Name: Inducibile T7 RNA Polymerase-mediato sistema di espressione multigene, pMGX (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-27T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 9 s
Description: Scopri come costruire operoni sintetici multigene controllati da T7 RNA polimerasi inducibile in Escherichia coli usando il sistema pMGX. Questo metodo consente l'espressione simultanea di più proteine per studiare complessi proteici e biosintesi.

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Questo lavoro è stato sostenuto dal Consiglio di Ricerca delle Scienze Naturali e Ingegneria del Canada.

1. Ottenere Geni di Interesse <ol><li> Generi sintetici di progettazione. <ol><li> Ottimizzare una sequenza genica per l&#39;espressione di E. coli . </li><li> Rimuovere tutti i siti di restrizione problematica dalla sequenza (AvrII, NdeI, EcoRI e XbaI). </li><li> Incorporare siti di restrizione per la clonazione; Si raccomanda un sito 5&#39;-NdeI e un sito 3&#39;-EcoRI. Altri siti possono essere usati, se necessario; Si riferisce alla regione multicloning del plasmide selezionato ( Figura S1- S4 ). Se si desidera, includere un tag di codifica 5 &#39;o 3&#39; per la rilevazione Western blot. </li><li> Ordina commercialmente il gene progettato. </li><li> O il clone blunt il gene in un vortice vettore utilizzando un kit di clonazione blunt, come per le istruzioni del produttore; Primer di progettazione per amplificare il gene (quindi procedere al punto 1.2.2); O aggiungere altri 5 &#39;e 3&#39; estremità per la clonazione diretta in un plasmide pMGX e procedere al punto 2. Qui,I risultati rappresentativi sono dalla clonazione sbilanciata dei geni di interesse. </li></ol></li><li> Amplificare il gene desiderato (da un gene sintetico progettato e ottimizzato o da un template DNA contenente il gene desiderato) 15 . <ol><li> Primer di progettazione con siti di restrizione per la clonazione; Si raccomanda un sito 5&#39;-NdeI e un sito 3&#39;-EcoRI. Altri siti possono essere usati, se necessario; Si riferisce alla regione multicloning del plasmide selezionato ( Figura S1- S4 ). Se si desidera, includere un tag di codifica 5 &#39;o 3&#39; per il rilevamento Western blot. </li><li> PCR amplifica il gene desiderato 15 . </li><li> Analizzare la PCR mediante elettroforesi 16 agarosica. </li><li> Se esiste un&#39;amplificazione non specificata, ripulire il gene amplificato mediante l&#39;estrazione del gel. In caso contrario, utilizzare un kit di pulizia enzimatico. </li><li> Quantificare il DNA utilizzando uno spettrofotometro controllando l&#39;assorbimentoE a 260 nm; Vuoto con buffer di eluizione 17 . </li></ol></li></ol> 2. Clonazione dei geni di interesse in un vettore del sistema di espressione multigene, pMGX 18 <ol><li> La restrizione digerisce il gene di interesse ottenuto e il vettore desiderato, pMGX, con NdeI e EcoRI. NOTA: Se si ottiene una grande quantità di plasmidi ricircolati, lasciare che la reazione NdeI proceda per 1 ora prima di aggiungere EcoRI. <ol><li> Utilizzare una reazione digestata da 40 μL contenente 0,5-1,5 μg di DNA e 1 μl di ciascun enzima con 4 μl del appropriato tampone 10x. </li><li> Per un digerimento di NdeI e EcoRI, utilizzare il tampone EcoRI e aggiungere in primo luogo l&#39;endonucleasi di NdeI. Digestare per 1 h a 37 ° C. Quindi aggiungere l&#39;endonucleasi EcoRI e consentire al digest di procedere per un&#39;ora aggiuntiva. NdeI è sensibile alle fenditure vicine alla fine del DNA, per cui la digestione iniziale da parte di EcoRI può impedire una digestione efficace da NdeI. </li></ol></li><li> elettrOforesi la digestione di restrizione sul gel agarosico (per un gene da 1 kb, utilizzare un agarosio di 0,7% a 110 V per 55 minuti; per selezionare il percentuale di gel agarosio per diverse dimensioni del gene, fare riferimento al riferimento 16 . </li><li> Inserto per accise e bande vettoriali usando uno scalpello pulito o una lama di rasoio e posizionare il segmento gel gelato in un tubo da 1,5 ml. </li><li> Estrarre il DNA dal gel agarosico usando