Name: Da un prodotto naturale al suo grappolo Biosynthetic Gene: Una dimostrazione che utilizzino Polyketomycin da Streptomyces diastatochromogenes Tü6028 (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 8 s
Description: Scopri come identificare prodotti naturali antibiotici e determinare i cluster genici biosintetici mediante genome mining. Questo metodo utilizza ceppi di Streptomyces per accelerare la scoperta di nuovi antibiotici.

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S. Zhang è finanziato dal China Scholarship Council. Gli autori sono molto grati alle ex persone che lavorano al progetto sulla polichetomicina in questo laboratorio e al Prof. Dr. Hans-Peter Fiedler, Università di Tubinga, per aver fornito il produttore di polichetomicina. La ricerca è stata sostenuta dal DFG (RTG 1976).

1. Identificazione di un prodotto naturale con proprietà antibiotico <ol><li> Coltivare un microrganismo in condizioni diverse (ad esempio, tempo, temperatura, pH, media) in seguito alla "OSMAC (un ceppo-molti composti) approccio" 13. Selezionare un mezzo in cui si osserva la produzione di un composto. </li><li> Coltivare Streptomyces diastatochromogenes Tü6028 nelle seguenti condizioni <ol><li> Grow Streptomyces diastatochromogenes ceppo Tü6026 su piastre MS (farina di soia 20 g, D-mannitolo 20 g, MgCl 2 a 10 mm, agar 1,5%, l'acqua del rubinetto 1 L). Seminare un piccolo anello delle spore di questo ceppo in 20 ml di media TSB liquido (Tryptic Soy brodo 30 g, l'acqua del rubinetto 1 L, pH 7,2; media precoltura) in una beuta con una spirale. Agitare il recipiente su un agitatore rotante (28 ° C, 180 rpm, 2 giorni). </li><li> Seminare la cultura principale a 100 ml di mezzo HA (glucosio 4 g, estratto di lievito 4 g, maltoestrarre 10 g, acqua di rubinetto 1 L, pH 7.2) con 2 mL di precoltura. Culture ceppo a 28 ° C per 6 giorni su un agitatore rotante a 180 rpm. </li></ol></li><li> Preparazione dell'estratto grezzo <ol><li> Celle di raccolta mediante centrifugazione (10 min, 3000 XG). </li><li> Per passi successivi gestire solventi organici sotto una cappa aspirante. </li><li> Per l'estrazione composto dal micelio, risospendere le cellule in un duplice volume di acetone e agitare con un tubo per 30 min, 180 rpm. Filtrare il liquido attraverso carta da filtro commerciale e si evapora l'acetone da evaporatore rotante a 40 ° C e 550 bar. Sciogliere l'estratto in 20 mL di acqua: acetato di etile (1: 1) e agitare in un imbuto separatore per 30 min a 180 rpm. </li><li> Per l'estrazione composti dal mezzo di coltura, regolare il brodo di coltura a pH 4,0 mediante aggiunta di 1 M HCl. Aggiungere 100 mL di acetato di etile e agitarla in un imbuto separatore per 30 min, 180 giri al minuto. </li><li> Raccogliere fase di acetato di etile e far evaporare da marciume evaporazione ary a 40 ° C e 240 bar. </li></ol></li><li> Analisi dell'estratto grezzo mediante HPLC <ol><li> Sciogliere gli estratti in 1 ml MeOH, filtrarli attraverso un filtro con 0,45 micron pori ed eseguire la cromatografia liquida ad alta prestazione (HPLC) 14. </li><li> Nel caso di polyketomycin, dotare il sistema HPLC con una precolonna C18 (4,6 x 20 mm 2) ed una colonna C18 (4,6 x 100 mm 2). Utilizzare un gradiente lineare di acetonitrile + 0,5% di acido acetico che vanno dal 20% al 95% in H (portata: 0,5 mL min -1) acetico 2 O + 0,5%. NOTA: Polyketomycin ha un tempo di ritenzione 25,9 min (vedere Figura 1A). Lo spettro UV / vis ha massimi a 242 nm, 282 nm, 446 nm e minimi a 262 nm e 359 nm (vedere Figura 1B). Nel modus negativo una massa di 863,2 [MH] - è rilevabile (vedi Figura 1C). </li></ol></li></ol>"Src =" / files / ftp_upload / 54952 / 54952fig1.jpg "/&gt; Figura 1: LC / MS Analisi Polyketomycin. (A) HPLC cromatogramma (λ = 430 nm) dell'estratto grezzo dopo coltura di Streptomyces diastatochromogenes Tü6028 per 6 giorni. Polyketomycin ha un tempo di ritenzione 25,9 min (B) UV / vis spettri di Polyketomycin. (C) Massa spettri Polyketomycin nel modus negativo. Picco principale con m / z 863,2 [MH] -. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="5"><li> Identificazione della attività antibiotica mediante saggio disco diffusion <ol><li> Seminare i ceppi di test come Gram-positivi subtilis batteri Bacillus (in terreno LB; LB 20 g, l'acqua del rubinetto 1 L, pH 7,4) e altri ceppi Streptomyces (in media TSB; brodo di soia trittico 30 g, l'acqua del rubinetto 1 L, pH 7.2), Batteri Gram-negativi Escherichia coli (in terreno LB) e ceppi fungini (in media come mezzo YPD; estratto di lievito 10 g, 20 g peptone, glucosio 20 g, rubinetto 1 L, pH 7,4). Prendete 100 ml di prova ceppo precoltura e diffonderli su rispettive piastre di agar. </li><li> Sciogliere l'estratto grezzo o composto purificato in 500 ml di metanolo (in alternativa acqua o DMSO) e pipetta 20-50 microlitri su dischi di carta sterili. dischi di carta a secco per 30 minuti sotto il banco di lavoro e metterle sulle piastre con colture di prova. Preparare un controllo negativo (solvente) e un controllo positivo (antibiotici, per esempio AMP [1 mg]). </li><li> Incubare le piastre in condizioni adeguate fino a quando i ceppi di test sono cresciuti visibilmente e determinare la zona di inibizione, se apparente. Incubare E. coli e Bacillus sp. a 37 ° C per 16 h, Streptomyces sp. a 28 ° C per 2-4 giorni, ceppo fungino (prevalentemente a carico esatto ceppo di prova) unat 30 ° C per 2 giorni). </li></ol></li></ol> 2. Large Scale di estrazione, purificazione e struttura chiarimento del Compound <ol><li> Coltivare S. diastatochromogenes in media 5 L HA (glucosio 4 g, estratto di lievito 4 g, estratti di malto 10 g, l'acqua del rubinetto 1 L, pH 7,2). Seminare 2 ml del precoltura a 30 x 500 ml Erlenmeyer palloni contenenti 150 ml HA media. Incubare la deformazione a 28 ° C per 6 giorni su un agitatore rotante a 180 rpm. </li><li> Celle di raccolta mediante centrifugazione (10 min, 15.000 XG, RT) ei composti estratto utilizzando acetato di etile (vedere paragrafo 1.3). </li></ol><img alt="figura 2" src="/files/ftp_upload/54952/54952fig2.jpg"> Figura 2: Flusso di lavoro per la struttura chiarimento. Il procedimento comprende (1) la coltivazione del ceppo, (2) estrazione, (3) la purificazione mediante estrazione in fase solida (SPE), cromatografia su strato sottile (TLC), cromatografia liquida preparativa ad alta prestazione (HPLC), dimensionecromatografia di esclusione (SEC) e (4) Struttura delucidazione mediante analisi di massa (MS), la risonanza magnetica nucleare (NMR) e le misure X-ray. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="3"><li> Purificazione di Polyketomycin NOTA: Il processo di purificazione e struttura delucidazione è mostrata in figura 2. <ol><li> Frazionare estratto grezzo da una colonna di estrazione in fase solida C18 (SPE) utilizzando un gradiente di -stepwise MeOH 10% dal 30% al 100% MeOH in H 2 O, 100 mL per ogni condizione. </li><li> Purificare la frazione compound contenente ulteriormente mediante cromatografia preparativa su strato sottile (TLC) 15 usando CH 2 Cl 2 / MeOH (7: 1) come sistema di eluizione. </li><li> Purificare il composto mediante HPLC preparativo 16. Dotare il sistema HPLC con una precolonna C18 (5 micron; 9,4 x 20 mm) e uncolonna principale (5 micron; 9,4 x 150 mm). Utilizzare un gradiente di acido acetico acetonitrile + 0,5% dal 20% al 95% in acido acetico H 2 O + 0,5% (portata: 2,0 mL / min). </li><li> Per rimuovere solventi e altre piccole impurità, eseguire un ultimo passo purificazione mediante cromatografia ad esclusione sterica utilizzando una colonna in MeOH 17. Raccogliere il composto puro finale ed evaporare MeOH per evaporazione rotante a 40 ° C e 240 bar. </li></ol></li><li> struttura delucidazione <ol><li> Sciogliere il composto puro (più di 2 mg) in 600-700 ml (a seconda della macchina) di DMSO d 6, registrare 1D NMR (1 H, 13 C) e 2D NMR (HSQC, HMBC, 1 H 1 H COSY) spettri su uno spettrometro NMR 18. Esprimere spostamenti chimici nei valori δ (ppm) utilizzando DMSO d 6. </li><li> Registrare un spettro di massa ad alta risoluzione (HRESI-MS) 19 di polyketomycin con una ad alta risoluzionespettrometro di massa. </li><li> Chiarire la struttura per l'interpretazione dei risultati di analisi dati NMR e MS 10. </li></ol></li></ol> 3. Proporre Biosynthetic modello della nuova composto isolato <ol><li> Analizzare la struttura del composto isolato e predire enzimi, che possono essere coinvolti nella biosintesi. Assegnarli a Polichetide (tipo I, II o III), sintesi di peptidi non ribosomiale, lantipeptide, terpenoid, o zucchero metabolismo percorso 8. </li><li> esempio polyketomycin <ol><li> Suddividere la struttura in evidenti singole frazioni: frazione tetraciclici, due monosaccaridi e l'acido salicilico dimetil. </li><li> Scopri, dove le frazioni possono essere derivate da: La porzione tetraciclici potrebbe essere derivato da un tipo polyketide sintasi II e la frazione dimetil acido salicilico potrebbe essere derivato da un iterativo Polichetide tipo sintetasi I. Le due frazioni di zucchero, che sono 6-deoxysugars , potrebbe essere SynthesiZed dal glucosio che coinvolge un TDP-glucosio-4,6-dehydratase durante la biosintesi e fissato probabilmente da due glicosiltransferasi (vedi figura 3) 8. </li><li> Prevedere geni putativi del cluster. Si pensi enzimi coinvolti nella sintesi delle singole porzioni, nel collegare le unità, nonché nel modificare e personalizzare la molecola. Il cluster genico biosintetico di Polyketomycin contiene la maggior parte probabilmente geni che codificano un tipo polyketide sintasi II (quindi almeno un ACP, KS α und KS β per il collegamento di unità di estensione), un iterativo di tipo Polichetide sintasi I (almeno ACP, AT, KS), una TDP-glucosio-4,6-deidratasi (necessario per il passo: il glucosio → deossiglucosio) e due glicosiltransferasi (allegando due monomeri di zucchero verso l'aglicone) 8. </li></ol></li></ol><img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54952/54952fig3.jpg"> Figura 3: Struttura di Polyketomycin Dividcato in singoli blocchi di costruzione. Polyketomycin è composto da un decaketid tetraciclici (PKS tipo II) e un acido salicilico dimetil (iterativo PKS tipo I), collegati da due porzioni deossizuccheri β-D-amicetose e α-L-axenose (NDP-glucosio-4,6- dehydratase e due glycosyltransferase richiesto). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig3large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> 4. Genome Sequencing / Mining <ol><li> Generazione sequenziamento di prossima <ol><li> Sequenziare il DNA genomico da tecnologie di sequenziamento di nuova generazione, come Illumina, 454 pyrosequencing o solido 20. Allineare singolo si legge in una sequenza di riferimento o assemblare de novo. NOTA: Il genoma di S. diastatochromogenes Tü6028 è stato sequenziato presso il Centro di Biotecnologie (CeBiTec) presso l'Università di Bielefeld. Tutte le letture sono state assemblate a un progetto di genomadi 7,9 Mb. </li></ol></li><li> genoma mineraria <ol><li> Cerca open reading frame (ORF) per l'uso di, per esempio NCBI Prokaryotic annotazione genomica Pipeline 21,22, RAST (rapida annotazione utilizzando la tecnologia del sottosistema) 23,24,25, Prokka (rapido procariotico annotazione del genoma) 26 o 27 GenDB. Questi programmi propongono anche le loro funzioni. L'analisi del S. diastatochromogenes Tü6028 sequenza del genoma progetto portato all'identificazione di oltre 7.000 ORF. </li><li> Eseguire BLAST specifico (Base locale Allineamento strumento di ricerca) di analisi per ottenere ulteriori informazioni come allineamenti con altri geni simili e domini catalitici 28,29,30. </li><li> Per l'identificazione del gene metabolita eseguire programmi di cluster secondari come antiSMASH 31,32,33, 34 e NaPDoS NRPSpredictor 35,36. Nel progetto genoma di Streptomyces diastatochromogenes antiSMASH 31,32,33 identicato 22 cluster di geni. </li><li> Analizzare i cluster di geni putativi per la loro via enzimatica (s) (Polichetide