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Biology
COS - 7の蛍光標識は、生細胞イメージングのためにSNAP - Tag融合タンパク質を発現する

Research Article

COS - 7の蛍光標識は、生細胞イメージングのためにSNAP - Tag融合タンパク質を発現する

DOI: 10.3791/1876

May 17, 2010

Christopher R. Provost1, Luo Sun1

1Division of Chemical Biology,New England Biolabs

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

SNAP - tagとCLIP -タグタンパク質のラベリングシステムは生細胞で目的のタンパク質に、蛍光色素を含む分子の特定の、共有結合を、有効にしてください。一度クローン化と発現し、タグ付けされたタンパク質は、再度クローンを作成することなく、多くのダウンストリームアプリケーションのための基板の様々な使用することができます。

Abstract

SNAP - tagとCLIP -タグタンパク質のラベリングシステムは生細胞で目的のタンパク質に、蛍光色素を含む分子の特定の、共有結合を、有効にしてください。これらのシステムは、イメージング計測の範囲に最適化された蛍光基質の幅広い選択を提供する。一度クローン化と発現し、タグ付けされたタンパク質は、再度クローンを作成することなく、多くのダウンストリームアプリケーションのための基板の様々な使用することができます。このシステムを使用する2つの手順があります。SNAPタグ融合、及び選択肢のSNAP - tagを基板との融合のラベルとして、目的のタンパク質のクローニングおよび発現。 SNAP - tagは、人間のOに基づいて小さなタンパク質である

Protocol

メッキCHO - K1細胞:

  1. F - 12Kの完全の6ミリリットルの標準プロトコールに従ってトリプシン処理されているCHO - K1細胞を50 -100μLを加える。
  2. その後、上下に数回ピペッティングして混合細胞懸濁液、#1.5ホウケイ酸カバーガラスチャンバー(NalgeneヌンクのIntと滅菌8室のLab - Tek社IIチェンカバーガラスの各ウェルにトリプシン処理細胞懸濁液のアリコートを300μl;商品#155409;ロット:100808-8-0)。
  3. 37℃、5%CO 2で一晩試料をインキュベートする。

pSNAP - ADRB2とpSNAP - H2BとCHO - K1細胞のトランジェントトランスフェクション:

  1. 細胞密度と健康を探すために前日に播種された細胞培養チャンバーを確認してください。
  2. マイクロチューブの適切な数のラベルを付けます。
  3. 層流フードでは、トランスフェクション複合体混合物は、0.3μgのpSNAP - ADBR2コントロールプラスミドDNAまたはpSNAP - H2BのコントロールプラスミドDNA、TransPassのD2を1μlとTransPass V 1μlの0.3μgのいずれかを使用して、次のサンプルチャートに基づいて設定反応あたり。
    プラスミド反応の数無血清培地の液 TransPass D2の液 TransPass Vの添加プラスミドDNAの添加 TransPassのD2/reactionμlの TransPass V /反応の液 DNA /反応のNG DNAコンク。 (ng /μlに) プラスミドDNA /反応μlの
    SNAP - ADRb2 5 236.5 5 5 3.5 1 1 300 472.34 0.7
    H2B - SNAP 5 237 5 5 3 1 1 300 515.89 0.6
    モック 5 240 5 5 0 1 1 0 0 0
    トランスフェクトされていない 5 250 0 0 0 0 0 0 0 0
  4. 最初に、適切なプラスミドDNAを無血清F - 12K混ぜ、その後TransPass Vトランスフェクション試薬を追加し、TransPass D2フェクション試薬を加える。各試薬の添加後、穏やかに数回ピペッティングでよく部品を混ぜる。
  5. 30分間室温で反応します。
  6. インキュベーションの間、完全DMEM600μlので細胞を1回洗浄し、各サンプルに完全DMEM 450μlを加える。
  7. ゆっくりと滴下方式で、各サンプルにトランスフェクション複合体混合物の50μlを追加。
  8. ° C、5%CO 2 37℃で一晩サンプルをインキュベートする。

一過性pSNAP - ADRB2とpSNAP - H2BでトランスフェクトしたCHO - K1細胞のSNAP -セルのTMRのスターラベル:

