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方法論記事

埋め込み型テレメトリを用いた意識のあるげっ歯類における持続的動脈圧モニタリングとテールカフ法との比較

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DOI:

10.3791/69652

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2025年11月14日

 ,  ,  , 
1Advanced Institute for Medical Sciences, Dalian Medical University, 2School of Basic Medical Sciences, Xi'an Jiaotong University, 3East China Normal University Health Science Center

この記事について

サマリー

このプロトコルでは、外科的移植、術後ケア、データ収集、およびテールカフ法との比較をカバーし、意識のあるげっ歯類の継続的で信頼性の高い動脈圧モニタリングのための埋め込み型テレメトリの適用について詳しく説明します。

要約

無線テレメトリは、オペレーター関連のアーティファクトを最小限に抑えながら、生理学的条件下で意識のあるげっ歯類の信頼性の高い継続的な動脈血圧(BP)モニタリングを可能にします。埋め込み型トランスミッターには圧力感知カテーテルが含まれており、移植手順は使用する種や研究の目的によって異なります。げっ歯類では、最も一般的なアプローチは頸動脈または腹部大動脈を介した移植です。頸動脈アプローチは、大動脈弓への直接経路であり、正確な中心圧測定を容易にするため、しばしば好まれますが、腹部大動脈アプローチは慢性研究にも広く利用されています。テールカフなどの非侵襲的方法と比較して、埋め込み型テレメトリはより正確で一貫した測定を提供するため、正確な長期血圧モニタリングを必要とする高血圧研究に特に役立ちます。このプロトコルでは、麻酔、外科的移植技術、術後ケア、および血行動態パラメーター (収縮期、拡張期、平均動脈圧、心拍数 (HR) ) を取得および分析するための手順と、テールカフ測定値との比較評価について詳しく説明します。

概要

意識のあるげっ歯類の動脈血圧 (BP) の正確かつ継続的なモニタリングは、心臓血管研究、特に動的な血行動態の変化が正確な測定を必要とする高血圧研究に不可欠です 1,2,3。テールカフ法などの従来の非侵襲的方法が広く使用されていますが、断続的なサンプリング、ストレス関連のアーティファクト、および概日血圧変動の捕捉の失敗によって制限されています4,5。これらの問題は精度と再現性を損ない、長期の血行動態研究での使用を制限します6.

無線テレメトリ システムは、より正確で一貫した血圧測定を提供します。これにより、自由に動く動物の継続的で高品質の血圧モニタリングが可能になり、オペレーターの取り扱いによるばらつきや拘束によって引き起こされるストレスが排除されます 7,8,9,10。このアプローチは、血圧上昇の開始、大きさ、安定性、および概日パターンを把握することが重要な高血圧研究で特に有用です 11,12,13。さらに、継続的なテレメトリにより、疾患進行中の一時的な変動の検出が可能になり、従来の尾カフ法では提供できない利点である薬理学的介入の詳細な評価が提供されます14。

無線テレメトリ システムは、圧力感知カテーテルを備えた埋め込み型送信機を使用し、種と研究デザインに基づいて選択された解剖学的部位に外科的に配置されます。マウスでは、カテーテルは通常、安定した信号を確保するために頸動脈を介して大動脈弓に挿入されます9。高齢または体重の多いマウスでの長期研究などの特定の実験では、腹部大動脈への配置が好ましい場合があります。ラットでは、腹部大動脈は信頼できる長期記録の標準部位です15。これらの移植戦略により、収縮期、拡張期、平均動脈圧、および心拍数 (HR) を正確に測定できるため、テレメトリ システムは高血圧モデルの表現型分類と治療介入の評価のための貴重なツールになります16。

このプロトコルでは、麻酔、外科的移植 (カテーテル留置オプションを含む)、術後ケア、データの取得と分析の詳細な手順の概要と、テールカフ法との比較評価について説明します。

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プロトコル

すべての実験手順は、西安交通大学の施設動物管理および使用委員会 (IACUC) によって承認されました (No.XJTUAE2025-2784)であり、実験動物の世話と使用に関する制度的および国のガイドラインに従って実施されました。実験には、生後8週間の雄の自然高血圧ラット(SHR)とC57BL/6マウスを使用した。