sintasi (tipo I, II o III), non ribosomiale peptide sintetasi, lanthipeptide, terpenoidi, metabolismo degli zuccheri ...). Ricerca di cluster (s) contenente geni che potrebbero essere coinvolti nella sintesi del composto (vedi punto 3). A S. diastatochromogenes annotata gruppo 2 contiene Polichetide tipo sintasi II geni, tre Polichetide tipo sintasi I geni, un gene TDP-glucosio-4,6-deidratasi e due geni glicosiltransferasi (vedi Figura 4). </li><li> Focus su singoli geni all'interno del cluster. Per PKS tipo I e NRPS la specificità di aciltransferasi e domini adenylation, e quindi l'incorporazione di unità singola diluenti, può essere previsto. confronta anche dell'ordine dell'unità extender incorporato con la molecola. antiSMASH 31,32,33 mostra anche gruppi simili di composti già noti, con un link al database di MIBiG 37. </li> Confrontare la struttura del composto con questi composti e controllare somiglianze. </ol></li></ol><img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/54952/54952fig4.jpg"> Figura 4: Uscita antiSMASH di Polyketomycin Biosynthetic Gene Cluster e panoramica dei altri cluster a S. diastatochromogenes Tü6028. (A) Presentazione di cluster di geni biosintetici previsti nel genoma di S. diastatochromogenes Tü6028; (B) Cluster 2 Polyketomycin cluster di geni biosintetico con i geni mirati. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig4large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> 5. Verifica del Cluster Biosynthetic Gene <ol><li> Ricerca di un gene con funzioni ovvie e importanti (essenziali) per la biosintesi del composto. Per la verifica della polyketomycin gene cluster gene pokPI, che codifica per la α ketosynthase dal tipo PKS II, è stato selezionato e inattivato da un fuori della cornice -deletion (vedi Figura 5B). In alternativa, interrompere il gene clonando un frammento di interno (vedi Figura 5C). </li></ol><img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/54952/54952fig5.jpg"> Figura 5: Verifica di un cluster di geni dal singolo Crossover. (A) gene nativo porta alla definizione di una proteina funzionale; (B) Clonaggio del gene con delezione interna in un vettore suicida conduce ad un singolo incrocio con un conseguente spostamento fotogramma nel gene bersaglio e la conseguente definizione di proteina non funzionale; (C) La clonazione di un frammento interna del gene in un vettore suicida porta ad un troncamento del gene e conseguente definizione di una proteina non funzionale. orit: origine delle transfer; antibiotico R: resistenza agli antibiotici. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig5large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="2"><li> Clonazione del costrutto singolo crossover <ol><li> Amplificare un frammento contenente pokPI mediante PCR 38 con primer pokPI_for e pokPI_rev. </li><li> Prodotto Clone PCR al suicidio vettore pKC1132 39 (apramicina R [50 mg / ml]). Il vettore suicidio non è in grado di replicare nel ceppo Streptomyces e deve integrarsi nel gene bersaglio di ricombinazione omologa per fornire AMP-resistenza così. Trasferire il vettore in E. coli clonazione ospite da shock termico trasformazione 40. </li><li> Isolare il vettore da alcalina lisi 41. </li><li> Digerire il DNA di vettore con un singolo enzima di restrizione taglierina che taglia all'interno del frammento. Il pokPI gene stato digerito con enzima Kpn I. </li><li> Trattare DNA vettore digerito con grande DNA polimerasi I (Klenow) frammento, che ha 5 '→ 3' attività della polimerasi e 3 '→ 5' esonucleasi-attività. Ottundimento delle estremità appiccicose e successiva religation porta alla perdita di quattro basi. Controllare per la perdita di queste basi per la trasformazione passi in E. coli XL1 Blu, raccogliendo singole colonie, isolando il loro DNA plasmide, 41 e analizzare ulteriormente restrizione digestione e sequenziamento. </li></ol></li><li> Coniugazione del singolo incrocio costruire in Streptomyces <ol><li> Trasferire il vettore contenente il gene suicida pokPI (pKC1132_ pokPI del) con delezione in E. coli ET12567 pUZ8002 42 (kanamicina R) da shock termico trasformazione 40. Incubare le cellule in 100 ml di LB mezzi (kanamicina 50 mg mL -1, AMP 50 mg mL -1 </li><li> Mescolare 500 ml di E. coli pUZ8002 pKC1132_ pokPI del con la cultura 500 microlitri di Streptomyces diastatochromogenes (in alternativa utilizzare le spore). Stendere l'impasto su piastre MS (farina di soia 20 g, D-mannitolo 20 g, MgCl 2 a 10 mm, agar 1,5%, l'acqua del rubinetto 1 L). Incubare le piastre per 20 ore a 28 ° C. </li><li> Sovrapposizione ogni piatto con AMP (1,25 mg) e fosfomicina (5 mg) disciolti in 1 ml di acqua e lasciare asciugare. Incubare le piastre per diversi giorni a 28 ° C fino a quando exconjugants sono visibili. </li></ol></li><li> Controllare mutanti singolo di crossover <ol><li> Seminare singoli exconjugants in 20 mL TSB medio (AMP 50 mg mL -1) e incubare a 28 ° C per tre giorni e 180 giri al minuto.</li><li> Isolare il DNA genomico 43 e verificare l'interruzione del gene pokPI mediante PCR. </li><li> Seminare cloni singoli con interruzione del gene verificato e Streptomyces ceppo di tipo selvatico in 100 ml di mezzo HA e incubare per 6 giorni a 28 ° C e 180 giri al minuto. Estrarre il estratto grezzo (vedi paragrafo 1.3). Controllare la produzione di compound mediante analisi HPLC-MS (vedi paragrafo 1.4). Il picco corrispondente nel cromatogramma HPLC e la massa del composto non dovrebbero essere rilevabili più (vedere Figura 6). </li></ol></li></ol><img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/54952/54952fig6.jpg"> Figura 6: Analisi HPLC di S. diastatochromogenes con inattivato pokPI Gene. HPLC cromatogramma (λ = 430 nm) di greggio estratto di S. diastatochromogenes WT (in alto) e ceppo mutante con interrotto pokPI Ge (qui di seguito). Il ceppo mutante non produce polyketomycin più.<a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig6large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

