このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。

方法論記事

外科用回収、単離と

11.1K 回視聴

⸱

DOI:

10.3791/51597

⸱

2014年4月30日

この記事について

サマリー

前十字靭帯(ACL)の部分的な涙を修復するためのパッチなど、将来のアプリケーションでは、人間のACL由来の細胞をin vitroで増殖し、組織工学足場上に成長させ、再建手続きの際に得られた組織から単離した。細胞接着および形態は、その後、足場表面上に生体適合性を確認した。

要約

ACLに損傷がアクティブの個体において一般的に発生する問題です。機能性と安定性を損なう生体力学的な欠陥は、この関節膝靭帯リードのさえ部分的な涙。熱修正、シングルバンドルの修復、完全な復興、およびネイティブ靭帯の損傷部分の再構築:部分的なACLの涙の治療のための現在のオプションは保存療法、保守的な経営陣からのような複数の外科オプションの範囲。いくつかの研究は、もしあれば、一貫して優れていると管理のための任意の単一の方法を実証しており、多くの場合、患者は、永続的な不安定性および他の併存疾患を実証し続ける。

本研究の目的は、部分的に引き裂かれたACLの修復に実施することができる組織工学パッチの開発に利用するための潜在的な細胞源を同定することである。新規プロトコルはpatieに由来する細胞の拡大のために開発されましたACL再建を受けてNTS。細胞を単離するために、ACL再建中に得られたミンチHACL組織をコラゲナーゼ溶液中で消化した。膨張は、10%ウシ胎児血清(FBS)を補充したDMEM/F12培地および1%ペニシリン/ストレプトマイシン(P / S)を用いて行った。次いで、細胞をDMSO、FBSおよび拡張培地からなる凍結培地中に-80℃で、または液体窒素中で保存した。解凍後、HACL由来細胞は、次いで、組織工学的足場、PLAGA(ポリ乳酸 - コ - グリコール酸)および対照組織培養ポリスチレン(TCPS)上に播種した。 7日後、SEMを制御TCPSに対するPLAGAに対する細胞接着性を比較した。細胞形態は、免疫蛍光染色を用いて評価した。 SEM(走査型電子顕微鏡)顕微鏡写真は、細胞が成長し、PLAGAおよびTCPS両面に付着し、7日目で全面にコンフルエントことを明らかにした。免疫蛍光染色は、通常、非ストレス形態学を示した両面にアルミニウムパターン。この手法は、ACLの再生·復興への応用が期待されている。

概要

前十字靱帯(ACL)は膝の一般負傷した関節内靭帯である。約20万(ACL)の傷害は、米国で毎年報告されています。整形外科再建手術1,2,3,4のACL損傷OPTを経験した患者の75%以上。外科的介入は、しばしば本質的に治癒不良の可能性3に示されている。 ACL再建は、典型的には、自家移植片又は同種移植腱によって達成される。自家移植と同種移植片は、高い成功率を誇るように復興のためのゴールドスタンダードを表し、一次縫合の修理、他の治療オプションは、最大で94%で5,6,7の故障率を示している。

ACLの部分的な涙はすべてのACLの涙8の28%、10%に相当する。プロスペクティブ研究では、ノイスら 、よりACLの半分以上の部分に影響を与える涙を有する患者の50%が後、非ACL不全を完了するために進行していると推定手術治療9。他の研究では、持続的な不安定性を報告し、その損傷前の活動レベル9,10,11,12,13に戻ることができた患者の30%未満で機能の低下。治療の選択肢は限られており、保守的な様式、残りのACLの熱収縮、またはACL再建が含まれています。最近では、拡張現実、一次修理に対する関心が高まっています。これらの技術は、一次縫合糸修復14を強化するために生物学的製剤を使用しています。最近の研究では、間葉系様HACLを収穫しようとした31,32、移植の制限を回避するために幹細胞を誘導されたが、これらの細胞の妥当性と有効性はまだ不明です。組織工学用途のための理想的な細胞源は、非mesechymal HACLは、線維芽細胞に由来すると思われる。