un kit di estrazione del gel secondo il protocollo del produttore. </li><li> Ligare il gene di interesse nel vettore pMGX utilizzando un rapporto 3: 1 inserto-vettore; Impostare una legatura negativa di pMGX digerito senza l&#39;inserto. <ol><li> Impostare una reazione di ligando di 20 μL contenente 1 μL di ligasi del DNA di T4, 0,15-0,5 μg di DNA vettoriale (~ 5 μL) e una quantità appropriata di inserto basata su un rapporto tra inserto-vettore 3: 1 e dimensione di Il gene che viene inserito; Le spine pMGX sono tra i 5.312 ei 5.504 bp di dimensioni. Includere una reazione di controllo negativo che contiene tutto buIl gene che viene inserito. Assicurarsi che la quantità di DNA vettoriale sia equivalente nella legatura del controllo negativo e nel vettore più le reazioni di legatura dell&#39;inserto. </li></ol></li><li> Trasformare le reazioni di legame in cellule E. coli chimicamente competenti XL1-Blue e plasmidi ligati pMGX- yfg1 (contenenti gene di interesse 1), pMGX- yfg2 (contenente gene di interesse 2) ... pMGX- yfgn (contenente gene di interesse n). Utilizzare la tecnica asettica (all&#39;interno di un armadio di biosicurezza o sotto una fiamma). <ol><li> Mescolare 100 microlitri aliquote di E. coli XL1-Blue E. coli chimicamente competenti per ghiaccio per 5 min e quindi aggiungere 5 μL delle reazioni di legatura. Incubare per 30 minuti in ghiaccio. </li><li> Scuotere le cellule per 45 s in un bagno d&#39;acqua tenuto a 42 ° C e quindi aggiungere 200 μL di LB freddo. Incubarli in ghiaccio per 2 min. </li><li> Agitare le cellule a 37 ° C a 220 giri / min per 1 h e quindi distribuire la piastra 100 μL su una piastra LB-agar contenente un approfondimentoMarcatore selettivo selezionabile (sia ampicillina che kanamicina). </li></ol></li><li> Schermate i cloni per i trasformanti positivi. <ol><li> Confronti i conti delle colonie sulle piastre di controllo e legatura negative. È desiderato un rapporto di colonia maggiore di 1: 2. Se sul piatto di controllo negativo vi è un gran numero di colonie, tornare al punto 2.1 e rivedere la nota. </li><li> Selezionare 4-8 singole colonie (a seconda del controllo negativo: rapporto di legatura) da ciascuna reazione di legatura dei diversi geni inseriti per la screening (1 n) e inoculare 4 ml di LB e la coltura di overnight / colonia individuale adeguata antibiotica. Coltivare le culture durante la notte con agitazione a 37 ° C e 220 giri / min. </li><li> Isolare il plasmide DNA usando un kit di isolamento del DNA plasmidico secondo il protocollo del produttore. </li><li> Impostare una reazione di 20 μl di digestione NdeI + EcoRI contenente 150-500 ng di DNA e 1 μl di ciascun enzima con 2 μl del appropriato tampone 10x. In thÈ il caso, aggiungere NdeI e EcoRI allo stesso tempo in cui il gene di interesse sarà tra i siti di restrizione. Si consiglia un controllo negativo con il vettore vuoto pMGX. Digestare per 2 ore a 37 ° C in un bagno d&#39;acqua. </li></ol></li></ol> 3. Inserimento del gene 2 nel vettore pMGX contenente il gene 1, pMGX- yfg1 <ol><li> La restrizione digerisce pMGX- yfg1 con AvrII e tratta con fosfatasi intestinale del vitello (CIP). <ol><li> Utilizzare una reazione di digest di 40 μl contenente 0,5-1,5 μg di DNA vettoriale (~ 5-10 μL di DNA isolato) e 1 μL di AvrII con 4 μl del opportuno tampone da 10x. Digest per 1,5 h a 37 ° C e quindi aggiungere 1,5 μL di CIP. Lasciare a 37 ° C per altri 30 minuti. </li></ol></li><li> La restrizione digerisce pMGX- yfg2 con AvrII e XbaI per liberare il gene di interesse. <ol><li> Utilizzare una reazione digestata da 40 μL contenente 0,5-1,5 μg di DNA e 1 μ; L di ciascun enzima con 4 μl del buffer appropriato10x. Digestare per 2 ore a 37 ° C. </li></ol></li><li> Le restrizioni elettroforesi digeriscono su un opportuno gel percentuale (0,7%) di agarosio e esentano le bande di inserti e vettori usando una lama bruciata / rasoio pulita (vedere Punti 2.2-2.3). </li><li> Estrarre il DNA utilizzando un kit di estrazione del gel secondo il protocollo del produttore e quantificare il DNA 17 . </li><li> Ligate il gene 2 in pMGX- yfg1 utilizzando un rapporto 3: 1 inserto-vettore. Impostare una legatura negativa di pMGX- yfg1 digerito senza l&#39;ulteriore inserto. Impostare come sopra nella fase 2.5. </li><li> Trasformare 5 μL delle reazioni di legame in cellule E. coli chimicamente competenti XL1-Blue, plasmidi ligati pMGX- yfg1,2 (contenenti gene di interesse 1 e 2) e controllo negativo pMGX- yfg1 , come si vede nel passaggio 2.6. </li><li> Paragonare il conteggio coloniale sulle piastre di controllo e di legatura negative. Un rapporto di colonia count gSi desidera un reater di 1: 2. Se ci sono un numero elevato di colonie sulla piastra di controllo negativa, tornare al punto 3.1 e rivedere il trattamento CIP. </li><li> Selezionare 4-8 singole colonie (a seconda del controllo negativo: rapporto di legamento) dalla reazione di legatura e inoculare 4 mL di LB e l&#39;antibiotico appropriato per singola colonia e crescere per una notte a 37 ° C e 220 rpm. </li><li> Isolare il plasmide DNA usando un kit di isolamento del DNA plasmidico secondo il protocollo del produttore e quantificare il DNA 17 . </li><li> Schermate l&#39;efficace inserzione del secondo gene eseguendo una digestione di restrizione di pMGX- yfg1,2 con EcoRI. <ol><li> Utilizzare una reazione digestata da 20 μL contenente 150-500 ng di DNA e 1 μl di enzima EcoRI con 2 μl di EcoRI 10x buffer. Digestare per 2 ore a 37 ° C. </li></ol></li><li> Elettroforesi digerire la restrizione su un opportuno gel percentuale di agarosio; Cercare una banda che corrispondaS alla dimensione del gene 2 (vedere il punto 2.2). Un gene può inserire nel vettore nell&#39;orientamento indesiderato e indesiderato. </li></ol> 4. Aggiunta di un terzo gene nel vettore pMGX contenente i geni 1 e 2, pMGX- yfg1,2 <ol><li> La restrizione digerisce pMGX- yfg1,2 con AvrII e trattare con CIP, come si vede al punto 3.1. </li><li> La restrizione digerisce pMGX- yfg3 con AvrII e XbaI, come si vede al punto 3.2. </li><li> Gli elettroforesi digestano la restrizione su un opportuno gel percentuale di agarosio e nell&#39;inserto di accisa e nelle bande vettoriali utilizzando una lama bruciata / rasoio pulita; Fare riferimento a Fasi 2.2-2.3. </li><li> Estrarre il DNA dal gel agarosico usando un kit di estrazione del gel e quantificare il DNA 17 . </li><li> Lignare il gene 3 in pMGX- yfg1,2 utilizzando un rapporto 3: 1 di inserto-vettore e impostare una legatura negativa di pMGX- yfg1,2 digerito senza un ulteriore inserto, come si vede al punto 3.5. </li><li> Trasformare 5 μL delle reazioni di legame in XL1 cellule E. coli chimicamente competenti, plasmide ligati pMGX- yfg1,2,3 (contenenti geni di interesse 1, 2 e 3) e controllo negativo pMGX- yfg1,2 , come si vede al punto 2.6. </li><li> Paragonare il conteggio coloniale sulle piastre di controllo e di legatura negative. Se sul piatto di controllo negativo vi è un gran numero di colonie, tornare al punto 4.1 e rivedere il trattamento CIP. </li><li> Selezionare 4-8 singole colonie (a seconda del controllo negativo: rapporto di legatura) dalla reazione di ligation e inoculare 4 mL di LB e l&#39;appropriato antibiotico per singola colonia; Crescono la notte a 37 ° C e 220 giri / min. </li><li> Isolare il DNA del plasmide usando un kit di isolamento del DNA plasmidico secondo il protocollo del produttore. </li><li> Schermate l&#39;inserimento effettivo del terzo gene eseguendo una digestione di restrizione di pMGX- yfg1,2,3 con EcoRI, come si vede nel passaggio 3.10. </li><li> Elettroforesi digerire la restrizione su un opportuno gel percentuale di agarosio; GuardaPer le bande che corrispondono alle dimensioni del gene 2 e del gene 3 (vedi punto 2.2). Nota: il gene 3 può inserire nel vettore nell&#39;orientamento indesiderato e indesiderato. Se i geni 2 e 3 sono le stesse dimensioni, è necessario selezionare un altro sito di digestione appropriato per la screening. NOTA: ripetere come necessario per ogni nuovo gene. </li></ol> 5. Produzione di proteine ​​di interesse utilizzando un sistema di espressione multigene