In questo laboratorio una libreria genomica di Streptomyces cosmid diastatochromogenes stato generato e proiettato molti anni fa, causando l&#39;identificazione del gene cluster polyketomycin attraverso un processo estremamente-tempo. Caratterizzazione dei singoli geni fosse possibile utilizzando gene delezioni mirate e analisi dei mutanti risultanti 12. Recentemente, una sequenza progetto genoma di S. diastatochromogenes è stato ottenuto consentendo la rapida identificazione del gene cluster biosintetico polyketomycin. Si potrebbe facilmente rilevare i geni biosintetici, anche se la sequenza progetto genoma contiene ancora molti contigs. Il processo descritto può essere realizzato in pochi mesi. Tuttavia, il procedimento comprende molti passi. gradini singoli possono non riuscire più volte, prevenire la progressione di passi successivi: Il genere Streptomyces è noto per la sua capacità di produrre composti bioattivi. Mentre portano spesso più di 20 bioscluster di geni ynthetic, di solito solo uno o due composti sono prodotti in condizioni di laboratorio. L&#39;applicazione del metodo OSMAC (coltivazione di un ceppo in condizioni diverse) per svegliare cluster di geni silenti non può a volte essere sufficiente. La manipolazione genetica di geni regolatori, come i geni regolatori pleiotropici ADPA 44 e bldA 45,46, è anche un metodo efficace per attivare la produzione di altri metaboliti secondari. Per la spiegazione della struttura del composto, ad esempio mediante analisi NMR, solitamente più di 2 mg di composto purificato è necessario. Pertanto, la fermentazione della cultura più di 10 L è spesso richiesto. Senza un fermentatore che è in grado di mantenere condizioni di ossigeno, pH e temperatura, potrebbe essere difficile in un piccolo laboratorio per gestire questa quantità di coltura e successiva estrazione. Durante la purificazione, il composto può essere cambiata a causa di ossidazione, radiazioni o temperatura.Inoltre, vengono utilizzati i più stadi di purificazione, maggiore è la possibilità di degradazione. Analizzando la struttura del prodotto naturale, ed i cluster nel genoma, a volte non è così facile per identificare il cluster appropriata. In primo luogo, se vi è solo una sequenza progetto genoma una parte del cluster può mancare. In secondo luogo, non tutti i geni che sono necessari per la biosintesi sono nel cluster. In terzo luogo, a volte un cluster è diviso in due parti separate l&#39;una dall&#39;altra da molti kilobasi. In quarto luogo, può essere difficile decidere quale è gene cluster appropriata. In caso di grande tipo PKS I o sistemi PNR, dove è possibile calcolare il numero di unità extender in base al numero di moduli, o addirittura identificare le unità extender singoli mediante analisi dei domini di selezione, risulta facilmente. Tuttavia, nel caso di iterativamente lavorare enzimi la previsione dei composti sintetizzati spesso non è possibile, specialmente se la strain ha più di 40 cluster di geni. In quinto luogo, la natura è molto complessa e piena di composti ancora sconosciute. Spesso la biosintesi è una miscela di percorsi diversi. Se il nuovo composto non è stato ancora identificato, o non connesso ad un altro composto, può essere difficile identificare il cluster, di proporre un modello biosintesi e per provarlo. Una volta che il cluster è identificato, la tecnica singola crossover è un buon metodo e veloce per verificare l&#39;ipotesi. PCR, clonazione in un vettore suicida, coniugazione, selezione di cloni positivi, e test di produzione sono i soli passi necessari. Uno svantaggio di questa tecnica è che l&#39;integrazione del vettore nel cromosoma non è stabile a causa di ulteriori eventi di ricombinazione. Pertanto, al fine di analizzare ulteriormente singoli geni, sono richiesti gene delezioni precise. Anche se può essere difficile da manipolare i ceppi Streptomyces a livello genetico. La procedura descritta può essere assegnato to qualsiasi altro composto prodotto da un ceppo Streptomyces o altro microrganismo. La conoscenza di un cluster di geni di biosintesi ed il suo composto sintetizzato ci offre ulteriori opportunità di modificare già molecole esistenti con l&#39;obiettivo di migliorare per la lotta contro gli agenti patogeni multiresistenti.