1.動物の準備

  1. 飼育条件:すべての動物を環境管理された部屋に収容します。周囲温度を21°C、相対湿度60%に維持します。12時間のライトサイクル/12時間の暗サイクルを設定します。標準的な実験室用食料と水を 自由に提供します。
  2. テレメトリ移植の推奨重量:適切なカテーテル移植長を確保し、テレメトリトランスミッターのサイズに対応するために、体重20〜35 gのマウスを選択します(HD-X11:33 x 33 x 14 mm;HD-S10:42 x 42 x 18 mm)。頸動脈カテーテル法には20g以上のマウスを選択し、腹部大動脈移植には30g前後のマウスを使用します。ラットの場合は、適切なフィット感を確保し、外科的合併症を最小限に抑えるために、体重≥ 170 g の動物を選択します。ラットには腹部大動脈移植アプローチを使用します。
    注: この体重範囲は、慢性的な遠隔測定モニタリングのための外科的実現可能性と動物福祉への配慮のバランスをとっています。

2.術前の準備

  1. テレメトリインプラントモデル検証:マウスの場合は、HD-X11トランスミッターを使用します。ラットの場合は、HD-S10送信機を使用してください。送信機の型番とコーディングを確認します(図1)。
  2. 外科的無菌準備:手術前に、手術領域を徹底的に消毒し、121°Cで20分間オートクレーブ滅菌してすべての器具を滅菌します(補足図1A)。滅菌ドレープ、外科用生理食塩水、および必要な試薬を準備します(材料表)。適切な個人用保護具 (手袋、マスク、キャップ) を着用し、器具を滅菌トレイに配置し、使用前に無菌指標を確認してください。手順全体を通して厳格な無菌技術を維持してください。手術後は、汚染された物質を適切に廃棄し、再利用可能な器具を迅速に再滅菌してください。
  3. 送信機の前処理
    1. 透明なプラスチックトレイから白いパッケージカバーをはがして、滅菌パッケージを開きます。
    2. 透明なトレイカバーを持ち上げ、カテーテルチャネルに滅菌生理食塩水を注ぎ、すぐにカバーを元に戻します。無菌状態を維持するために、送信機やインナートレイとの接触を避けてください。
    3. パッケージを脇に置き、カテーテルを滅菌野に移す前に、カテーテルを15分間水和させます。カテーテルの先端が均一に半透明でゲルが充填されているように見えるようにします。不透明または白いチップが水分補給が不十分であることを特定し、続行する前に水分補給してください。
    4. 白いカバー(校正データを含む)と滅菌パッケージ(返品の可能性のために)を保持してください。
      注: カテーテルは親水性があるため、適切な水分補給を確保してください。非水和状態で移植すると、カテーテルが血液から水分を吸収し、拡張につながります。この拡張により、カテーテル先端にゲルが後退し、ボイドが形成され、血栓形成のリスクが高まります。
  4. 麻酔導入
    1. 吸入麻酔:動物を誘導チャンバーに入れ、酸素中の5%イソフルランで0.5 L /分の流量で麻酔します。正心反射が失われたら、動物を温度制御された手術プラットフォーム(37°C)に移し、手順全体を通して0.5 L / minの酸素流量で2%イソフルランを供給するノーズコーンによって麻酔を維持します17。
    2. 注射麻酔:体重20gあたり20μLの用量でゾレチル-キシラジン混合物(1:2 v / v)を筋肉内注射することによりマウスを麻酔します18。
    3. 麻酔下での乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を使用してください。
  5. 手術部位の準備:手足をテープで固定し、脱毛クリームを使用して首の毛を取り除き、その部分をきれいに拭きます。3つの円形スクラブを使用して切開部位を臭化ベンザルコニウムで消毒し、続いて滅菌ドレープを置いた後、ポビドンヨードで2回スクラブします。