現在の研究は、適切なマトリックス材料および操作された足場のための細胞源の同定に焦点を当てている。引き裂かれたACLは、suとして廃棄されることが標準的な手順である再建手術中rgical廃棄物は、しかし、この損傷を受けた靭帯は、ACL置換を設計し、理想的な組織を開発し、強化するために必要な細胞の取得質源であってもよい。私たちの研究室では、これらを採取HACL由来細胞のin vitroでの拡大のためのプロトコルを開発しました。 HACL由来細胞を注入された設計の2Dマトリックスを使用して、我々は潜在的に部分的なACLの修復を増強し、引き裂かれた靭帯を強化する可能性がパッチを設計しました。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

プロトコル

1。手術検索

注:IRB承認がACL再建手術中にACL断端を収集するために得た。使用するACL断端は一般外科廃棄物として廃棄されたように、IRBの免除が与えられた。 20人の患者は、ACL断端を収集するために使用された。

  1. 患者への金融機関のプロトコールに従って、全身麻酔や手術前の抗生物質を管理します。
  2. 止血帯を適用し、収縮期血圧が上100ミリグラムを膨らませる。
  3. 仰臥位で患者を置く。 5ミリメートルポータルの30〜45°の屈曲で膝水平前外側切開を行い、30℃で膝蓋上パウチに関節鏡トロカールとカメラを挿入します。
  4. 日常的な診断関節鏡検査を実行します。
  5. ノッチを入力して、引き裂かれたACLより膜性滑膜を創面切除。
  6. ACL断を識別するために、4.5ミリメートルのシェーバーとアブレータを使用してください。
  7. 複数のSPEを収集するためにまっすぐに苦いダックビルを使用残りのACL断からcimens。
  8. 滅菌容器に生理食塩水のサンプルを維持する。
  9. デコードや実験施設への最終的な配信のために病理学にサンプルを送る。
  10. 患者を回復し、金融機関のプロトコールに従って術後ケアを行う。

2。組織消化とHACLの分離

  1. 人間のACL組織は、(リン酸緩衝生理食塩水)滅菌生理食塩水/ PBSでシャーレに病理から受信した転送。
  2. 1〜2ミリメートル3個に、滅菌ハサミで組織をミンチし、少なくとも3回の生理食塩水でみじん切り組織を洗う。
  3. DMEM/F-12中の0.4%コラゲナーゼで37℃で4-6時間、10%ウシ胎児血清(FBS)および1%ペニシリン/ストレプトマイシンを補充した(50/50、1×)培地で細分化した組織を消化
  4. 5分間の千×gで細胞を遠心分離した後、培地中で細胞を再懸濁。
  5. Sそれから2〜3回培地で細胞を洗浄し、EED / 2〜3日のT-25フラスコ内の培養。

3。細胞拡大、凍結融解

  1. T-25フラスコ内で2〜3日間培養した細胞を可視化するために光学顕微鏡を使用しています。
  2. 10%ウシ胎児血清(FBS)および1%ペニシリン/ストレプトマイシン(P / S)を補充したDMEM/F-12(50/50、1×)培地中37℃で細胞を維持する。
    注意:細胞が接着および標準形態を示すときに、メディアを変更します。細胞を観察するために光学顕微鏡を使用しています。
  3. 7日目(〜1.3×10 6細胞/フラスコ)にPBSでコンフルエントの細胞を洗浄します。トリプシン(0.5グラム/ L)を添加し、5分間37℃で細胞をインキュベートする。トリプシンを中和するために懸濁された細胞にメディアを追加。 3、T-25フラスコの間のメディア細胞の混合物を分割します。
  4. PBSでコンフルエントの細胞を洗浄し、トリプシン(0.5グラム/ L)を追加し、DMSO、FBSおよび完全培地(DMEM/F-12培地+、10%FBS +1%P / S)を含む凍結培地で再懸濁します比率午前1時02分07秒。
  5. 店細胞は、より長い時間保存される場合に細胞はヶ月以内に使用され、液体窒素中で説明する場合は-80℃での低温バイアル。
  6. 再利用のために37℃の水浴中でバイアルを解凍する。
    注:通常90から95パーセントの細胞が生存。