e valutazione della produzione da Western Blotting <ol><li> Trasformare il clone positivo contenente tutti i geni di interesse in E. coli , chimicamente competenti, produttrici di proteine, come BL21- (λDE3). <ol><li> Mescolare 100 μL aliquote di E. coli chimicamente competenti BL21- (λDE3) in ghiaccio per 5 min e quindi aggiungere 1 μL del DNA plasmidico positivo clonato; Incubare per 30 minuti in ghiaccio. </li><li> Scongelamento caldo le cellule per 45 s in un bagno d&#39;acqua tenuto a 42 ° C e poi aggiungere 200 μL di LB freddo. Incubare in ghiaccio per 2 min. </li><li>Agitare le cellule a 37 ° C e 220 giri / min per 1 h e quindi distribuire la piastra 100 μL su una piastra LB-agar contenente il marcatore selettivo adatto (ampicillina o kanamicina). </li></ol></li><li> Esprimere la proteina mediante l&#39;induzione di isopropil-β-D-1-tiogalattopiranoside (IPTG). <ol><li> Selezionare una colonia isolata dalla piastra di trasformazione B21- (λDE3) e inoculare 4 ml di LB e l&#39;antibiotico appropriato; Crescono durante la notte, scuotendo a 37 ° C e 220 giri / min. </li><li> Inoculare 100 ml di LB e la coltura antibiotica appropriata usando 1 ml di coltura overnight. </li><li> Crescere a 37 ° C con agitazione a 220 giri / min ad un OD 600 di 0,6. </li><li> Indurre la cultura con 100 μM IPTG e crescere per 15 h a 25 ° C e 220 giri / min. </li><li> Rimuovere 1 ml della coltura e centrifugare a 13.000 xg per 1 min; Scartare il surnatante. </li></ol></li><li> Lyse le cellule utilizzando la soluzione di lisi secondo le istruzioni del produttoreE preformare una macchia Western della lisi cellulare solubile per determinare se tutte le proteine ​​sono state prodotte con successo 19 . </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

La coespressione di geni multipli è sempre più essenziale, in particolare per caratterizzare e ricostituire complessi percorsi metabolici multigene 3 , 4 , 5 . Il sistema pMGX rende coespressione multigene in routine E. coli 6 , 7 , 8 e accessibile a diversi ricercatori. In questo studio sono state dimostrate che cinque protei...

La coespressione di molteplici proteine ​​è sempre più essenziale, in particolare nelle applicazioni di biologia sintetica, in cui devono essere espressi più moduli funzionali 1 ; Nello studio dei complessi proteico-proteici, in cui espressione e funzione richiedono spesso co-espressione 2 , 3 ; E nel caratterizzare e sfruttare percorsi biosintetici, in cui ogni gene nel percorso deve essere espresso 4 , 5 , 6 , 7 , 8 . Sono stati sviluppati diversi sistemi per la coespressione, in particolare nell&#39;organismo ospitante Escherichia coli , il cavallo da lavoro per l&#39;espressione di proteine ​​ricombinanti di laboratorio 9 . Ad esempio, plasmidi multipli con differenti marcatori selectable possono essere utilizzati per esprimere singole proteine ​​usando una ricchezza di diversi es<html> Vettori di pressione 10 , 11 . I singoli sistemi plasmidi per l&#39;espressione multipla di proteine ​​hanno utilizzato sia promotori multipli per controllare l&#39;espressione di ciascun gene 10 , 12 ; Operoni sintetici, in cui i geni multipli sono codificati su una singola trascrizione 2 , 13 ; O, in alcuni casi, un singolo gene che codifica un polipeptide che viene ultimamente elaborato in modo proteolitico, fornendo le proteine ​​desiderate di interesse 14 . <img alt="Figura 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55187/55187fig1.jpg" /> Figura 1: flusso di lavoro pMGX che mostra la costruzione di un vettore policistronico. Il sistema pMGX fornisce una strategia flessibile e facile da usare per la costruzione di operoni sintetici sotto il controllo di un promotore T7 induttivo.E.com/files/ftp_upload/55187/55187fig1large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura. In questo manoscritto è descritto l&#39;uso di un sistema altamente efficace per la costruzione di operoni sintetici multigene sotto il controllo di una polimerasi RNA T7 indottabile ( figura 1 ). Questo sistema permette che molti geni siano espressi