3. 外科用遠隔測定送信機の埋め込み

注:頸動脈または腹部大動脈カテーテル法のいずれかを介して外科的移植を行います(図2)。

  1. 頸動脈移植
    1. あごの下の皮膚の正中線に沿って1〜1.5 cmの切開を行い、鈍的解剖を使用して両側の皮下空間を作成します。
    2. 鈍器を使用して耳下腺と顎下腺をそっと引っ込め、気管の筋肉を露出させます。鈍的解剖を使用して、気管に隣接する左頸動脈を特定します(図3A)。
    3. 頸動脈を周囲の組織から解放します。付随する迷走神経(特徴的な白い鎖)を動脈壁から10 mmのセグメントにわたって慎重に解剖して、分岐部を露出させます。
      注:迷走神経は自律神経調節に不可欠であるため、機能障害を避けるために、牽引せずに迷走神経を注意深く解剖します。
    4. 分離された頸動脈セグメントの下に生理食塩水に浸した非吸収性の6-0縫合糸を3本通し、それぞれ頭蓋、尾部、および中央の位置に配置します(図3B)。血管損傷を避けるために、血管を慎重に持ち上げてください。
    5. 頸動脈分岐部に隣接して前方の縫合糸を配置し、永久的な結び目で血管をしっかりと結紮します。尾側縫合糸は一時的な血管閉塞を提供し、中央縫合糸は挿入後のカテーテル安定化のための緩いループを形成します。血管クランプで縫合糸の両端を持ち上げて血管を拡張させます(図3C)。
      注: 内頸動脈と外頸動脈の分岐は、移植されたカテーテルの適切な挿入長さを決定するための重要なランドマークとして機能します。
    6. 1mLのシリンジ針の先端を約100°に曲げ、頭蓋結紮線近くの動脈壁に慎重に穴を開けます。針をガイドとして使用してカテーテルを動脈に進め、カテーテル保持鉗子で血管に沿ってそっとスライドさせます(補足図1B-C)。
    7. 安定した手で針を引き抜き、細い鉗子と交換して、カテーテルを血管の奥深くまでゆっくりと進めます。カテーテルの深さマーカーを監視し、所定の位置に達したら挿入を停止します(補足図2A-B)。中央の縫合糸を締めて、カテーテルを所定の位置に固定します。追加の固定のために遠位縫合糸をしっかりと結びます。近位縫合糸をカテーテルの外側部分に巻き付け、脱落を防ぐために結紮します。縫合糸の端をできるだけ短くカットします(図3D)。
    8. マーカーを使用してカテーテルの深さを確認し、大動脈弓に到達していることを確認します。穿刺部位やカテーテル周辺に血漏れや泡立ちがないか確認してください。漏れが発生した場合は、直ちに是正措置を講じてください。カテーテルをそっと引っ張って、縫合糸または接着剤で所定の位置にしっかりと固定されていることを確認します。
    9. 鈍い鉗子を使用して、切開部から左腹部に向かって皮下ポケットを作成します。200 μLの予熱(37°C)生理食塩水を注入してスペースを拡大し、テレメトリ送信機をポケットに挿入し、左腹部の皮下に配置します(図4A-C)。
    10. オプション:ECGリード(HD-X11)を備えたインプラントを使用する場合は、このステップを実行します。無色の心電図リード線を右胸筋の上に皮下に置き、赤いリード線を左下腹部皮下腔に固定します。創傷の裂開を防ぐために、断続縫合糸で切開部を閉じます(図4D-E)。
      注:示されている手順は、安楽死させられた動物で行われました。すべての生存手術は、動物福祉と実験の成功を確実にするために、無菌ドレープを備えた厳格な無菌条件下で行われました。
    11. 閉じた切開部を清潔に保ち、並んでください。急速な腫れ、血腫の形成、縫合糸ラインからの血液の浸透など、活動性の皮下出血がないか確認してください。
  2. 腹部大動脈移植
    1. 動物を仰臥位に置き、頭を外科医から遠ざけます。
    2. 3〜4 cmの正中線の腹部皮膚切開を行い、続いて皮膚と腹壁の間の鈍的解剖を行います。
    3. 正中線に沿って白線を切開し、湿らせたガーゼで腸をそっと引っ込めて後腹膜腔を露出させます。
    4. 下大静脈に隣接する拍動性腹部大動脈を特定し、次に綿棒で周囲の脂肪/結合組織を注意深く解剖して、左腎静脈から腸骨分岐部(下)までの大動脈セグメントを露出させ、すべての腹側表面組織を除去します(図5A)。
      注:腹側大動脈表面を横切る左腎静脈は、近位大動脈動員の重要なランドマークとして機能します。
    5. 生理食塩水で湿らせた 4-0 非吸収性縫合糸を 2 本、孤立した腹部大動脈の下に通します。頭蓋縫合糸を左腎静脈と大動脈の交差点に、尾側縫合糸を腸骨分岐部に配置します。両方の縫合糸を一時的に締めて血流を閉塞します(図5B)。
    6. 5 mLのシリンジ針の先端を約100°に曲げてから、尾腸間膜動脈のすぐ下の大動脈壁に注意深く穴を開けます。針をガイドとして使用し、専用のカテーテル保持鉗子を使用してカテーテルを入口部位から大動脈に進め、血管に沿って吻側にゆっくりとスライドさせます。
    7. 針を引き抜き、遠位先端が前閉塞縫合糸でわずかな抵抗に遭遇するまで、カテーテルを頭側に慎重に前進させます(図5Cおよび補足図2C-D)。
    8. 組織接着剤を1滴カテーテル挿入部位に塗布し、30秒間硬化させます。挿入部位の出血を注意深く監視しながら、尾側牽引縫合糸を徐々に解放します(補足図3A)。カテーテルの先端が左腎静脈の頭蓋側に配置されていることを確認します。
    9. 5 mm x 3 mmの線維膜パッチを準備し、カテーテル挿入部位の上に配置し(補足図3B)、生体適合性接着剤で固定してカテーテルを安定させます(図5D)。
    10. 鮮明な視覚化の下で、穿刺部位またはカテーテルの周囲からの活発な血液漏れを確認します。気泡や浸透が発生した場合は、直ちに停止し、是正措置を講じてください。カテーテルをそっと引っ張って、縫合糸や接着剤によって所定の位置にしっかりと固定されていることを確認します。
      注:高血圧動物に処置を行うときは、非外傷性クランプから始めてください。段階的なクランプリリースプロトコルを使用して圧力を徐々に回復します:最初に遠位クランプを解放して低圧下でシールをテストし、止血を確認した後にのみ近位クランプを解放します。
    11. 腹部ガーゼをすべて取り外し、腸の位置をそっと変えます。予熱(37°C)した生理食塩水で腹腔をすすぎ、カテーテル挿入部位の止血を確認します。
    12. トランスミッターを腸ループの間に腹腔内に配置し、6-0の非吸収性縫合糸を使用して壁側腹膜に固定します(図6A)。
    13. オプション:ECGリード(HD-X11)を備えたインプラントを使用する場合は、このステップを実行します。18 Gの針を腹壁の右側切開部(動物の右側)近くから腹腔に挿入し、内臓を避けます。マイナスリード(透明カテーテル)を針に通し、腹部から外側に通します。リードの位置を維持しながら針を引き抜きます。反対側で手順を繰り返して、陽性リード(赤いカテーテル)を外部にします(図6B-C)。
    14. 腹壁閉鎖:5-0または6-0の非吸収性縫合糸で単純な中断パターンを使用して腹壁を縫合します。
    15. リードの準備と配置: 余分なリード長を切り取り、小さなコイルを残します。~1 cmの端子シリコンを取り外してワイヤーを露出させ、5-0/6-0縫合糸でチューブを固定します。正のリードを左尾肋骨にトンネルし、負のリードを右胸筋にトンネルし、それぞれをステイ縫合糸で固定します(図6D)。
    16. 創傷の裂開を防ぐために、断続縫合糸で切開部を閉じます(図6E)。
      注: この研究では、デモンストレーションのために安楽死させた動物に対して手順を実行します。すべてのサバイバル手術は、動物福祉と処置の成功を確保するために、無菌ドレープを備えた厳格な無菌条件下で実施します。