4。2-Dポリ乳酸 - コ - グリコール酸(PLAGA)組織工学的足場の作製

  1. 20ミリリットルのシンチレーションバイアル中の12ミリリットルのジクロロメタンにPLAGAの1グラムを溶解し、一定速度(800 rpm)で8時間のためのソリューションをボルテックスする。
    注意:グプタら詳細な説明15。
  2. フッ素系保護紙を敷いたガラスシャーレに溶解した溶液を転送します。
  3. 30分間真空フードの下にペトリ皿を置きます。室温で一晩、その後-20℃でペトリ皿のままにしておきます。ポリマーの薄膜を得るために、溶媒を完全に蒸発を確実にするために凍結乾燥機中でペトリ皿を置きます。
  4. ポリマーFIを配置します24時間デシケーター中LMS。
  5. 直径12mmの円形ディスクにポリマーフィルムをカットし、必要になるまでデシケーターに保管してください。

5。走査型電子顕微鏡(SEM)

  1. 細胞(50,000細胞/ディスク)を洗って播種7日以降のPBSで制御TCPSとPLAGA足場に播種。
  2. 細胞を固定し、後固定のための0.1M酸緩衝液中で2.5%のOsO 4を0.1M酸緩衝液中で1.5%のグルタルアルデヒドを使用してください。
  3. 0.1Mの酸緩衝液で固定した細胞を洗浄します。それぞれ15分、そして一晩ヘキサメチルジシラザン(HMDS)中でさらに乾燥シリアルエタノール脱水(50%、70%、80%、90%及び100%)を用いて固定した細胞を乾燥させる。
  4. ボタンバルブを、SEMスパッタコーティングシステムのチャンバーをベントし、天板を上げる。
  5. 室内で乾燥させた試料を配置します。天板を下げます。
  6. チャンバを排気開始するために圧送するコントロールノブを切り替えます。
  7. オープンアルゴンリーク弁。待つ真空は0.05ミリバールまで低下させるには。
  8. 金/パラジウムの薄い層(0.13ナノメートル)でコーティング乾燥した試料。
  9. その閉じた位置にアルゴンリーク弁を返します。
  10. オフにコントロールノブを切り替えます。
  11. ボタンバルブとチャンバーベント天板を上げる。
  12. サンプルを取り出して、24時間デシケーターに保管してください。
  13. 走査型電子顕微鏡でサンプルを観察します。

6。免疫蛍光染色

  1. 細胞(50,000細胞/ディスク)を洗って播種7日以降のPBSで制御TCPSとPLAGA足場に播種。
  2. 10分間、70%エタノール(コールド)を用いて細胞を固定します。
  3. PBSで20分間、0.05%トリトンX-100を有する中の1%ウシ血清アルブミン(BSA)を用いて室温で固定した細胞をインキュベートする。
  4. 20分間室温で1%Tween中のサンプルを浸す。
  5. モノクローナルマウス抗β-アクチン抗体(1:400)を追加し、overnigh細胞をインキュベート4℃でのT
  6. 0.05%のTweenで細胞を洗浄。細胞への二次抗体(抗マウスF(ab 'ヤギ)蛍光プローブ、1:400と結合したIgGの2断片)を添加し、室温で1時間インキュベートする。
  7. PBSで細胞を洗浄。核染色で細胞を染色し、80%グリセロールを使用してマウントします。
  8. 共焦点顕微鏡で細胞を観察します。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

結果

外科用回収、組織消化し ​​、ヒト前十字靭帯(HACL)由来細胞の単離のためのワーキングモデルを図1に示す。外植片から移行し、T-25フラスコに付着した細胞を。これらの細胞を3日間培養し、光学顕微鏡( 図2)の下で可視化した。コンフルエントな単層を、7日目までに得た。健康な、生存細胞の存在はHACL由来細胞の正常な取得および培養を示す。

PLAGAおよびTCPSの表面への細胞付着を、SEMを介して定性的に測定した。各ポリマー表面上HACL由来細胞の3呈する付着および増殖を図 。携帯コンフルエンスPLAGAおよびTCPS観察された。

