><li> Usando una siringa da 5 ml, aggiungere la soluzione di saccarosio 5 ml di 50% (400 acetato mM di potassio, HEPES potassio 25 mM, pH 7,2, 15 mM di acetato di magnesio, 200 mM cicloeximide, 1 mM DTT, 1 mM PMSF, 40 U / ml RNasi Inhibitor, e il 50% di saccarosio) sotto il saccarosio del 15% con un lungo ago di acciaio, quindi rimuovere l&#39;ago. </li><li&gt; sigillare la parte superiore del tubo di gradiente con Parafilm, inclinare il tubo lentamente su un lato, in una posizione stabile per evitare di rotolamento, quindi è in posizione orizzontale sul tavolo. Mantenere il tubo su un lato per almeno 2 ore. Durante l&#39;attesa, iniziare dal passaggio 6.5. </li><li> Dopo 2 ore, lentamente inclinare il tubo schiena dritta e trasferire il tubo di ghiaccio, lasciato raffreddare per almeno 15 minuti prima di assaggiare carico (punto 14). </li><li> Raccogliere abbastanza Plasmodium sangue -infected cultura fase di generare 100-500 mg di RNA totale, ovvero circa un 100 ml cultura asincrono al 3-5% parassitemia. Aggiungere 1/10 quel volume di terreno di coltura contenente 10x (2 mM) cicloeximide (CHX) e incubare a 37 ° C per 10 min. <ol><li> Culture pellet per centrifugazione a 500 xg per 7 minuti con la centrifuga (freno 1), poi lavare due volte con temperatura ambiente PBS 1x contenente 200 mM CHX. Risospendere le culture parassita in 1x PBS contenente 200 mM CHX e memorizzare sul ghiaccio. </li></ol></li&gt; <li> Stima il volume del pellet RBC. Aggiungere tampone di lisi (400 potassio acetato mM, HEPES potassio 25 mM, pH 7,2, 15 mM di acetato di magnesio, 200 mM CHX, 1 mM DTT, 1 mM PMSF, 40 U / ml RNase Inhibitor, 1% (v / v) IGEPAL CA -630, e 0,5% (w / v) DOC) al pellet RBC ad un volume finale di 4,25 ml. Incubare il lisato a 4 ° C per 10 minuti durante la rotazione. </li><li> Trasferire il lisato di tubi microcentrifuga, e poi centrifugare i campioni in una microcentrifuga a 16.000 xg e 4 ° C per 10 min. </li><li> Preparare cuscini saccarosio pipettando 1,25 ml di soluzione di cuscino di saccarosio freddo 0,5 M (400 acetato mM di potassio, HEPES potassio 25 mM, pH 7,2, 15 mM di acetato di magnesio, 200 mM cicloeximide, 1 mM DTT, 1 mM PMSF, 40 U / ml RNasi Inhibitor, e 0,5 M saccarosio) in un tubo ultracentrifuga SW55 (13 x 51 mm). </li><li> Strato cautela 3,75 ml di lisato surnatante (dal punto 7) sulla parte superiore del cuscino di saccarosio con una siringa e piccolo (~ 27) gauge. Store il lisato rimanente (~ 500 mL) a -80 ° C per estrarre livelli di RNA totale, come indicato al punto 1. </li><li> Caricare i campioni in un rotore ultracentrifuga, pre-raffreddata a 4 ° C, che può contenere 13,2 ml tubi. Centrifugare i campioni a 366.000 xg e 4 ° C per 146 min. </li><li> Usando una pipetta, trasferire il surnatante in un tubo conico da 15 ml. Conservare il surnatante a -80 ° C per l&#39;RNA isolamento di libero (non legato dai ribosomi) RNA. </li><li> Risospendere il pellet ribosoma in 500 microlitri di tampone di risospensione ribosoma (400 acetato mM di potassio, HEPES potassio 25 mM, pH 7,2, 15 mM di acetato di magnesio, 200 mM cicloeximide, 1 mM DTT, 1 mM PMSF, e 40 U / ml RNase Inhibitor) pipettando per 5 min. </li><li> Centrifugare i campioni in una microcentrifuga a 16.000 xg e 4 &#160; ° C per 10 min. </li><li> Mantenendo il gradiente dal punto # 4 sul ghiaccio, rimuovere il Parafilm, poi strato accuratamente la