in situハイブリダイゼーション全体のマウントは、発生生物学で最も広く使用されている技術の一つです。ここで、我々は、単一の遺伝子の正確な発現パターンを解析するためと、二つの遺伝子の発現領域の重なりを判定するためのin situハイブリダイゼーションのプロトコールで二重蛍光の高解像度を示す。我々は、組織の組織を強調するためにカウンター染色核のヨウ化プロピジウムを含む。
in situハイブリダイゼーション全体のマウントは、発生生物学で最も広く使用されている技術の一つです。ここで、我々は、単一の遺伝子の正確な発現パターンを解析するためと、二つの遺伝子の発現領域の重なりを判定するためのin situハイブリダイゼーションのプロトコールで二重蛍光の高解像度を示す。我々は、組織の組織を強調するためにカウンター染色核のヨウ化プロピジウムを含む。
1。固定
PFAに関する注意:
我々は(試薬の表を参照)-20℃でアリコートで4%PFAを格納する。初期固定のために、我々は以前に解凍されたことがないPFAを使用してください。その後の注視のために、我々は多くの場合、それ以前に解凍されたPFAを使用してください。初期固定は、このプロトコルで成功する染色ために重要であると表示されます。
2。プロテイナーゼとかん流後
3。プレハイブリダイゼーション
4。ハイブリダイゼーション
5。プローブの取外し
この時点で前方に不足の洗剤からソリューションがあることに注意してください。洗剤の除去は、染色反応を助けるように見えますが、胚はかなり粘着性になることがありません。
6。抗フルオレセイン抗体のインキュベーション
7。フルオレセインラベル付きプローブの検出
チラミドシグナル増幅についての注意:
我々は、パーキンエルマーTSAキットを使用している。我々はAlexa -チラミド基質がパーキンエルマーの増幅の希釈バッファーを使用しても汚れがわかりますが、我々はInvitrogen社/ Molecular Probes社のキットに付属の染色バッファーを使用して成功を収めていない。最後に、我々は、フルオレセインとAlexa - 647は影響を受けないままCy5蛍光は、その後のメタノール/ H 2 O 2処理によって除去されることを見出した。 Cy3にも悪影響を、それが構造的にCy5標識に関連しているとして、メタノール/ H 2 O 2処理によって影響を受ける可能性があります。このような理由から、Cy3およびCy5 TSA反応は、その場のプロトコルで二重蛍光第二染色反応に使用する必要があります。
8。 ANTI -ジゴキシゲニン抗体インキュベーション
9。ジゴキシゲニン-ラベル付きプローブの検出
10。ヨウ化プロピジウム染色
11。拭き取り方
ソリューション:
| PBST | PBS +0.1%のTween | |
| SSCT | SSC +0.1%のTween | |
| HYB - | 50%のホルムアミド 5xSSC 0.1%のTween - 20 | |
| HYB + | HYB - 5mg/mlトルラ(酵母)RNA 50μg/mlヘパリン | トルラRNAは、その後のフェノール、とRNAのプロテイナーゼK消化によって調製されるフェノール - クロロホルム - 、及びクロロホルム- extraction.The RNAを沈殿させ、DEPC処理水に溶解する。 |
| 1 ×マレイン酸バッファー | 150mmのマレイン酸、100mMの塩化ナトリウム液(pH7.5) |

図1代表的なin situハイブリダイゼーション二重蛍光全体のマウントの結果を。 (AC)。画像は10体節段階で、ゼブラフィッシュ胚の後部領域を介して単一の共焦点セクションを示しています。ビューには、上部に前方と背側です。ヨウ化プロピジウムで染色された核は青色です。 (A)deltaCのmRNAは、ジゴキシゲニン標識リボプローブとTSA - Cy5の試薬 を用いて検出した。 (B)HER1の遺伝子から転写されたmRNAフルオレセイン標識リボプローブとTSA -フルオレセイン試薬で検出された。 (C)緑と赤のチャネルを統合すると、明確に二つの遺伝子の異なるまたは重複する遺伝子発現の領域を識別します。 (D、E)HER1表現の詳細は、この手順の高解像度を実証。 mRNAの細胞内局在を明確に識別できる。矢頭は核内染色のドットによって明らかにアクティブな転写を示す細胞を、示している。矢印は、mRNAの細胞質局在を示す細胞を示している。 (F、G)HER1とdeltaCのための二重染色は、別々に両方の遺伝子(白矢印)、またはいずれかの遺伝子を転写している細胞(赤と緑の矢印)を明らかにする。