細胞形態および接着分析は免疫蛍光染色によって測定した。 β-アクチン染色はHACL由来細胞が接着していることを実証DへとPLAGAとTCPSの両方の表面に増殖した。4展示図 、ポリマー付着 ​​お...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

ディスカッション

このhACL/2D足場研究の主な目的は、部分的なACLの涙の主要な修理を強化するために、パッチで得られた細胞を使用することでした。部分的なACLの涙の非手術管理が固定化、ブレーシング、進歩的リハビリテーションプログラム、および定期的なフォローアップの評価13,16,17の短期間を含むことができる。しかし、多くの研究がスポーツ選手での保存的治療が不十分な結果、失敗と関​​連していることを示している。バックリーらは、中間フォローアップにおける部分のACL涙で25人の患者を評価し、患者のわずか44%が自分の前の傷害レベルでスポーツを再開し、72%が活動に関連した症状の8を報告したことがわかった。 BAK らは、5.3年の平均のために孤立した部分のACL涙で56人の患者を追跡し、患者のわずか30%が損傷前の活動10を再開した。 Fritschy らは、部分的なACLの涙で43人の患者の18は、5年間の追跡によって破裂を完了するために進んでいることがわかっ11。これらの研究は、部分的なACLの涙を治療し、修...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

開示事項

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

謝辞

著者らは、サザンイリノイ大学医学部から手術研究助成金のスタートアップ資金や部署を承認したいと思います。メモリアル医療財団補助金。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
ペトリ皿フィッシャーサイエンティフィ08-757-103C
リン酸緩衝生理食塩水(PBS)フィッシャーサイエンティフィックBP3994
コラゲナーゼGibco17018-0294°で保存;C
DMEM/F-12Cellgro10-092-CV4 °C. 37 °使用前のCウォーターバス。
ウシ胎児血清 (FBS)Gibco10082-80 ° で保管。C
ペニシリン/ストレプトマイシンロンザ17-602Eストア4°C
遠心分離管-15 mlコーニング430790
T-25フラスコBDファルコン3013
トリプシン-バーセン混合物ロンザ17-161E4°C.で37 °で暖かい。使用前のCウォーターバス。
DMSOフィッシャーサイエンティフィックBP231-100可燃性液体。皮膚、目、気道の炎症を引き起こす可能性があります。
極低温バイアルCorning430489
PLAGAPurac BiomaterialsPurasorb PLG8523-80 °C
TCPSディスクフィッシャーサイエンティフィック12-545-82
ジクロロメタンフィッシャーサイエンティフィックAC36423-0010がんの危険性の可能性。乾燥した涼しい場所に保管してください。
Bytacゴビンパフォーマンスプラスチック1420652
シンチレーションバイアルッシャーサイエンティフィック03-339-21G
ウシ血清アルブミン(BSA)シグマアルドリッチA79064°で保存。C
TweenFisher ScientificBP337-500
マウス抗β;-アクチン抗体 (1°Ab)Sigma AldrichA5441-20 ° の店舗。C
ヤギ抗マウス抗体 (2°Ab)Cell Signaling4408は -20 ° で保存します。C
Hoechst染料Sigma Aldrich14530-20 °で保存。C
グリセロールフィッシャー サイエンティフィBP229-1
グルタルアルデヒドフィッシャー サイエンティフィBP2547-1吸入および飲み込むと有毒です。すべての露光経路で火傷を負います。
ヘキサメチルジシラザンフィッシャーサイエンティフィックAC43085-1000可燃性液体および蒸気。すべての露光経路で火傷を負います。
滅菌はさみマッケソン25-716
遠心分離機エッペンドルフ5804R
光学顕微鏡オリンパスCK40
ウォーターバスサーモサイエンティフィック2845
ボルテックスラブネットVX-200
ガラス ペトリプレートフィッシャー サイエンティフィックS31473
Acu-PunchAcuderm株式会社P1225Acu-Punchは、12 mmディスク
コジル酸バッファーSigmaAldrich97068液体、発がん性物質、刺激物
四酸化オスミウムSigma Aldrich201030非常に有毒
Triton X-100Sigma AldrichT8787飲み込むと有害
エタノールDecon Labs2705熱、火花、炎、その他の発火から遠ざけてください。
一般/局所麻酔Amphastar 医薬品1% リドカイン、0.25% ブピバカイン、導入および維持のための麻酔薬
抗生物質Hospira0409-0805-01Ancef 1 g i.v.
関節鏡検査トロカール鍛冶屋と甥
関節鏡カメラ鍛冶屋と甥
関節鏡視下把持器と苦関節
4.5mmシェーバー関節差
ネジアースレックスステンレスネジ
スパッタコーターポーラロンE5400
ック紙セントフィック ック カ可燃性を切断するために使用されました。ない 関節差ネジ