sospensione ribosoma in cima alla usi gradienteng una siringa e piccolo (~ 27) gauge. </li><li> Caricare il tubo in un rotore ultracentrifuga pre-raffreddata e centrifugare i gradienti caricati 200.000 xg e 4 ° C per 180 min. Quando il giro è completato, negozio centrifugato gradienti a 4 ° C fino al momento di caricare sul frazionatore. </li><li> Caricare un tubo ultracentrifuga vuoto nel frazionatore pendenza (questo può essere un tubo utilizzato in una precedente esecuzione), poi lavare con acqua RNase-free per 5 min a 100 x 10 velocità. </li><li> Durante il lavaggio nel passaggio 6.16, impostare la sensibilità del rivelatore di assorbanza UV. Una buona sensibilità di partenza è di 0,2, ma questo può essere regolato in seguito corre in base al segnale A 254 (che varia in base al numero parassita, ecc). </li><li> Una volta che la sensibilità del rivelatore è impostata, impostare il segnale di riferimento a zero mentre l&#39;acqua scorre attraverso il rivelatore. </li><li> Dopo aver lavato il raccoglitore di frazioni, invertire il flusso di fluido fino a quando le linee sono vuote e quindi remil sobrio il tubo ultracentrifuga vuoto. </li><li> Eseguire soluzione di saccarosio al 60% attraverso la colonna di frazionamento fino a quando non esce l&#39;apparato ago. </li><li> Inserire il tubo contenente il primo gradiente nella parte superiore della camera di caricamento e stringere la guarnizione, facendo attenzione a non serrare eccessivamente. Poi, perforare il fondo del tubo con l&#39;ago. </li><li> Azzerare la velocità di flusso del fluido di 12,5 x 10 (controllato dal controllo della velocità del flusso sulla parte anteriore della pompa), quindi impostare il raccoglitore di frazioni automatizzato per raccogliere 18 sec frazioni (~ 330 microlitri / frazione) in provette da microcentrifuga. </li><li> Inizia in avanti il ​​flusso della soluzione di saccarosio al 60%. </li><li> Quando la prima goccia della soluzione di gradiente cade nella provetta, iniziare immediatamente sia la raccolta di frazioni e la registrazione dal vivo del segnale A 254. </li><li> Una volta che un forte calo si osserva nel segnale A 254, corrispondente alla interfaccia tra le soluzioni di saccarosio 50% e 60%, sia interrompere il flusso del fluido e A 254 </sub&gt; registrazione. </li><li> Conservare le frazioni gradiente a -80 &#160; ° C per un uso successivo. </li><li> Invertire il flusso del fluido a 100 x 10 velocità finché la soluzione di saccarosio al 60% svuota dal tubo ultracentrifuga. </li><li> Se ci sono pendenze aggiuntive per frazionare, rimuovere il tubo ultracentrifuga vuoto dalla camera di caricamento e ricominciare dal punto 6.21. Se sono stati completati tutti i campioni, lavare l&#39;apparecchiatura come è stata eseguita in fasi 6.16 e 6.19. </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno interessi finanziari concorrenti da dichiarare.

HBS è una delle varianti di emoglobina più comuni in aree endemiche malaria, principalmente perché fornisce protezione contro la malaria causata da P. grave falciparum. Le tecniche necessarie per caratterizzare il ruolo di microRNA umano nella regolazione genica di P. falciparum sono dettagliate nel corso di questo manoscritto. Estraendo RNA totale in modo tale da includere tutti i piccoli RNA, ed eseguendo una procedura parassita lisi relativamente semplice, questi RNA fusione potevano essere...

