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方法論記事

レンチウイルスを介したノックダウン中生体外で赤血球

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DOI:

10.3791/2813

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2011年7月16日

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この記事について

サマリー

アン生体外でプロトコルが記述されている造血幹/前駆細胞から成熟ヒト赤血球を生成する。さらに我々は、ノックダウン一次赤血球系細胞における転写因子のTAL1をするために効率的なレンチウイルスの配信方法を説明します。レンチウイルスによる遺伝子導入効率はGFP発現ウイルスを用いて示されています。

要約

赤血球は細胞の分化を研究するために一般的に使用されるモデルシステムです。赤血球中に、多能性成体ヒト造血幹細胞(HSC)はoligopotent前駆細胞、コミットされた前駆体および成熟赤血球1に分化する。このプロセスは、付随して他の細胞タイプ2に固有の遺伝子を抑制する一方、特定の転写因子は、系統特異的遺伝子を活性化により、遺伝子発現のレベルでの大部分は規制されています。赤血球産生を制御する転写因子に関する研究は多くの場合、赤血球細胞が分化3-5の特定の段階で、ある程度、表現するヒトおよびマウス細胞株を使用して実行されます。しかし、形質転換細胞株は、部分的にしか赤血球系細胞を模倣することができますし、最も重要な、彼らは1つが理解しやすく、最終的な赤血球の運命に向かって多くの段階を経て細胞の進捗状況として発生する動的な変化を研究することはできません。したがって、現在の課題は、ゲノミクスおよびプロテオミクスの実験を行うのに十分な量で分化の様々な段階での主造血幹細胞と赤血球細胞の比較的均質な集団を得るために、プロトコルの開発のまま。

ここでは、臍帯血、骨髄、またはG - CSF(白血球搬出)を動員成人末梢血のいずれかから単離されたヒト造血幹/前駆細胞から赤血球分化を誘導するためにex vivoでの細胞培養のプロトコルについて説明します。最初にDouay研究所6によって開発されたこの培養系は、、骨髄の微小環境を模倣する間葉系細胞にサイトカインと共培養を使用しています。このex vivoの分化のプロトコルを使用して、我々は、赤血球前駆細胞の強力な増幅、排他的に赤血球系統と除核赤血球のステージへの完全な成熟に向かって分化誘導を観察。したがって、このシステムは、赤血球の系統に沿って造血幹細胞の進行など、転写制御の分子機構を研究する機会を提供しています。

転写レベルでの赤血球産生を研究することも主要な赤血球系細胞で過剰発現やノックダウン、特定の要因に能力を必要とします。この目的のために、我々は7分割し、非分裂細胞の両方を効率的に感染を可能にするレンチウイルスを介した遺伝子送達系を使用してください。ここで我々は効率的に初代ヒト赤血球系細胞における転写因子のTAL1をノックダウンすることができることを示している。さらに、GFPの発現は90%近くにレンチウイルス感染効率を示しています。従って、我々のプロトコルは、制御赤血球その転写因子の調節ネットワークの特性評価のための非常に有用なシステムを提供します。

プロトコル

パートI. ヒト造血幹・前駆細胞のex vivo赤血球造血

1. ヒトCD34+造血幹/前駆細胞の単離

造血幹細胞(HSC)と初期前駆細胞の混合物を含むヒトCD34+細胞集団8を、臍帯血、G-CSFで動員した末梢血(白血球アフェレーシス)、または骨髄から採取します(図1-ステップ1)。臍帯血または末梢血を使用する場合は、ステップ1.2へ進んでください。骨髄を使用する場合は、ステップ1.1から開始してください。試薬および器具については、表1をご参照ください。

特に指示がない限り、この手順は無菌状態(例:クリーンベンチ内)かつ室温(RT)で実施します。

  1. 骨髄の単細胞懸濁液の調製:
    1. 0.02% コラゲナーゼBおよび100 U/ml DNase 1を含むRPMI 1640を10倍量加え、骨髄を再懸濁する。
    2. バランスシェーカーを用いて45分間、穏やかに混合する。
    3. 細胞を30μmのナイロンメッシュでろ過する。
  2. Ficoll密度勾配遠心法により、低密度単核細胞(MNC)を分離します。

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ディスカッション

メソッドの数は、成功の可変度と文化の中で赤血球系細胞を区別するために以前に使用されている。例えば、MS - 5上で共培養することなく一部のプロトコルは、赤血球系細胞の拡張を使用できますが、12月17日 、完全に成熟した除核赤血球の生産に効率的ではありません。他の方法が効率的に眼球摘出を可能にする一方で、それが増殖18,19を犠牲にしています。我々が最初にDouay研究室6で開発された、ここで使用されている方法は、(ゲノミクスおよびプロテオミクス研究のために必要な)赤血球分化の初期段階で細胞の増幅を長引かせるため、早期の前駆細胞の多数を提供してくれる最初の液体培養工程を、組み合わせたもの、およびヘモグロビンの合成を最大化すると赤血球の完全摘出を取得することが重要であるMS - 5間葉系細胞、上の共培養の第二段階。私たちのメソッドの2つの制限は、これまで完全に蛋白質のレベルと、このプロトコルを実行する2)高コストで、非常に初期の赤血球前駆細胞を特徴づけるために私たちを妨げている分化の初期段階での増幅の1)はまだ不十分な程度であり、特に大規模で。

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開示事項

利害の衝突は宣言されません。

謝辞

我々は、血液サンプルを提供するためL. DouayとMC Giarratana(大学パリVI、フランス) のex vivo赤血球分化についてのアドバイス、D.アランとH.アトキンス(オフジー、カナダの)感謝(オタワ病院研究倫理審査会で得られた# 2007804 - 01H)、批判的に原稿を読み取るためのレンチウイルスベクターとFJディルワース(オフジー、カナダ)を提供するためのD. Trono(エコール連邦工科大学ローザンヌ校)。このプロジェクトはMBCGPにCIHRの助成金(MOP - 82813)によって賄われていたオンタリオ州の研究基金計算Regulomicsトレーニングポストドクトラルフェローシップの受賞者です。 MBは遺伝子発現調節のカナダリサーチチェアを保持しています。

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参考文献

  1. Orkin, S. H., Zon, L. I. Hematopoiesis: an evolving paradigm for stem cell biology. Cell. 132, 631-644 (2008).
  2. Kim, S. I., Bresnick, E. H. Transcriptional control of erythropoiesis: emerging mechanisms and principles. Oncogene. 26, (2007).
  3. Friend, C., ....

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