Prodotti naturali di piante e microrganismi sono sempre stati una fonte importante per lo sviluppo di farmaci clinica e di ricerca. Il primo antibiotico penicillina è stata scoperta nel 1928 da un fungo da Alexander Fleming 1. Oggi, molti prodotti più naturali sono utilizzati nel trattamento clinico. Un genere noto per la sua capacità di produrre vari tipi di metaboliti secondari con diversi bioattività è Streptomyces. Streptomyces sono batteri Gram-positivi e appartengono alla classe dei Actinobacteria e l&#39;ordine Actinomycetales. Quasi due terzi degli antibiotici clinicamente utilizzati sono derivati da Actinomycetales, soprattutto da Streptomyces, come amfotericina 2, 3 o daptomicina tetraciclina 4. Due premi Nobel sono stati assegnati nel campo della ricerca Streptomyces antibiotico. Il primo è andato a Selman Waksman per la scoperta della streptomicina, la prima di unantibiotica efficace contro la tubercolosi. 5 Nel 2015, come parte del Premio Nobel per la Fisiologia e la Medicina, la scoperta di avermectin da S. avermitilis è stato assegnato pure. Avermectin è usato per il trattamento di malattie parassitarie 6,7. L&#39;approccio tradizionale per la scoperta di prodotti naturali in microrganismi come Streptomyces generalmente coinvolge la coltivazione del ceppo in diverse condizioni di crescita, così come l&#39;estrazione e l&#39;analisi dei metaboliti secondari. Saggi bioattività (es saggi per l&#39;attività antibatterica e antitumorale) vengono eseguiti per rilevare l&#39;attività del composto. Infine, il composto di interesse è isolato e la struttura chimica è chiarito. Le strutture di prodotti naturali sono spesso composti di singole porzioni che stanno formando molecole complesse. Ci sono alcuni, ma limitate, le principali vie biosintetiche che portano alla costruzione di bloccoks, che vengono utilizzati per la biosintesi di prodotti naturali. Le principali vie biosintetiche sono i percorsi Polichetide, sentieri che conducono a terpenoidi e alcaloidi, percorsi utilizzando aminoacidi, e le vie che conducono a frazioni di zucchero. Ogni percorso è caratterizzata da un insieme di enzimi specifici 8. Sulla base della struttura del composto, questi enzimi biosintetici possono essere previsti. Al giorno d&#39;oggi, l&#39;analisi strutturale dettagliata di un composto, in combinazione con il sequenziamento di nuova generazione e analisi bioinformatica può aiutare a identificare il gene cluster biosintetico responsabile. Le informazioni gruppo apre nuove strade per ulteriori ricerche prodotto naturale. Questo include espressione eterologa per aumentare la resa del prodotto naturale, la modifica composto di mira da delezione del gene o l&#39;alterazione e la biosintesi combinatoria con geni provenienti da altri percorsi. Polyketomycin stato isolato indipendentemente dal brodo di coltura didue ceppi, Streptomyces sp. MK277-AF1 9 e Streptomyces diastatochromogenes Tü6028 10. La struttura è stata chiarita mediante analisi NMR e raggi X. Polyketomycin è composto da un decaketid tetraciclici e un acido salicilico dimetil, collegati da due porzioni deossizuccheri beta-D-amicetose e α-L-axenose. Esso mostra citotossica e attività antibiotica, anche contro ceppi multiresistenti Gram-positivi come l&#39;MRSA 11. Una libreria genomica cosmid di S. diastatochromogenes Tü6028 è stato generato e proiettato molti anni fa. Utilizzando gene specifico sonde gene cluster polyketomycin con una dimensione di 52,2 kb, contenente 41 geni, è stato identificato dopo diversi mesi di intenso lavoro 12. Recentemente, una sequenza progetto genoma di S. diastatochromogenes è stata ottenuta che porta alla rapida identificazione del gene cluster biosintetico polyketomycin. In questa panoramica, un metodo per aiutare a idenduare un prodotto naturale e chiarire suo gene cluster biosintetico sarà descritta utilizzando polyketomycin come esempio. Qui spieghiamo i singoli passaggi che portano da un prodotto naturale al suo gruppo di geni biosintetica mostrato per polyketomycin prodotto da Streptomyces diastatochromogenes Tü6028. Il protocollo comprende l&#39;identificazione e la purificazione di un prodotto naturale con proprietà antibiotiche. Ulteriori analisi strutturale e confronto con risultati ottenuti piombo mineraria genoma per l&#39;identificazione del gene cluster biosintetico. Questa procedura può essere applicata a qualsiasi altro composto derivato da un ceppo Streptomyces o altro microrganismo.