参考文献

  1. Johnson, R. J. The anterior cruciate ligament: A dilemma in sports medicine. Int J Sports Med. 3, 71-79 (1982).
  2. Owings, M. F., Kozak, L. F. Ambulatory and inpatient procedures in the United States, 1996. Vital Health Stats. 13, 1-119 (1998).
  3. Frank, C. B., Jackson, D. W. The science of reconstruction of the anterior cruciate ligament. J Bone Joint Surg Am. 79, 1556-1576 (1997).
  4. Miyasaka, K. C., Daniel, D. M., Stone, M. L., Hirshman, P. The incidence of knee ligament injuries in the general population. Am J Knee Surg. 4, 3-8 (1991).
  5. Taylor, D. C., Posner, M., Curl, W. W., Feagin, J. A. Isolated tears of the anterior cruciate ligament: over 30 year follow-up of patients treated with arthrotomy and primary repair. Am J Sports Med. 37 (1), 65-71 (2009).
  6. Liljedahl, S. O., Lindvall, N., Wetterfors, J. Early diagnosis and treatment of acute ruptures of the anterior cruciate ligament: a clinical and arthrographic study of forty-eight cases. J Bone Joint Surg Am. 47, 1503-1513 (1965).
  7. Oensten, M., Lysholdm, J., Gillquist, J. Suture of fresh ruptures of the anterior cruciate ligament: A 5 year follow up. Acta Orthop Scan. 55, 270 (1984).
  8. Buckley, S. L., Barrack, R. L., Alexander, A. H. The natural history of conservatively treated partial anterior cruciate ligament tears. Am J Sports Med. 17 (2), 221-225 (1989).
  9. Noyes, F. R., Mooar, L. A., Moorman, C. T. 3rd, McGinnis, H. G. Partial tears of the anterior cruciate ligament. Progression to complete ligament deficiency. J Bone Joint Surg Br. 71 (5), 825-833 (1989).
  10. Bak, K., Scavenius, M., Hansen, S., Norring, K., Jensen, K. H., Jorgensen, U. Isolated partial rupture of the anterior cruciate ligament. Long term followup of 56 cases. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 5 (2), 66-71 (1997).
  11. Fritschy, D., Panoussopoulos, A., Wallensten, R., Peter, R. Can we predict the outcome of a partial rupture of the anterior cruciate ligament? A prospective study of 43 cases. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 5 (1), 2-5 (1997).
  12. Sommerlath, K., Odensten, M., Lysholm, J. The late course of acute partial anterior cruciate ligament tears. A nine to 15 year follow-up evaluation. Clin Orthop. , 281-2152 (1992).
  13. Barrack, R. L., Buckley, S. L., Bruckner, J. D., Kneisl, J. S., Alexander, A. H. Partial versus complete acute anterior cruciate ligament tears: the results of nonoperative treatment. J Bone Joint Surg Br. 72 (4), 622-624 (1990).
  14. Murray, M. M. Current status and potential of primary ACL repair. Clin Sports Med. 28 (1), 51-61 (2009).
  15. Gupta, A., et al. Single walled carbon nanotube composites for bone tissue engineering. J Orthop Res. 9, 1374-1381 (2013).
  16. Fruensgaard, S., Johannsen, H. V. Incomplete ruptures of the anterior cruciate ligament. J Bone Joint Surg Br. 71, 526-530 (1989).
  17. Sandberg, R., Balkfors, B., Nilsson, B., Westlin, N. Operative versus non-operative treatment of recent injuries to the ligaments of the knee. A prospective randomized study. J Bone Joint Surg Am. 69, 1120-1126 (1987).