4.外科的回復

  1. 麻酔終了:ガス麻酔を中止し、送達装置を取り外します。動物を37°Cの加温パッドに移して、自発的な動きが完全に再開するまで正常体温を維持します。動物が胸骨の横臥を維持するのに十分な意識を取り戻すまで、動物を放置しないでください。
  2. 術後鎮痛:術後の鎮痛のためにメロキシカムを5 mg / kg体重で皮下投与します19、20、21、22。
    注: 痛みを積極的に予防するために、手術前に先制鎮痛を投与する場合があります。
  3. 回復モニタリング:手術後のマウスの痛みや感染症を体系的に監視します。マウスしかめっ面スケール (MGS) を使用して、眼窩の引き締め、鼻の膨らみ、頬の膨らみ、耳の位置、およびひげの変化をスコアリングすることにより、自発的な痛みを評価します。体重減少、食物や水分の摂取量の減少、猫背の姿勢、立毛、活動の減少、社会的孤立など、毎日の臨床観察を記録します。手術部位に発赤、腫れ、熱、または分泌物がないか毎日検査します(補足表1)。異常な行動または外観が観察された場合は、事前に定義された人道的エンドポイントに従って鎮痛剤を投与するか、獣医師に相談してください23、24、25、26、27。完全に回復した後(通常は手術後10日)、継続的なデータ取得のために、テレメトリレシーバープレート上の標準ケージにマウスを個別に収容します。