La malaria, causata da parassiti Apicomplexa del genere Plasmodium, è la malattia parassitaria umana più comune, infettando il mondo circa 200 milioni di persone ogni anno e provocando circa 600.000 morti 1. Delle cinque specie di Plasmodium che infettano gli esseri umani, il più rilevante per le malattie umane sono P. falciparum e P. vivax, a causa delle loro distribuzioni diffuse e il potenziale di gravi complicazioni di malaria. Il ciclo di vita del parassita della malaria richiede infezione di zanzare e gli esseri umani sia. Quando una zanzara infetta morde un essere umano, i parassiti viaggiano attraverso il flusso sanguigno al fegato, dove si verifica un primo giro di replica. Dopo la rottura merozoiti dal epatociti ospite, infettano vicine globuli rossi, l&#39;avvio di replica sia asessuata o sessuale. La fase asessuata di replica, che dura 48 ore in P. falciparum, è al centro di questo studio in quanto è sia la fonte della maggior Malsintomi Aria e è facilmente ricapitolate in vitro. Mentre un certo numero di iniziative di salute pubblica, tra cui il miglioramento terapie anti-malarici, hanno in qualche modo ridotto l&#39;impatto della malaria a livello globale, l&#39;emergere continuo di parassiti resistenti ai farmaci rappresenta un problema per gli sforzi di controllo della malaria. Un settore che può suggerire nuovi approcci terapeutici è lo studio su come le varie varianti genetiche conferiscono resistenza alla malaria. Nelle regioni la malaria è endemica, una varietà di polimorfismi eritrocitari sono abbastanza comuni 2,3. Queste mutazioni, con falciforme è forse il più importante, sono spesso associati con notevole resistenza alla insorgenza di infezione malarica sintomatica 4. I meccanismi alla base con cui essi provocano eritrociti di resistere alle infezioni di malaria non sono completamente compresi. Eritrociti parassitato con mutazioni di emoglobina sono soggetti a una maggiore fagocitosi attraverso la rigidità cellulare aumentata e la disidratazione, cheè associato con una diminuzione invasione da parte di P. Plasmodium 5. L&#39;allele HbC colpisce anche l&#39;espressione della proteina sulla superficie degli eritrociti e con il rimodellamento del citoscheletro, inibendo l&#39;ulteriore sviluppo del parassita 6,7. Infine, P. falciparum cresce poco all&#39;interno falce omozigote (HbSS) eritrociti 8,9 in vitro, suggerendo intrinseci fattori eritrocitari di resistenza della malaria. Tuttavia, mentre tutti questi meccanismi sembrano svolgere un ruolo, non spiegano appieno i meccanismi alla base della resistenza falciforme alla malaria. Un potenziale serie di fattori eritrocitari che rimangono poco conosciuta è la grande piscina di miRNA presenti all&#39;interno eritrociti maturi. I microRNA sono piccoli RNA non codificanti, 19-25 nt in termini di dimensioni, che mediano la traduzione e / o la stabilità di mRNA bersaglio per appaiamento delle basi nel 3 &#39;UTR. Essi sono stati implicati nel controllo delle risposte immunitarie di mammiferi, compreso la soppressione oreplicazione del virus F 10, e hanno mostrato di conferire resistenza ai virus delle piante Essi hanno anche dimostrato di regolare i diversi processi eritrocitari, tra cui l&#39;eritropoiesi 11,12 e metabolismo del ferro 13. Precedenti studi identificato una popolazione abbondante e diversificata di miRNA eritrocitari, la cui espressione è stata drammaticamente alterata in HbSS eritrociti 14,15. Poiché eritrociti maturi manca la trascrizione attiva e la traduzione, il ruolo funzionale di questi miRNA eritrocitari rimane poco chiaro. Come si verifica un notevole scambio di materiale tra la cellula ospite e P. falciparum durante il ciclo di sviluppo intraerythrocytic (IDC) 16, è stato ipotizzato che il profilo di miRNA alterato secondo eritrociti HbS può contribuire direttamente alla resistenza della malaria cellule intrinseco. Questi studi infine portato allo sviluppo di una pipeline per isolare, identificare e funzionalmente studiare il ruolo di miRNA umano all&#39;interno malaria parassita, P. falciparum, che ha indicato che questi ospitano / miRNA umani in ultima analisi, in modo covalente fusibile e quindi translationally reprimono trascritti parassita mRNA 17. Questo ha fornito un esempio dei primi cross-specie trascritti chimerici formati da trans-splicing e implica che questa fusione miRNA-mRNA potrebbe essersi verificato in altre specie, tra cui altri parassiti. Tutti mRNA trypanosome sono trans-impiombato con una giunta-capo (SL) per regolare la separazione delle trascrizioni policistronici 18. Poiché P. falciparum manca ortologhi per Dicer / Ago 19,20, è possibile che i miRNA eritrocitari dirottare simile macchinario SL in P. falciparum per integrare nelle geni bersaglio. Recenti studi in P. falciparum hanno infatti indicato la presenza di sequenze 5 &#39;splice capo 21. Dettagli Questo studio i metodi che hanno portato alla scoperta di trascritti di fusione umani-parassita miRNA-mRNA, tra cui sia trascrittomica e TRADUCEzionali tecniche di regolazione. Gli obiettivi generali di questi metodi sono per studiare gli effetti