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ここで紹介するプロトコールは、典型的なアルカリホスファターゼを介した反応で30〜45分のために染色した後、クリーンな強力な信号を与えるプローブでうまく動作します。 in situハイブリダイゼーションのプロトコールで蛍光を実行する前に、我々は常に標準の非蛍光プロトコルを(プローブの合成プロトコルと共に補足資料で提供される)を使用して私たちのプローブをテストします。弱いプローブを使用するときに我々は、in situハイブリダイゼーションのプロトコールで蛍光灯とあまり成功を収めているが、それはいくつかのケースでは可能かもしれない。私たちは正常にβ-カテニン3の免疫局在とin situハイブリダイゼーションのプロトコールで蛍光を組み合わせている。この変化を実行するときに、私たちは行っHYB -、HYB +および55℃のハイブリダイゼーションのインキュベーション° Cではなく、65 ° Cエピトープは、低い温度でよりよい維持される表示される。免疫局在のインキュベーションは、TSAの反応の後に実行されます。
フルオレセイン標識プローブは、同じ遺伝子のジゴキシゲニン標識プ...
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我々は、このプロトコルの開発にDörtheユーリッヒ、ジェニファーラウンドとアンドリューマーラの貢献を感謝したい。 NICHD、米国癌学会とマーチオブダイムスが提供する研究支援。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| パラホルムアルデヒド 16%溶液、EMグレード | Electron Microscopy Sciences | 15710 | 1.33x PBSで4%に希釈する(最終濃度1x)。2mlずつ分注し–20°Cで保存する。 |
| Proteinase K、リコンビナント PCRグレード | Roche Group | 03115879001 | 水を用いて20mg/mlのストック溶液を調製する。1mlずつ分注し–20°Cで保存する。 |
| ブロッキング試薬 | Roche Group | 11096176001 | 1xマレイン酸緩衝液を用いて10%のストック溶液を調製する。50mlずつ分注し–20°Cで保存する。複数回の凍結融解後も安定である。 |
| Anti-Fluorescein-POD、Fabフラグメント | Roche Group | 11426346910 | 分注し-20°Cで保存する。使用分を1つ4°Cで保管する。 |
| Anti-Digoxigenin-POD、Fabフラグメント | Roche Group | 11207739910 | 上記と同様。 |
| TSA Plus Fluorescein システム | PerkinElmer, Inc. | NEL741001KT | TSA試薬の各バイアルは必要時にのみ調製する。60μlのDMSOに溶解させる。4°Cで保存する。 |
| TSA Plus Cyanine5 システム | PerkinElmer, Inc. | NEL745001KT | 上記と同様 |
| TSA Plus Cyanine3 システム | PerkinElmer, Inc. | NEL744001KT | 上記と同様 |
| TSA Kit #16 AlexaFluor647 チラミド(HRP-goat-anti-rabbit IgGを含む) | Molecular Probes, Life Technologies | T20926 | チラミド試薬を150μlのDMSOに溶解し、分注して–20°Cで保存する。 |
| RNase、DNaseフリー | Roche Group | 11119915001 | 500μg/ml溶液として供給される |
| プロピジウムヨウ化物 | Molecular Probes, Life Technologies | P-3566 | 水に溶解した1mg/ml溶液として供給される。 |
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