<table><tbody><tr><td>agar</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>5210.4</td><td></td></tr><tr><td>agarosio</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>6352.4</td><td></td></tr><tr><td>D-mannitolo&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>4175,1</td><td></td></tr><tr><td>glucosio&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>6780.1</td><td></td></tr><tr><td>LB&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>X964.3</td><td></td></tr><tr><td>estratto di malto&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>X976.2</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>2189.1</td><td></td></tr><tr><td>Peptone&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>farina di soia&nbsp;</td><td>W.Schoenemberger GmbH, Magstadt, Germania</td><td></td> Brodo di soia triptico <td>Hensec-Vollsoja</td></tr><tr><td></td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>X938.3</td> Estratto di lievito <td>Caso-Bouillon</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>2363.2</td><td></td></tr><tr><td>Solvents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acido acetico</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germany</td><td>3738.5</td><td></td></tr><tr><td>Acetone&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>9372.2</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrile</td><td>Avantor Performance Materials B.V., Deventer, Paesi Bassi</td><td>JT-9012-03</td><td></td></tr><tr><td>Dicloroda&nbsp;</td><td>Fisher Scientific GmbH, Schwerte, Germania</td><td>1530754</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (Dimetilsolfossido)</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>4720.1</td><td></td></tr><tr><td>DMSO-d6 (Dimetilsolfossido-d6) 99.9 atom% D</td><td>ARMAR Chemicals, D&ouml; ttingen, Svizzera</td><td>15200.204</td><td></td></tr><tr><td>Acetato di etile</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>6784.4</td><td></td></tr><tr><td>Acido cloridrico</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>6331.4</td><td></td></tr><tr><td>Metanolo</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>7342.1</td><td></td></tr><tr><td>Enzimi</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>enzimi di restrizione</td><td>New England Biolabs GmbH, Francoforte sul Meno, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>polimerasi&nbsp;</td><td>New England Biolabs GmbH, Francoforte sul Meno, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNA polimerasi I Grande (Klenow) Frammento</td><td>Promega GmbH, Mannheim, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Antibiotics</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>apramycin</td><td>AppliChem GmbH, Darmstadt, Germania&nbsp;</td><td>A7682.0005</td><td></td></tr><tr><td>fosfomicina</td><td>Sigma-Aldrich Chemie GmbH, Taufkirchen, Germania</td><td>P5396-50G</td><td></td></tr><tr><td>kanamycin</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td>T832.2</td><td></td></tr><tr><td>Plasmid/Vectors</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pKC1132</td><td>Bierman et al. 1992</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Primer& nbsp; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pokPI_for</td><td>TGATGGTGCCGCTGGCCATGG</td><td>Primer per amplificare il frammento contenente il gene</td><td></td>pokPI</tr><tr><td>pokPI_rev</td><td>AGCGTTCACTGTTCCGCCCGAC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Batteri</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bacillus subtilis COHN ATCC6051</td><td></td><td>Ceppo di test Gram-positivo&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Escherichia coli ET12567 pUZ8002&nbsp;</td><td>MacNeil et al. 1992</td><td>ceppo per coniugazione</td><td></td></tr><tr><td>Escherichia coli XL1 Blue</td><td>Agilient Technologies, Santa Clara, USA</td><td>Ceppo di test Gram-negativo + ospite di clonazione&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Streptomyces diastatochromogenes T&uuml; 6028</td><td>Paululat et al., 1999</td><td>Polichetomicina produttore</td><td></td></tr><tr><td>Servizi online</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>antismash (Antibiotici e analisi dei metaboliti secondari Shell)</td><td>http://antismash.secondarymetabolites.org/</td> <td>Rilevamento del cluster</td><td></td>genico del metabolita secondario</tr><tr><td>BLAST (Basic Local Alignment Search Tool)</td><td>http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi</td><td>trova regioni di somiglianza tra sequenze</td><td></td>biologiche</tr><tr><td>GenDB</td><td>https://www.uni-giessen.de/fbz/fb08/Inst/bioinformatik/software/gendb</td><td>Annotazione degli ORFs&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>MiBIG (Minimum Information about a Biosynthetic Gene cluster)</td><td>http://mibig.secondarymetabolites.org/</td> <td>Database di cluster</td><td></td>di geni biosintetici</tr><tr><td>NaPDoS</td><td>http://napdos.ucsd.edu/</td> <td>Rilevamento di cluster di geni di metaboliti secernari</td> NCBI Pipeline di annotazione del genoma procariotico http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/annotation_prok/ Annotazione di ORFs&nbsp;<td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NRPSpredictor</td><td>http://nrps.informatik.uni-tuebingen.de/</td> <td>Rilevamento dei domini NRPS Prokka</td><td></td></tr><tr><td>(annotazione rapida del genoma procariotico)</td><td>http://www.vicbioinformatics.com/software.prokka.shtml</td><td>Annotazione di ORFs&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>RAST (annotazione rapida utilizzando la tecnologia dei sottosistemi)</td><td>http://rast.nmpdr.org/</td> <td>Annotazione di ORF&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Altri programmi</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chem Station Rev. A.09.03</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td>Programma di movimentazione per HPLC&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Clone Manager Suite 7</td><td>Software scientifico ed educativo, Cary, USA</td><td>Progettazione di esperimenti di clonazione</td><td></td></tr><tr><td>Newbler v2.8</td><td>Roche Diagnostics</td><td>L'allineamento delle letture</td><td></td> di sequenziamento</tr><tr><td>Machines&nbsp; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge Avanti J-6000, Rotor JA-10</td><td>Beckman Coulter GmbH, Krefeld, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HPLC/MS</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Autosampler: G1313A</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Pre colonna: XBridge C18 (20 mm x 4,6 mm; Dimensione delle particelle: 3,5 & micro; m)</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Column:Xbridge C18 (100 mm &times; 4.6 mm; Dimensione delle particelle: 3,5 &mu; m)</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_semi pre-colonna di preparazione: Zorbax B-C18 (9,4 x 150 mm; Granulometria: 5 & micro; m)</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_semi colonna di preparazione: Zorbax B-C18 (9,4 x 20 mm; Granulometria: 5 & micro; m)</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Degasser: G1322A&nbsp;</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Quarternary pompa: G1311A</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Diode rivelatore array (DAD)G1315B (&lambda; = 254 nm e 400 nm)</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_Quadrupole rivelatore di massa (MSD) G1946D(2-3000 m/z)</td><td>Agilent Technologies, Waldbronn, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>evaporatore</td><td></td><td></td><td></td> rotativo</tr><tr><td>_heating bagno Hei-VAP Value/G3</td><td>Heidolph Instruments GmbH & Co.KG, Schwabach, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>_vacuum sistema di pompaggio SC 920 G</td><td>KNF&nbsp; Strategie globali&nbsp; AG, Sursee, Svizzera</td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>Altri materiali</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sephadex LH20</td><td>GE Healthcare,&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chromafil PVDF-45/15MS (dimensione dei pori 0,45 &; micro; m; filtro &Oslash; 15 mm)</td><td>MACHEREY-NAGEL GmbH & Co. KG, D&uuml; ren, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Colonna SPE Oasis HLB 20 35 cc (6g)</td><td>Waters GmbH, Eschborn, Germania&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>E. coli&nbsp; </td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td>Medio: LB, Composizione: LB, Quantità di 1 L H2O: 20 g</td></tr><tr><td>Bacillus&nbsp; </td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td>Medio: LB, Composizione: LB, Quantità per 1 L H2O: 20 g</td></tr><tr><td>Streptomyces sp.</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td>Medio: TSB, Composizione: CASO Boullion, Quantità fino a 1 L H2O: 30 g</td></tr><tr><td>di funghi&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td>Medio: YPD, Composizione: Estratto di lievito, Quantità fino a 1 L H2O: 10 g</td></tr> di <tr><td>fungo&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td>Medio: YPD, Composizione: Peptone, Quantità fino a 1 L H2O: 20 g</td></tr> di <tr><td>funghi&nbsp;</td><td>Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe, Germania</td><td></td><td>Medio: YPD, Composizione: Glucosio, Quantità fino a 1 L H2O: 20 g</td></tr><tr><td colspan="4">per piastre di agar aggiungere il 2% di agar</td></tr></tbody></table>