di piccoli RNA nella regolazione genica, fenotipi e la traduzione potenziale di P. trascrizioni falciparum. L&#39;identificazione iniziale di trascritti chimerici umano-parassita invocata l&#39;utilizzo di tecniche di analisi di RNA, come la real-time PCR, il sequenziamento del trascrittoma e la cattura biblioteca EST, che includeva sia totali e piccoli RNA, piuttosto che con tecniche che isolati solo piccoli RNA. Isolando tutto RNA insieme in una grande piscina, piuttosto che separatamente, permesso di individuare i piccoli RNA umani traslocati nel parassita, nonché la presenza di queste piccole sequenze di RNA come parte di una sequenza più ampia. Questo poi ricorso ad analisi dello stato di questi mRNA traduzione fusione per determinare le conseguenze funzionali di tali fusioni. Mentre ampi sforzi sulla caratterizzazione del genoma del parassita und trascrittoma hanno aggiunto alla comprensione della biologia del parassita 22-25, molto meno si sa circa la regolamentazione di traslazione del trascrittoma mRNA attraverso il ciclo di vita di P. falciparum 26. Questa comprensione limitata del proteoma del parassita ha ostacolato sia la comprensione della biologia del parassita e la capacità di identificare nuovi obiettivi per la prossima generazione di terapie contro la malaria. Questo divario nella comprensione della biologia cellulare del parassita ha persistito in gran parte a causa della mancanza di tecniche adeguate per svolgere indagini regolazione traduzionale in P. falciparum. Un recente documento descritto l&#39;uso di footprinting ribosomiale di P. falciparum per determinare lo stato di traduzione globale 21. Una misura ben consolidata del potenziale traslazionale delle trascrizioni è il numero di ribosomi associati determinati da polysome profiling. Tuttavia, quando questa tecnica è applicata a P. falciparum &lt;/ em&gt;, è in grado di recuperare la maggior parte dei polisomi e cattura prevalentemente monosomes. Recentemente, diversi gruppi hanno ottimizzato 27,28 P. Tecniche polysome falciparum di lisi degli eritrociti e parassiti simultaneamente per preservare i polisomi e caratterizzare l&#39;occupazione ribosomiale e il potenziale traslazionale di questi parassiti della malaria durante il loro sviluppo asessuale in ospitanti globuli rossi 28. Collettivamente, questi metodi dimostrano che la fusione osservato di miRNA e parassiti mRNA umani modula traduzione proteine ​​parassita di quelle mRNA di fusione, che è stato dimostrato utilizzando metodi precedentemente riportati 27, ed è un fattore determinante della resistenza della malaria in HBA e HbSS eritrociti 17. Questi metodi potrebbero essere utili in qualsiasi sistema cerca di individuare e funzionalmente esplorare eventi RNA splicing, se tali RNA di fusione sono in P. falciparum o altri sistemi eucariotici.

<table><tbody><tr><td>REAGENTI-Tutti i reagenti devono essere privi di RNAsi.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pirocarbonato di dietil</td><td>Sigma</td><td>D5758</td><td>DEPC</td></tr><tr><td>Acqua trattata con DEPC (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Yoyo-1 Colorante fluorescente DNA</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gene Pulser II elettroporatore</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,2 cm Cuvette</td><td></td><td></td><td></td>per elettroporazione</tr><tr><td>4 M acetato di potassio</td><td>Mallinckrodt</td><td>6700</td><td></td></tr><tr><td>2 M potassio HEPES</td><td>Sigma</td><td>H0527</td><td>pH 7,2</td></tr><tr><td>1 M acetato di magnesio</td><td>Sigma</td><td>M-2545</td><td></td></tr><tr><td>1 M ditiotreitolo</td><td>Research Products International</td><td>D11000</td><td>DTT</td></tr><tr><td>100 mM fenilmetilsolfonato fluoruro</td><td>Sigma</td><td>P7626</td><td>PMSF, disciolto in isopropanolo</td></tr><tr><td>10% (v/v) Igepal CA-630</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I3021</td><td></td></tr><tr><td>10% (p/v) sodio desossicolato</td><td>Sigma</td><td>D-6750</td><td>DOC</td></tr><tr><td>Cicloesimide</td><td>Sigma</td><td>C-7698</td><td>CHX</td></tr><tr><td>Saccarosio</td><td>Mallinckrodt</td><td>8360-04</td><td></td></tr><tr><td>RNAseOUT (Invitrogen, cat. n. 100000840)</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td>100000840</tr><tr><td>RPMI-1640 con L-glutammina</td><td>Cellgro</td><td>10-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>10% AlbuMAX I</td><td>Invitrogen</td><td>11020-039</td><td>p/v in acqua sterile</td></tr><tr><td>Gentamicina</td><td>Gibco</td><td>15750-060</td><td></td></tr><tr><td>HT integratore (100x) (Invitrogen, cat. n. 11067030)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>45% (p/v) saccarosio (Sigma, cat. n. G8769)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 tampone HEPES M (Gibco, n. cat. 15630-080)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x soluzione salina tamponata con fosfato (PBS; Cellgro, cat. n. 2109310CV)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pallone filtrante sottovuoto Corning 500 ml (VWR, n. cat. 430769)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vetrini (VWR, n. cat. 48311-702)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Colorazione Giemsa (50X) (VWR, n. cat. m708-01)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kit di isolamento miRNA mirVana (Ambion, ThermoFisher Scientific).