  1. 慎重に真空吸引することにより、各サンプルからトランスフェクション複合メディアを削除します。 F - 12Kの完全な600μlで細胞を2回洗浄し、F - 12Kの完全な600μlで各ウェルの培地を交換してください。
  2. 完全なF - 12Kと51μlの0.6 mMのSNAP -セルTMR -スター基板の995μlを添加して色素のラベリングのメディアを混在させる。 SNAP -セルのTMR - Starの最終濃度は、3mmにする必要があります。基質添加後混合して数回上下にピペッティング。
  3. 慎重にサンプルから増殖培地を除去し、各ウェルに色素ラベリングメディアの200μlを加える。 37サンプルをインキュベート° C、30分間、5%CO 2を 。
  4. 完全なF - 12Kの10mlに、サンプルはインキュベートされているが、ヘキスト33342、三塩酸塩、三水和​​物(Invitrogen社Molecular Probes社水に10 mg / mlの溶液を、16.2 mM溶液)1μlを混合して試料の核染色用にHoechst 33342を溶液を調製。
  5. すべてのサンプルからメディアを取り出して、各サンプルの希釈ヘキスト溶液を600μlずつ加える。 37サンプルをインキュベート° C、5分間、5%CO 2を 。
  6. F - 12Kの完全な600μlのサンプルを3回洗浄する。
  7. 37サンプルをインキュベート° C、5%非法人の蛍光物質が細胞外に拡散するようにさらに30分間CO 2。
  8. 30分後、最後にもう一度は、SNAP -細胞サンプルにメディアを変更し、画像処理に進みます。
  9. ツァイス線分Axiovert 200M蛍光顕微鏡を用いて画像の細胞。

代表的な結果

図1
図1ここです。SNAPタグ融合を表現しているライブCOS - 7細胞の標準的な蛍光顕微鏡を用いた蛍光イメージングのいくつか代表的な結果。この最初のイメージはSNAP -セルTMR -スターで標識pSNAP - H2Bを(ヒストン核)を発現するライブCOS - 7細胞を示しています。 pSNAP - H2BコンストラクトはpSNAP -タグ(m)のベクトルを用いて生成されました。細胞を30分間SNAP -セルのTMR -スターで標識し、核についてはヘキスト33342(青)で対比染色した。ピンクの蛍光は、ヒストンタンパク質が核を示す青色の蛍光に加えて存在する赤色蛍光のオーバーレイを示しています。 H2Bタンパク質の発現は、明確かつ容易に識別されます。

図2

図3
図2と図3。次の2つは画像が一時的にpSNAP -ADRβ2でトランスフェクトしたライブCOS - 7細胞を示す。
細胞は、SNAP -セルTMR -スター(赤)で標識し、ヘキスト33342(青)で対比染色した。 pSNAP -ADRβ2コンストラクトはpSNAP -タグ(m)のベクトルを用いて生成されました。細胞を30分間SNAP -セルのTMR -スターで標識し、核についてはヘキスト33342(青)で対比染色した。青色の蛍光が核を識別しながら、赤色の蛍光は、細胞表面の受容体タンパク質のADRB2の存在を示している。

Discussion

著者らは、この記事で使用する試薬や器具を生産するニューイングランドバイオラボで採用されています。

Disclosures

SNAP - tagとCLIP -タグタンパク質のラベリングシステムは生細胞で目的のタンパク質に、蛍光色素を含む分子の特定の、共有結合を、有効にしてください。一度クローン化と発現し、タグ付けされたタンパク質は、再度クローンを作成することなく、多くのダウンストリームアプリケーションのための基板の様々な使用することができます。

Acknowledgements

カイヨーンソン
イヴァンコレア
アンドレアスブレヒト
カトリンMüentener
クリスのれん
羅日
明許
セオドアデイビス
サルヴァトーレRussello
愛華張
インカゴーシュ
エリッサMaunus
ニコラスラバルト
ジェームズマクファーランド
ジョンバスウェル
ブレンダデズモンド
ジェームズエラード
ドンコーム

Materials

無
CHO-K1細胞ATCCCCL-61
血清F-12K
Lab-Tek IIチャンバーカバーガラスと#1.5ホウケイ酸カバーガラスチャンバーNalge Nunc国際155409ロット:100808-8-0
DMEM
H–chst 33342, 三塩酸塩, 三水和物 (10 mg/ml 水溶液, 16.2 mM 溶液)InvitrogenH3570470519
Zeiss Apotome Axiovert 200M 蛍光顕微鏡Carl Zeiss, Inc.
Transpass VNew England BiolabsM2561S0030709
Transpass D2New England BiolabsM2554S0060802
SNAP-Cell TMR StarNew England BiolabsS9105S0010811
pSNAP-ADBR2 Control PlasmidNew England BiolabsN9178S0010811
pSNAP-H2B Control Plasmid New England BiolabsN9179S0010811

References

  1. Johnsson, K. Visualizing biochemical activities in living cells. Nat Chem Biol. 5, 63-65 (2009).
  2. Johnsson, K. SNAP-tag Technologies: Novel Tools to Study Protein Function. NEB Expressions. 3.3, 1-3 (2008).

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