simultaneamente da un plasmide. È basato su un sistema plasmidico, originariamente chiamato pKH22, che è stato utilizzato con successo per una serie di applicazioni diverse 6 , 7 , 8 . Qui, questo set di plasmidi viene ampliato per includere quattro vettori correlati: pMGX-A, un vettore di espressione privo di qualsiasi etichetta C- o N-terminale e con il marker di resistenza dell&#39;ampicillina; PMGX-hisA, un vettore di espressione che codifica un tag di esahistidina N-terminale e con il marker di resistenza dell&#39;ampicillina; PMGX-K, un vettore di espressione lAcking qualsiasi etichetta C- o N-terminale e con il marker di resistenza alla kanamycina; E pMGX-hisK, un vettore di espressione che codifica un tag di hexahistidine N-terminale e con il marker di resistenza alla kanamycina. In questo studio è stato dimostrato il metodo per la generazione di un vettore polistronicico contenente cinque geni usando il sistema pMGX, in particolare pMGX-A, insieme alla produzione di ogni singola proteina in Escherichia coli .

<table><tbody><tr><td>Enzimi</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fosfatasi alcalina, intestinale del vitello (CIP)</td><td>New England Biolabs</td><td>M0290S</td><td></td></tr><tr><td>AvrII</td><td>New England Biolabs</td><td>R0174S</td><td></td></tr><tr><td>EcoRI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0101S</td><td></td></tr><tr><td>NdeI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0111S</td><td></td></tr><tr><td>XbaI</td><td>Nuovo England Biolabs</td><td>R0145S</td><td></td></tr><tr><td>Herculase II Fusion DNA Polimerasi</td><td>Agilent Technologies</td><td>600677</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNA Ligasi</td><td>New England Biolabs</td><td>M0202S</td><td></td></tr><tr><td>Nome</td><td>Company</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</strong</td></tr><tr><td>>Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 kb Scala del DNA</td><td>New England Biolabs</td><td>N3232L</td><td></td></tr><tr><td>4-20% Mini-PROTEAN TGX Gel proteici senza macchie</td><td>Bio-Rad</td><td>456-8095</td><td></td></tr><tr><td>50x TAE</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>BP1332-4</td><td></td></tr><tr><td>Agar</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>BP1423-500</td><td></td></tr><tr><td>Agarosio</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>BP160-500</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilina</td><td>Sigma-Alrich</td><td>A9518-5G</td><td></td></tr><tr><td>BL21 (DE3) cellule chimicamente comeptenti</td><td></td><td></td><td>Cellula comeptent preparata internamente</td></tr><tr><td>B-PER Reagente per l'estrazione di proteine batteriche</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>PI78243</td><td></td></tr><tr><td>dNTP mix</td><td>Agilent Technologies</td><td></td><td>Fornito con kit</td></tr> <tr><td></td><td>di estrazione su gel di polimerasiOmega</td><td>D2500-02</td><td>E.Z.N.A Gel Extraction, fornito da VWR Cat 3: CA101318-972</td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>BP381-1</td><td></td></tr><tr><td>His Tag Antibody [HRP], mAb, Mouse</td><td>GenScript</td><td>A00612</td><td></td></tr><tr><td>Substrato HRP chemiluminescente occidentale Immobilon</td><td>EMD Millipore</td><td>WBKLS0100</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Sigma-Alrich</td><td>15502-10G</td><td></td></tr><tr><td>LB</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>BP1426-500</td><td></td></tr><tr><td>Metanolo</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>A411-20</td><td></td></tr><tr><td>Latte scremato istantaneo pastorizzato in polvere</td><td>Negozio</td><td></td> di alimentari locale <td>Il latte del negozio di alimentari senza nome è adeguato</td></tr><tr><td>Membrana di nitrocellulosa</td><td>Amersham Protran (GE Healthcare Life Sciences)</td><td>10600007</td><td>Membrana PT 0,45 e micro; m 200 mm x 4 m, fornito da VWR Cat #: CA10061-086</td></tr><tr><td>Kit di isolamento del DNA plasmidico</td><td>Omega</td><td>D6943-02</td><td>E.Z.N.A