</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5' MiRNA maturo coniugato con biotina (la sequenza varia in base al miRNA di interesse) (Dharmacon)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biotina in polvere (Sigma-Aldrich)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 M Cloruro</td><td></td><td></td><td></td>di potassio</tr><tr><td>Streptavidina Sefarosio High Performance Beads (GE Healthcare)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampone di risospensione ribosomiale (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampone di lisi (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)Soluzione</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>a gradiente di saccarosio al 15% (p/v) (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr>Soluzione <tr><td>a gradiente di saccarosio al 50% (p/v) (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuscino di saccarosio 0,5 M (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)Soluzione</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>di inseguimento di saccarosio al 60% (p/v) (vedi CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Terreni di coltura cellulare di plasmodio (vedere CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buffer di lavaggio per cattura dell'RNA (vedere CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buffer di eluizione dell'RNA (vedere CONFIGURAZIONE DEI REAGENTI</td>)<td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CONFIGURAZIONE REAGENTI</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solutions</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plasmodium terreni di coltura cellulare</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>500 ml RPMI-1640 con L-glutammina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,5 ml gentamicina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 ml integratore</td><td></td><td></td><td></td>HT</tr><tr><td>2,5 ml 45% glucosio</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>25 ml 10% AlbuMAX I</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>12,5 ml 1 M HEPES</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtro sterile con pallone filtrante sottovuoto da 0,2 mm.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>Terreni di coltura cellulare di Plasmodium contenenti 10x CHX</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stessa ricetta dei terreni di coltura cellulare Plasmodium sopra, con l'aggiunta di:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>2 mM cicloesimide</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Il terreno viene preparato normalmente, quindi aggiungere CHX a una concentrazione finale di 2 mM e filtrare.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>1x PBS contenente cicloesimide</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>La cicloesimide viene aggiunta fresca a 1x PBS fino a una concentrazione finale di 200 mM e mantenuta a 4 OC fino all'uso.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampone di risospensione ribosoma</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>400 mM acetato</td><td></td><td></td><td></td>di potassio</tr><tr><td>25 mM HEPES di potassio, pH 7,2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>15 mM acetato</td><td></td><td></td><td></td>di magnesio</tr><tr><td>200 mM cicloesimide (aggiungere fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mM DTT (aggiungere fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mM PMSF (aggiungere fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>40 U/ml RNaseOUT (aggiungere fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>Tampone di lisi</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stessa ricetta del tampone di risospensione ribosomiale sopra, con l'aggiunta di:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1% (v/v) Igepal CA-630</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,5% (p/v) DOC</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><<tr><td>forte>Soluzioni di saccarosio</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stessa ricetta del tampone di risospensione ribosomiale sopra, con l'aggiunta di quantità variabili di saccarosio:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>15% (p/v) di saccarosio per ottenere una soluzione</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>gradiente di saccarosio al 15%50% (p/v) di saccarosio per ottenere una soluzione</td><td></td><td></td><td></td>di gradiente di saccarosio al 50%</tr><tr><td>saccarosio 0,5 M per creare un cuscino</td><td></td><td></td><td></td>di saccarosio 0,5 M</tr><tr><td>Come sopra, è necessario aggiungere fresco cicloesimide, DTT, PMSF e RNaseOUT.