  18. Lamar, D. S., Bartolozzi, A. R., Freedman, K. B., Nagda, S. H., Fawcett, C. Thermal modification of partial tears of the anterior cruciate ligament. Arthroscopy. 21 (7), 809-814 (2005).
  19. Indelli, P. F., Dillingham, M. F., Fanton, G. S., Schurman, D. J. Monopolar thermal treatment of symptomatic anterior cruciate ligament instability. Clin Orthop. 407, 138-147 (2003).
  20. Smith, D. B., Carter, T. R., Johnson, D. H. High failure rate for electrothermal shrinkage of the lax anterior cruciate ligament: a multicenter follow-up past 2 years. Arthroscopy. 24 (6), 637-641 (2008).
  21. Buda, R., Ferruzzi, A., Vannini, F., Zambelli, L., Di Caprio, F. Augmentation technique with semitendinosus and gracilis tendons in chronic partial lesions of the ACL: clinical and arthrometric analysis. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 14 (11), 1101-1107 (2006).
  22. Sekiya, J. K., Golladay, G. J., Wojtys, E. M. Autodigestion of a hamstring anterior cruciate ligament autograft following thermal shrinkage: a case report and sentinel of concern. J Bone Joint Surg Am. 82 (10), 1454-1457 (2000).
  23. Farquharson-Roberts, M. A., Osborne, A. H. Partial rupture of the anterior cruciate ligament of the knee. J Bone Joint Surg Br. 65, 32-34 (1983).
  24. Rue, J. P., Ghodadra, N., Bach, B. R. Jr Femoral tunnel placement in single-bundle anterior cruciate ligament reconstruction: a cadaveric study relating transtibial lateralized femoral tunnel position to the anteromedial and posterolateral bundle femoral origins of the anterior cruciate ligament. Am J Sports Med. 36, 73-79 (2008).
  25. Carey, J. L., Dunn, W. R., Dahm, D. L., Zege, S. L., Spindler, K. P. A systematic review of anterior cruciate ligament reconstruction with autograft compared with allograft. J Bone Joint Surg. 91, 2242-2450 (2009).
  26. Murray, M. M., Martin, S. D., Martin, T. L., Spector, M. Histological changes in the human anterior cruciate ligament after rupture. J Bone Joint Surg Am. 82, 1387-1397 (2000).
  27. Andrish, J., Holmes, R. Effects of synovial fluid on fibroblasts in tissue culture. Clin Orthop Relat Res. (138), 279-283 (1979).
  28. Murray, M. M., Spindler, K. P., Ballard, P., et al. Enhanced histologic repair in a central wound in the anterior cruciate ligamentwith a collagen-platelet-rich plasma scaffold. J Orthop Res. 25, 1007-1017 (2007).
  29. Carter, T. R. Anterior cruciate ligament thermal shrinkage. Clin Sports Med. 21, 693-700 (2002).
  30. Perry, J. J., Higgins, L. D. Anterior and posterior cruciate ligament rupture after thermal treatment. Arthroscopy. 16, 732-736 (2000).
  31. Cheng, M. T., Yang, H. W., Chen, T. H., Lee, O. K. Isolation and characterization of multipotent stem cells from human cruciate ligaments. Cell Prolif. 42 (4), 448-460 (2009).
  32. Matsumoto, T., et al. Isolation and characterization of human anterior cruciate ligament-derived vascular stem cells. Stem Cells Dev. 21 (6), 859-872 (2012).

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

再版と許可

タグ

ACL由来細胞細胞分離コラゲナーゼ消化細胞増殖PLAGAスキャフォールド走査電子顕微鏡免疫蛍光染色組織培養用ポリスチレン