Plasmid DNA MiniKit I, fornito da VWR Cat #: CA101318-898</td></tr><tr><td>pMGX</td><td>Boddy Lab</td><td></td><td>Richiesta dal Boddy Lab Contatto cboddy@uottawa.ca</td></tr><tr><td>Primer</td><td>Tecnologie del DNA</td><td></td> integrate <td>Progettare i primer secondo necessità per il gene desiderato</td></tr><tr><td>Tecnologie per la vita dei geni sintetici</td><td></td><td></td><td>Progettare e ottimizzare secondo necessità</td></tr><tr><td>Carta da filtro a macchia spessa</td><td>Bio-Rad</td><td>1703932</td><td></td></tr><tr><td>base Tris</td><td>BioShop</td><td>TRS001.1</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma-Alrich</td><td>P9416-50ML</td><td></td></tr><tr><td>XL1-Blue celle chimicamente competenti Cella</td><td></td><td></td><td>Comeptent preparata in casa</td></tr><tr><td>Name</td><td> Azienda</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BioSpectrometer</td><td>Eppendorf</td><td>RK-83600-07</td><td></td></tr><tr><td>Scatola di gel - PAGINA</td><td>Bio-Rad</td><td>1658005</td><td>Mini-PROTEIN Tetra Vertical Electrophoresis Cell</td></tr><tr><td>Gel Imager</td><td>Alpha Innotech</td><td></td><td>AlphaImager EC</td></tr><tr><td>Incubatore-forno</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>11-690-650D</td><td>Isotemp</td></tr><tr><td>Incubatore-agitatore</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>SHKE6000-7</td><td>MaxQ 6000</td></tr><tr><td>Personna Rasoi</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>S04615</td><td></td></tr><tr><td>Alimentatore</td><td>Bio-Rad</td><td>S65533Q</td><td>FB300</td></tr><tr><td>Transilluminatore</td><td>VWR International</td><td>M-10E,6W</td><td></td></tr><tr><td>Thermocylcer</td><td>Eppendorf</td><td>Z316091</td><td>Mastercycler Personal, fornito da Sigma</td></tr><tr><td>UV Face-Shield</td><td></td><td>18-999-4542</td><td></td></tr><tr><td>Waterbath</td><td>Fisher Thermo Scientific</td><td>15-460-2SQ</td><td></td></tr><tr><td>Western Transfer Apparatus</td><td>Bio-Rad</td><td>1703935</td><td>Mini-Trans Blot Cell</td></tr></tbody></table>

inducibile t7 rna polymerase-mediato sistema di espressione multigene, pmgx

Inducible T7 RNA Polymerase-mediated Multigene Expression System, pMGX

La coespressione di molteplici proteine ​​è sempre più essenziale per la biologia sintetica, studiando complessi proteico-proteici e caratterizzando e sfruttando percorsi biosintetici. In questo manoscritto è descritto l&#39;uso di un sistema altamente efficace per la costruzione di operoni sintetici multigene sotto il controllo di una polimerasi RNA T7 indottabile. Questo sistema permette che molti geni siano espressi simultaneamente da un plasmide. In questo caso, un insieme di quattro vettori correlati, pMGX-A, pMGX-hisA, pMGX-K e pMGX-hisK, con il marker selettivo di resistenza a ampicillina o kanamycina (A e K) e posseggono o mancano di una esahistidina N-terminale (Il suo) sono divulgati. Sono forniti protocolli dettagliati per la costruzione di operoni sintetici che utilizzano questo sistema vettoriale, insieme ai dati corrispondenti, che dimostrano che un sistema basato su pMGX contenente cinque geni può essere facilmente costruito e utilizzato per produrre tutte e cinque le proteine ​​codificate in Escherichia coli . Questo sistemaEm e il protocollo consentono ai ricercatori di esprimere in modo frequente moduli multipli complessi e percorsi in E. coli .

In questo studio, l&#39;obiettivo era quello di co-esprimere cinque proteine ​​da un unico plasmide. I frammenti di gene sintetici ottimizzati a cinque codoni che codificano i tag di esahistidine di N- o C-terminali sono stati acquistati in commercio. I geni sintetici sono stati amplificati mediante PCR e clonati individualmente in un vettore PCR-blunt e sequenziati. Per generare il plasmide policistronico, i cinque geni di interesse sono stati prima clonati in un idoneo plasmide pMGX, p...

Questo studio descrive metodi per la coespressione mediata da T7 di geni multipli da un singolo plasmide in Escherichia coli usando il sistema plasmid pMGX.