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>La soluzione di inseguimento del saccarosio al 60% richiede solo saccarosio e acqua, nessun altro componente</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>60% (p/v) di saccarosio in acqua trattata con DEPC per produrre il 60% di soluzione</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> di inseguimento di saccarosio<tr><td>RNA Capture Wash Buffer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 mM&nbsp; KCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 unità/ml Rnase Out (Invitrogen)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNA Capture Elution Buffer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stessa ricetta del RNA Capture Wash Buffer, con l'aggiunta di:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2 mM Biotina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EQUIPMENT</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>SW55 Rotore per ultracentrifuga Ti (Beckman, n. cat. 342194)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotore per ultracentrifuga SW41 Ti (Beckman, n. cat. 331362)Ultra-Clear</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>TM &frac12; x 2 pollici (13 x 51 mm) per ultracentrifuga SW55 (Beckman, n. cat. 344057)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Poliallomero 9/16 x 3 &frac12; in provette per ultracentrifuga (14 x 89 mm) per SW41 (Beckman, cat. n. 331372)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultracentrifuga L8-80M (Beckman)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ago per siringa smussato in acciaio, 4 pollici, 16 G (Aldrich, cat. n. Z261378)Siringa</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>da 1 ml con 27 G&frac12; ago (Becton Dickinson, cat. n. 309623)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Siringa da 5 ml (Becton Dickinson, cat. n. 309646)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotatore di provette, microcentrifuga end-over-end</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>, refrigerata</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema di frazionamento a gradiente di densità (Teledyne Isco, n. cat. 69-3873-179)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>TracerDAQ (Measurement Computing)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrifuga Eppendorf 5810R</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotore Eppendorf A-4-81 (Eppendorf, n. cat. 022638807)</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

metodi per studiare il ruolo di regolamentazione dei piccoli rna ribosomiale e di occupazione<em&gt; plasmodium falciparum</em

Methods to Investigate the Regulatory Role of Small RNAs and Ribosomal Occupancy of Plasmodium falciparum

La variazione genetica responsabile per l&#39;allele falciforme (HbS) consente eritrociti di resistere alle infezioni da parte del parassita della malaria, P. falciparum. La base molecolare di tale resistenza, che è noto per essere multifattoriale, rimane completamente compresa. Recenti studi hanno trovato che l&#39;espressione differenziale dei microRNA eritrocitari, una volta traslocati in parassiti della malaria, influenza sia regolazione genica e la crescita del parassita. Questi miRNA sono stati successivamente dimostrato di inibire la traduzione dell&#39;mRNA formando un RNA trascritto chimerico con 5 &#39;RNA fusione con sottoinsiemi discreti mRNA parassita. Qui, le tecniche che sono state utilizzate per studiare il ruolo funzionale e putative meccanismo sottostante microRNA eritrocitari sulla regolazione genica e il potenziale di traslazione del P. falciparum, compresa la trasfezione dei microRNA sintetici modificati negli eritrociti di accoglienza, sarà dettagliato. Infine, un metodo polysome gradiente è utilizzato per determinare il grado di Translation di queste trascrizioni. Insieme, queste tecniche hanno permesso di dimostrare che i livelli di microRNA sregolati eritrocitari contribuiscono alla cella-intrinseca resistenza della malaria di eritrociti falciformi.

Profilazione globale di microRNA umana in P. falciparum Le tecniche qui presentate sono stati usati per estrarre microRNAs parassitari in una varietà di condizioni. Una cosa da notare è che le estrazioni di RNA per i globuli rossi infetti sono stati effettuati, come indicato nel 32, che spesso serviva come punto di riferimento per i dati microRNA presentati sia in questo articolo e lo studio originale 29. Tali studi precedenti hanno anche dimostrato ch...

I microRNA umani traslocano dagli eritrociti dell'ospite ai parassiti Plasmodium falciparum. Qui vengono descritte le tecniche utilizzate per trasfettare i microRNA sintetici negli eritrociti dell'ospite e isolare tutti gli RNA da P. falciparum. Inoltre, questo articolo descriverà in dettaglio un metodo di isolamento dei polisomi in P. falciparum per determinare l'occupazione ribosomiale e il potenziale traduzionale dei trascritti dei parassiti.

Metodi per studiare il ruolo di regolamentazione dei piccoli RNA ribosomiale e di occupazione<em&gt; Plasmodium falciparum</em

The genetic variation responsible for the sickle cell allele (HbS) enables erythrocytes to resist infection by the malaria parasite, P. falciparum. The ...