da un prodotto naturale al suo grappolo biosynthetic gene: una dimostrazione che utilizzino polyketomycin da streptomyces diastatochromogenes tü6028

From a Natural Product to Its Biosynthetic Gene Cluster: A Demonstration Using Polyketomycin from Streptomyces diastatochromogenes T&#252;6028

Ceppi Streptomyces sono noti per la loro capacità di produrre un sacco di composti diversi con vari bioattività. La coltivazione in condizioni diverse, spesso porta alla produzione di nuovi composti. Pertanto, culture produzione dei ceppi vengono estratti con acetato di etile e gli estratti grezzi vengono analizzati mediante HPLC. Inoltre, gli estratti sono testati per la loro bioattività dai saggi differenti. Per struttura delucidazione il composto di interesse viene purificato mediante una combinazione di diversi metodi di cromatografia. Il sequenziamento del genoma accoppiato con genoma mining permette l&#39;identificazione di un cluster prodotto naturale biosintetico del gene utilizzando diversi programmi per computer. Per confermare che il gene cluster corretta è stato identificato, esperimenti gene inattivazione devono essere eseguiti. I mutanti risultanti vengono analizzati per la produzione del particolare prodotto naturale. Una volta che il cluster genico corretto è stato inattivato, lasforzo non dovesse produrre il composto. Il flusso di lavoro viene mostrata per la polyketomycin composto antibatterico prodotto da Streptomyces diastatochromogenes Tü6028. Circa dieci anni fa, quando sequenziamento genomico era ancora molto costoso, la clonazione e l&#39;identificazione di un gene cluster era un processo molto tempo. Veloce sequenziamento del genoma combinato con genoma mineraria accelera il processo di identificazione del cluster e apre nuovi modi per esplorare biosintesi e di generare i prodotti naturali romanzo di metodi genetici. Il protocollo descritto in questo documento può essere attribuito ad un altro composto derivato da un ceppo Streptomyces o altro microrganismo.

In questa panoramica vengono descritti i singoli passi dalla individuazione di un antibiotico che porta alla sua gene cluster biosintetico. Molti anni fa abbiamo clonato una biblioteca cosmid, li confezionato in fagi, trasdotte cellule ospiti di E. coli, e ha dovuto schermo migliaia di colonie per identificare i cloni che hanno sovrapposte regioni del grappolo polyketomycin. Il sequenziamento dei cosmidi era anche un difficile e costoso processo 12. Al fine di condurre ulteriori studi sul ceppo abbiamo sequenziato l'intero genoma di Streptomyces diastatochromogenes Tü6028. Con il progetto di sequenza del genoma abbiamo facilmente identificato il gene cluster biosintetico di polyketomycin e altri cluster che codificano composti promettenti. Figura 7 confronta il metodo "vecchio" di individuare cluster biosintetica per clonazione di una biblioteca cosmid e lo screening elaborative, eil metodo "nuova" di sequenziamento dell'intero genoma con conseguente mineraria genoma su una scala temporale di massima. Le nuove tecnologie di sequenziamento del genoma e nuovi programmi di estrazione accelerare l'intero processo. <img alt="Figura 7" src="/files/ftp_upload/54952/54952fig7.jpg"> Figura 7: Confronto tra il "vecchio" e "nuovo" metodo di assegnazione di un biosintetico Gene Cluster. Il metodo "vecchio" comprende la clonazione di una libreria cosmid con selezione di cloni positivi e sequenziamento del rispettivo cosmide (s) (sopra); Il metodo "nuovo" include sequenziamento dell'intero genoma e -mining per identificare tutti i cluster di geni metabolici secondari situati sul genoma del ceppo (in basso). Durata di singoli passi sono presenti su una scala temporale ruvida. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54952/54952fig7large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

Presentiamo qui un protocollo dettagliato di (A) l&#39;identificazione di un prodotto naturale con attività antibiotica, (B) la purificazione del composto (C) il primo modello della sua biosintesi, (D) sequenziamento del genoma / -mining e ( E) la verifica del cluster genico biosintetico.

Da un prodotto naturale al suo grappolo Biosynthetic Gene: Una dimostrazione che utilizzino Polyketomycin da Streptomyces diastatochromogenes Tü6028

Streptomyces strains are known for their capability to produce a lot of different compounds with various bioactivities. Cultivation under different ...