Inducibile T7 RNA Polymerase-mediato sistema di espressione multigene, pMGX

Co-expression of multiple proteins is increasingly essential for synthetic biology, studying protein-protein complexes, and characterizing and harnessing ...

L'obiettivo generale di questa procedura è costruire operoni sintetici multigenici sotto il controllo di una RNA polimerasi T7 inducibile per esprimere contemporaneamente più proteine. Questo metodo può aiutare i ricercatori in biologia sintetica e biochimica, consentendo loro di costruire percorsi multienzimatici o studiare complessi proteici che dipendono dall'espressione concomitante di più approcci. Il principale vantaggio di questa tecnica è che permette l'espressione simultanea di più geni in Escherichia coli da un singolo plasmide.Il procedimento sarà dimostrato da Mohamed Hassan, studente di dottorato, e da Angela Thompson, studentessa in programma cooperativo. Dopo aver ottenuto e amplificato i geni di interesse seguendo il protocollo descritto nel testo, preparare le reazioni di digestione per il primo gene di interesse e per il vettore pMGX. Utilizzare una reazione da 40 microlitri contenente da 0,5 a 1,5 microgrammi di DNA con l'enzima indel.Incubare le reazioni a 37 gradi Celsius per un'ora. Successivamente aggiungere EcoRI e lasciare procedere la digestione per un'ulteriore ora. NdeI viene aggiunto prima di EcoRI per garantire una digestione efficace.NdeI è sensibile alla lunghezza di DNA a doppio filamento su entrambi i lati del sito di restrizione. Aggiungerlo per primo garantisce che tagli il plasmide circolare completo. Caricare le reazioni di digestione su un gel di agarosio allo 0,7% ed eseguire l'elettroforesi dei campioni a 100 volt per 55 minuti.Quindi, con un bisturi o una lametta puliti, escindere le bande del vettore e dell'inserto e posizionare i frammenti di gel escissi in provette da 1,5 millilitri. Utilizzare un kit di estrazione da gel seguendo il protocollo indicato per purificare il DNA. Preparare una reazione di ligazione da 20 microlitri contenente da 0,15 a 0,5 microgrammi di DNA del vettore, la quantità appropriata di inserto in base alle dimensioni del gene e un microlitro di T4 DNA ligasi.In condizioni asettiche, scongelare sul ghiaccio aliquote da 100 microlitri di cellule di E. coli XL1-Blue chimicamente competenti per cinque minuti. Quindi aggiungere cinque microlitri delle reazioni di ligazione contenenti un gene di interesse alle cellule. Incubare le trasformazioni sul ghiaccio per 30 minuti.Successivamente, sottoporre le cellule a uno shock termico di 45 secondi in un bagno a 42 gradi Celsius. Poi, posizionare le trasformazioni sul ghiaccio e aggiungere 200 microlitri di mezzo LB freddo. Lasciare le cellule in incubazione per due minuti.Incubare le cellule a 37 gradi Celsius a 220 rotazioni al minuto per un'ora e distribuire 100 microlitri su piastre di agar LB contenenti un marcatore selettivo appropriato. Per analizzare le colonie alla ricerca di possibili trasformanti, confrontare il numero di colonie presenti sulla piastra di controllo negativo rispetto a quelle delle piastre di ligazione. È auspicabile un rapporto tra i conteggi delle colonie di uno a due.Selezionare da quattro a otto colonie singole da ciascuna reazione di ligazione per inoculare 4 millilitri di LB con l'antibiotico appropriato. Incubare le colture a 37 °C e 220 rotazioni al minuto per tutta la notte. Utilizzando il kit per l'isolamento del DNA plasmidico, purificare il DNA plasmidico seguendo il protocollo indicato e preparare reazioni di digestione da 20 microlitri con 150-500 nanogrammi di DNA, usando un microlitro ciascuno di NdeI ed EcoRI.Incubare le reazioni di digestione a 37 gradi Celsius per due ore. Per inserire il gene due nel vettore pMGX contenente il gene uno, preparare una reazione di digestione da 40 microlitri contenente da 0,5 a 1,5 microgrammi di DNA vettoriale contenente il primo gene di interesse e un microlitro di AVR2. Incubare la reazione a 37 gradi Celsius per 1,5 ore prima di aggiungere 1,5 microlitri di fosfatasi intestinale di vitello.Incubare per ulteriori 30 minuti. Successivamente, preparare una reazione di digestione in un volume di 40 microlitri contenente da 0,5 a 1,5 microgrammi del vettore pMGX che contiene il secondo gene di