L'obiettivo generale di questa procedura è studiare il ruolo dei microRNA degli eritrociti nella regolazione genica post-trascrizionale dei trascritti di Plasmodium falciparum. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della malaria, ad esempio in che modo gli eventi di splicing dell'RNA con piccoli RNA dell'ospite o del parassita possono influenzare il potenziale traduttivo degli mRNA di fusione. Il vantaggio principale di questa tecnica è la capacità di catturare contemporaneamente RNA totali e piccoli RNA in un unico pool, dimostrando così la presenza di piccoli RNA e RNA di fusione all'interno di una singola cellula.Inoltre, questa procedura utilizza il profilo dei polisomi per mostrare come questi piccoli RNA influenzino la traduzione dei loro prodotti di mRNA di fusione. Per iniziare, effettuare la trasfezione centrifugando 300 microlitri di globuli rossi in mezzo completo per malaria a 800 ×g per cinque minuti. Lavare gli eritrociti due volte con mezzo RPMI e risospendere le cellule in cyto mix completo al 50% di ematocrito.Successivamente, trasferire le cellule in un vete per elettroporazione e aggiungere 10 microgrammi di microRNA DYS marcato con biotina o un microRNA di controllo negativo non coniugato. Per elettroporare le cellule, posizionare il vete in un elettroporatore ed erogare un singolo impulso. Quindi seminare le cellule e infettarle con Plasmodium falciparum dopo quattro ore, come descritto nel protocollo testuale.Quindi aggiungere 50 microlitri di avidina e microsferette impacchettate e desstrippate a 10 microgrammi di RNA parassitario in un tubo microcentrifugeta, e incubare il tubo con rotazione per un'ora a quattro gradi Celsius. Centrifugare le microsferette e il tampone a 800 ×g per 30 secondi, quindi lavare il pellet con 500 microlitri di tampone RNP contenente una diluizione 1:1000 di inibitore dell'RNA. Successivamente, eluire l'RNA dalle microsferette risospendendole in 200 microlitri di RNA.Catturare il tampone di eluizione contenente biotina in eccesso. Incubare le perle tutta la notte a quattro gradi Celsius con rotazione. Quindi centrifugare le perle a 800 ×g per 30 secondi e raccogliere l'RNA del soprannatante.È fondamentale eluire con un eccesso di biotina e utilizzare la quantità minima di streptavidina e perle per garantire un'eluzione specifica corretta. Ciò riduce l'arricchimento di RNA di fondo. Infine, determinare il grado di arricchimento dei trascritti di P falciparum e dell'arricchimento di microRNA mediante R-T-P-C-R quantitativa come descritto nel protocollo testuale per iniziare la separazione dei polisomi.Posizionare prima cinque millilitri di una soluzione di saccarosio al 50% in un tubo per ultracentrifuga. Quindi, stratificare con attenzione cinque millilitri di una soluzione di saccarosio al 15% sopra la soluzione al 50%. Successivamente, sigillare il tubo del gradiente con perfil e inclinare con cura il tubo fino a farlo adagiare in posizione orizzontale sul piano del bancone.Assicurarsi che il tubo sia in una posizione stabile per evitare rotolamento. Mantenere il tubo in questa posizione per almeno due ore per permettere la formazione del gradiente. Nel frattempo, raccogliere circa 100 millilitri di una coltura asincrona di sangue infetto da plasmodio con una parasitemia del 3-5%.Quindi aggiungere 10 millilitri di mezzo di coltura contenente due millimoli di cyclo, heide, e incubare a 37 gradi Celsius per 10 minuti. Successivamente, centrifugare le cellule a 500 ×g per sette minuti e quindi lavarle due volte con 80 millilitri di PBS contenente 200 micromoli di cyclo heide resus. Sospendere il pellet in PBS con cicloesamide e posizionarlo sul ghiaccio.Centrifugare le cellule e rimuovere il soprannatante per stimare il volume del pellet. Quindi lisare le cellule in un volume finale di 4,25 millilitri di buffer di lisi e incubare per 10 minuti a quattro gradi Celsius con rotazione. Tentativi precedenti di profilazione dei polisomi in specie parassite malariche hanno rivelato prevalentemente monosomi, poiché una lisi troppo intensa porta alla disgregazione dei polisomi in monozoni.Qui utilizziamo un buffer di lisi che lisa contemporaneamente gli eritrociti e i parassiti per preservare il profilo dei polisomi di Plasmodium falciparum. Trasferire il lisato in provette da microcentrifuga e centrifugare a 16.000 × g a quattro gradi Celsius per 10 minuti. In una provetta separata da ultracentrifuga da cinque millilitri precedentemente raffreddata, aggiungere 