L'obiettivo generale di questo flusso di lavoro è identificare un prodotto naturale con attività antibiotica, purificare il composto e determinare il suo cluster genico biosintetico attraverso l'estrazione del genoma. Nuovi antibiotici sono urgentemente necessari a causa del crescente numero di agenti patogeni mioresistenti. I ceppi di streptomicina sono noti produttori di antibiotici e dovremmo utilizzare questo potenziale.Con la conoscenza di un cluster eterogenico di biocine antibiotiche possiamo proporre una via biosintetica e modificare ulteriormente il composto. Queste procedure aiutano a identificare il cluster genico corrispondente. La radio viene dimostrata con il ceppo di streptomicina.Ma può essere applicato ad altri microrganismi. Per iniziare, getta il ceppo di streptomicina in condizioni diverse, come terreni o tempi di incubazione diversi. Raccogliere le cellule mediante centrifugazione per 10 minuti a 3.000 volte G.E trasferire i surnatanti in un nuovo pallone.Per l'estrazione del composto dal brodo di coltura, regolare il surnatante a PH4 mediante l'aggiunta di un molare di acido cloridrico. E trasferiscilo in un imbuto separatore. Quindi aggiungere lo stesso volume di acetato etale e agitare la miscela per 30 minuti a 180 giri/min.Successivamente, raccogliere la fase di acetato etale e trasferirla in un pallone a fondo tondo attraverso una carta da filtro. Evaporare l'acetato etale mediante evaporazione rotativa a 40 gradi Celsius e 240 bar. Per l'estrazione del composto dai miceli, risospendere le cellule in un volume doppio di acetone.Agitare le cellule in una provetta a 180 giri/min per 30 minuti. Filtrare il liquido con carta da filtro. Quindi evaporare l'acetone utilizzando un evaporatore rotante a 40 gradi Celsius e 550 bar.Sciogliere l'estratto secco in 20 millilitri di acqua acetato etale e continuare l'estrazione dei composti come prima. Quindi sciogliere gli estratti secchi nel metanolo. Filtrali attraverso un filtro poroso da 0,45 micrometri.E trasferire gli estratti in fiale HPLC. Iniettare i campioni nella macchina HPLC e analizzare l'estratto grezzo come descritto nel protocollo di testo. Per identificare l'attività antibiotica utilizzando il saggio di diffusione su disco, distribuire varie precolture di ceppi di prova sulle rispettive piastre di agar.Quindi pipettare da 20 a 50 microlitri di estratto disciolto su dischi di carta sterili. Preparare anche un controllo negativo con solvente e un controllo positivo con un antibiotico appropriato. Dopo aver asciugato i dischi di carta per 30 minuti, trasferirli sulle piastre con le colture di prova.Incubare le piastre di deformazione di prova in condizioni adeguate. Quindi determinare le zone di inibizione apparente per ogni ceppo di prova. Se esiste una zona di inibizione, purificare il composto responsabile dalla coltivazione su larga scala e chiarire la struttura come descritto nel protocollo di testo.Durante la purificazione un composto può cambiare a causa dell'ossidazione, dell'irraggiamento o della temperatura. Più pastiglie di purificazione vengono utilizzate, maggiore è la possibilità di degradazione. Fino a cinque milligrammi di composto, che è il minimo necessario per l'analisi del genogene comune.Analizzare la struttura chimica del composto isolato e prevedere gli enzimi che potrebbero essere coinvolti nella sua biosintesi. Qui la policidomicina viene utilizzata come esempio per dimostrare la procedura. Innanzitutto, suddividi la struttura in singole parti evidenti.La policidomicina è composta da una frazione tetraciclica, due monosaccaridi e acido dimetilsalicilico. Successivamente, prevedere i geni putativi nel cluster da cui potrebbero derivare le frazioni. Qui la porzione tetraciclica potrebbe essere derivata da una sinfase di tipo poli-chiave di tipo II.Mentre la porzione dimetilsalicilica può essere derivata da una sinfase iterativa di tipo poli-chiave I.Allo stesso modo, le due frazioni di zucchero, che sono 6 zuccheri deossi, potrebbero essere sintetizzate dal glucosio che coinvolge una dNDP-glucosio-4, 6-deidratasi durante la biosintesi e attaccate da due glicosiltransferasi.Sequenziare il DNA genomico con tecnologie di sequenziamento di nuova generazione. Per l'identificazione del cluster genico del metabolita secondario, eseguire programmi come antiSMASH, Natural Product Domain seeker o NRPS predicter. Invia la sequenza del genoma in formato fasta.Dopo diverse ore, i risultati vengono inviati tramite un link via e-mail. Nella bozza del genoma di streptimyoces diastatochromogenes, antiSMASH ha identificato 22 cluster genici putativi. Analizzare i cluster di geni putativi per le loro vie enzimatiche.Cerca cluster contenenti geni che potrebbero essere coinvolti nella sintesi del tuo composto. Negli astatocromogeni, il cluster II contiene geni poli-chiave in fase sincrona di tipo II, tre geni per una PKS iterativa di tipo I, e il gene dTDP-glucosio-4, 6-deidratasi e due glicosiltransferasi che codificano per geni. Per confrontare il cluster con altri cluster, antiSMASH fornisce un collegamento al database MIBiG che include annotazioni e ulteriori informazioni su cluster di geni biosintetici simili e sui loro prodotti.Confronta la struttura del composto con altri composti noti per verificare le somiglianze. L'identificazione del cluster genico biosintetico responsabile può essere semplice. Ma in alcuni casi può anche essere molto difficile.Per verificare che il cluster genico proposto sia responsabile della biosintesi del composto, cercare un gene all'interno del cluster e codificare per un enzima con una funzione centrale per la biosintesi. Per confermare il cluster genico della policidomicina, è stato selezionato il gene pokPI one che codifica per la chetosintasi alfa della PKS di tipo II e inattivato mediante una delezione fuori dal fotogramma. Dopo la clonazione e la coniugazione del singolo costrutto di crossover come descritto nel protocollo di testo.Controllare i mutanti crossover singoli. A tal fine, inoculare 100 millilitri di terreno di produzione con singoli cloni contenenti l'interruzione genica verificata. Incubare le cellule nelle stesse condizioni utilizzate in precedenza.Procedere all'estrazione dell'estratto grezzo come mostrato in precedenza. Infine, verificare la produzione mediante HPLC MS Analysis come descritto nel protocollo di testo. Il picco corrispondente nel cromatogramma HPLC e la massa del composto non devono essere rilevabili.Il cluster genico biosintetico della policidomicina è stato verificato mediante un esperimento di delezione genica. Qui è mostrato il cromatogramma HPLC dell'estratto grezzo del wildtype S.Diastatochromogenes e del ceppo mutante con interruzione pokPI one gene. Il ceppo mutante non produce più policidomicina.Una volta padroneggiata, questa procedura può essere eseguita in diversi mesi. Molti anni fa, l'identificazione di un cluster di geni biosintetici richiedeva molto tempo. Oggi il sequenziamento del genoma e l'estrazione del genoma accelerano fortemente questo processo.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come passare da un nuovo composto al suo cluster genico biosintetico. Abbiamo mostrato l'intera procedura in singoli passaggi in modo che tu possa assegnarli ora a qualsiasi altro produttore di prodotti naturali. La conoscenza del cluster genico e dei suoi composti sintetizzati ci dà un'idea dei percorsi biosintetici.Questo ci dà ulteriori opportunità di modificare molecole già esistenti al fine di migliorarle.

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Da un prodotto naturale al suo grappolo Biosynthetic Gene: Una dimostrazione che utilizzino Polyketomycin da Streptomyces diastatochromogenes Tü6028 (Video) | JoVE Journal

Da un prodotto naturale al suo grappolo Biosynthetic Gene: Una dimostrazione che utilizzino Polyketomycin da Streptomyces diastatochromogenes Tü6028

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