interesse. Utilizzando un microlitro di AVR2 e xpol.Incubare la reazione a 37 gradi Celsius per due ore. Eseguire l'elettroforesi dei digesti di restrizione su gel di agarosio allo 0,7%. Utilizzare una gomma da scalpelletto pulita per escindere le bande dell'inserto e del vettore come dimostrato in precedenza.Dopo aver estratto il DNA plasmidico e quantificato il campione secondo il protocollo descritto, impostare una reazione di ligazione utilizzando un rapporto inserto:vettore di 3:1 tra il gene 2 e pMGX-yfg1. Includere un controllo negativo utilizzando solo pMGX-yfg1. Trasformare cinque microlitri di ogni reazione in cellule XL1-Blue come mostrato in precedenza.Confrontare quindi il numero di colonie sulle piastre di controllo negativo e di ligazione. Se sono presenti un elevato numero di colonie sulla piastra di controllo negativo, verificare il trattamento con CIP. Selezionare da quattro a otto colonie singole dalla reazione di ligazione e utilizzare ciascuna colonia per inoculare quattro microlitri di LB aggiunti dell'antibiotico appropriato.Coltivare a 37 gradi Celsius e 220 rotazioni al minuto per tutta la notte. Dopo aver isolato e quantificato il DNA plasmidico come in precedenza, verificare l'inserzione efficace del secondo gene impostando una reazione di digestione contenente da 150 a 500 nanogrammi di DNA e un microlitro di EcoRI. Incubare le reazioni a 37 gradi Celsius per due ore.Per scopi di screening si consiglia EcoRI, ma in alcuni casi EcoRI può generare due o più inserti di dimensioni simili, difficili da distinguere su un gel. Per garantire il successo, si dovrebbe utilizzare un enzima di digestione restrittiva alternativo, come NdeI. Separare le reazioni di digestione su un gel di agarosio, cercando una banda corrispondente alle dimensioni del gene inserito 2.Clonare ulteriori geni nel plasmide seguendo il protocollo descritto nel testo. Per generare il plasmide policistronico, i cinque geni sono stati inizialmente clonati in un plasmide adatto, pMGX A. Questa figura mostra pCR-Blunt-yfg1 e pCR-Blunt-yfg2 nel plasmide pMGX A, nonché pMGX A digerito con indel ed EcoRI. Per clonare i primi due geni in pMGX A, il plasmide è stato digerito con indel ed EcoRI.Dopo il clonaggio, i vettori pMGX-yfg1 e pMGX-yfg2 sono stati digeriti con AVR2 e xpol per confermare l'ottenimento di cloni positivi. Questa figura mostra il vettore pMGXyfg1 digerito con AVR2 e il vettore pMGX-yfg2 digerito con AVR2 e xpol per isolare il gene di interesse due. L'inserto risultante è stato clonato in pMGX-yfg1 per creare il vettore pMGX-yfg1 due.Come mostrato qui, la digestione di pMGX-yfg1 due con EcoRI ha confermato il corretto clonaggio del gene di interesse numero due all'interno di pMGX-yfg1. Questa immagine del gel illustra la differenza tra plasmidi digeriti che presentavano l'inserzione in orientamento corretto o in orientamento inverso. Un inserzione in orientamento inverso avrebbe due siti EcoRI in prossimità, rendendo i frammenti risultanti di 50 paia di basi non rilevabili sul gel e il vettore più grande.Infine, dopo aver generato un vettore di espressione policistronico a cinque geni, un'analisi mediante western blot delle proteine espresse conferma che tutte e cinque le proteine sono state espresse da un singolo vettore. Si noti che la proteina prodotta da yfg5 ha le stesse dimensioni di yfg1 e non viene separata sul gel. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in tre o quattro giorni per ogni gene inserito nel vettore pMGX, se eseguita correttamente.Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di trattare e linearizzare il vettore con una fosfatasi come la fosfatasi dell'intestino bovino al fine di defosforilare i cinque estremi del vettore. Dopo questa procedura, è possibile eseguire ulteriori esperimenti, come l'espressione multigenica in vivo, per caratterizzare e sfruttare i percorsi biosintetici nella produzione di composti naturali o per studiare complessi proteina-proteina. Questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo della biologia sintetica per produrre carboidrati complessi ed E.Coli geneticamente modificati.Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come implementare il sistema di espressione multigenica in E.coli.

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