1,25 millilitri di soluzione fredda a tampone di saccarosio 0,5 M utilizzando una siringa con ago da 27 gauge. Sovrapporre con attenzione 3,75 millilitri del sopranatante del lisato sopra il cuscinetto di saccarosio.Centrifugare il campione a 366.000 ×g a quattro gradi Celsius per 146 minuti. Nel frattempo, riportare lentamente il tubo per ultracentrifuga con gradiente di saccarosio in posizione verticale e lasciarlo in piedi sul ghiaccio per almeno 15 minuti. Dopo aver rimosso il lisato dall'ultracentrifuga, raccogliere con attenzione il soprannatante in un tubo conico da 15 millilitri.Conservare il surnatante a meno 80 gradi Celsius per preservare la frazione di RNA non legata ai ribosomi. Successivamente, risospendere il pellet di ribosomi in 500 microlitri di Resus suspension, tamponando per cinque minuti per mescolare e centrifugare il campione a 16.000 ×g a quattro gradi Celsius per 10 minuti. Per rimuovere il materiale insolubile, rimuovere con attenzione il sigillo param sul tubo del gradiente per evitare di disturbare il gradiente, quindi stratificare la sospensione ribosomiale in alto utilizzando una siringa e un ago da 27 gauge.Dopo aver centrifugato il tubo a 200.000 ×g a quattro gradi Celsius per 180 minuti, conservare i gradienti a quattro gradi Celsius fino al momento del caricamento sul frazionatore. Inserire un tubo per ultracentrifuga vuoto nel frazionatore di gradienti e lavare il sistema con acqua priva di RNA per cinque minuti. Durante il lavaggio, impostare la sensibilità del rivelatore di assorbanza UV a 254 nanometri su 0,2.Sebbene ciò possa richiedere aggiustamenti a seconda del segnale. Successivamente, impostare il segnale di base a zero mentre l'acqua scorre attraverso il rivelatore. Dopo aver lavato il collettore, invertire il flusso del fluido attraverso il frazionatore per svuotare i tubi e quindi rimuovere il tubo per ultracentrifuga vuoto.Fare passare una soluzione al 60% di saccarosio attraverso il FRACTIONATOR fino a quando non esce dall'apparato a siringa. Quindi posizionare il tubo a gradiente caricato in cima alla camera di caricamento e stringere la guarnizione. Forare la parte inferiore del tubo con l'ago.Quindi reimpostare la velocità di flusso del frazionatore a 12,5 per 10 e raccogliere frazioni di 18 secondi in provette per microcentrifuga. Avviare il flusso in avanti della soluzione di saccarosio al 60% per eluire le frazioni prima che la prima goccia della soluzione a gradiente entri in una provetta per microcentrifuga. Iniziare contemporaneamente la raccolta e la registrazione in tempo reale dell'assorbanza a 254 nanometri.Quando il segnale assorbente diminuisce bruscamente all'interfaccia tra la soluzione di saccarosio al 50% e quella al 60%, arrestare il flusso e la registrazione. Conservare le frazioni del gradiente a meno 80 gradi Celsius. Invertire quindi il flusso del liquido fino a quando la soluzione al 60% non si è completamente svuotata dal tubo dell'ultracentrifuga.Rimuovere il tubo e iniziare l'analisi del gradiente successivo. La trasfezione di globuli rossi con microRNA 4 5 1, seguita dal recupero degli ibridi di micro NA mRNA biotinilati, ha rivelato un arricchimento dei trascritti di fusione PKAR. La trasfezione con micro RNA di controllo (mock) o non correlato non ha arricchito il trascritto PKAR.I dati mostrano i picchi di elucian delle subunità ribosomiali di 40 s e 60 s, del ribosoma DS e delle frazioni di polisoma contenenti il numero indicato di ribosomi. I ribosomi erano associati ai trascritti isolati dal PCI presenti all'interno dei globuli rossi. L'analisi del sangue settentrionale ha dimostrato che i ribosomi e il polisoma erano associati all'RNA 18 S e all'RNA 28 S.Insieme a questo procedimento, possono essere eseguiti altri metodi come la digestione con RNasi H, i saggi di protezione da ribonucleasi e il northern blotting, al fine di ulteriormente confermare la presenza di fusioni tra microRNA e MR.NA. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come trasfettare microRNA negli eritrociti e successivamente isolare gli RNA piccoli con l'RNA totale, inclusi i trascritti chimera. Si dovrebbe inoltre essere in grado di recuperare i polisomi per determinare il carico ribosomiale e quindi il potenziale traduttivo di questi trascritti di fusione.

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Metodi per studiare il ruolo di regolamentazione dei piccoli RNA ribosomiale e di occupazione

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