5. データの記録と分析

  1. 送信機の埋め込みと操作: 強力な磁石を使用して埋め込み型送信機をオンまたはオフに切り替えて制御します。近くの FM ラジオに可聴信号が存在することを確認して、起動が成功したことを確認します。
  2. トランスミッタの構成とデータ収集
    1. ソフトウェア(Ponemah v5.00)を使用してデータを取得します。設定オプションについては、 補足ファイル 1 を参照してください。
    2. Ponemah v5.00 を開くか、新しい実験を作成するか、既存の実験を開きます。[Configuration] > [Hardware ] に移動し、[ Edit APR Configuration ] をクリックして空のレシーバを選択します。
    3. ハードウェア >MX2構成の編集 を開き、インプラントを接続します。 インプラントに関連付けられた受信機 を選択し、名前、インプラントモデル、信号タイプ、サンプルレート、シリアル番号のパラメータを設定します。
    4. [ HD インプラントの検索] をクリックします。磁石を使用してインプラントを作動させ、システムが信号を認識するまで指定された検出プレートに配置します。 [保存] をクリックして確認します。
    5. 被験者名、性別、種を設定して 被験者詳細 を設定し、 インプラントの種類に対応する検出項目を選択します。
    6. ターゲット送信機を選択し、クリックして再生ボタン(三角形のイニシャルシンボル)を選択して信号取得を開始します。[OK] をクリックして確定します。
    7. クリック 一時停止 録音 を終了するボタン。
    8. 実験データ収集のために、実験要件に従ってサンプリングします。
  3. データ分析
    1. テレメトリ データを読み込みます。ソフトウェアで、[ファイル]> [ データのロード]に移動します。[ ターゲットパラメータ]を選択します。 フォームリストから送信機 を選択し、記録された開始/停止時間に従って分析時間枠を設定します。
    2. BP オフセットの決定: サンプリング終了前の 30 分間の期間からデータを抽出します。値を平均±SEMとして計算して報告します。
    3. 脈圧、収縮期血圧(SBP)、拡張期血圧(DBP)、平均動脈圧(MAP)、心拍数、活動数などの心血管パラメータをエクスポートします(図7A)。テールカフ法5、6、28 (補足ファイル2)を使用して、体積圧記録(VPR)の原理を介してマウスの血圧を測定し、分析用の圧力曲線を生成します(図7B)。
    4. 統計分析:SEM±平均としてデータを表現します。GraphPad Prism 8.0を使用して統計分析を実行します。対応のないスチューデントの t 検定を使用してグループ平均間の差を評価し、二元配置分散分析とそれに続くボンフェローニの事後検定によって 24 時間連続データを分析します。0.05

6. 送信機の回収

  1. 標準的な技術を使用して動物を安楽死させます。頸部脱臼はカテーテルを損傷する可能性があるため、使用しないでください。
  2. 送信機を含む皮下ポケットを細い手術用ハサミで切開します。ポケットの尾端から始めて、カテーテルとの接触を避けて切開部を頭蓋側に伸ばします。送信機をポケットから取り外し、カテーテルを損傷しないように注意しながら、腹側頸部領域に向かって頭蓋側に切開を続けます。
  3. カテーテルをすべての結合組織から解放します。カテーテルの偶発的な切断を防ぐために、送信機をそっと持ち上げて動物の頭の近くの手術野に置きます。
  4. 細い外科用ハサミで腹部の正中線を切開し、頭蓋側に伸ばして横隔膜と胸骨を切開します。胸郭の外側に両側の切開を行い、胸腔を完全に露出させます。
  5. 心を特定します。白い組織として見える胸腺を注意深く解剖して取り除き、大動脈弓を視覚化します。カテーテルは胸腺の下の大動脈弓内にあるため、下にある血管の損傷を避けるために、解剖中は胸腺のみをつかんでください。
  6. 胸腺除去後に大動脈弓を見つけます。周囲の組織からそっと隔離し、アーチの下に先端の細い鉗子を置き、カテーテルの先端を見つけます。カテーテルを損傷しないように注意しながら、この部位で大動脈弓を切開してカテーテルの先端を露出させます。
  7. カテーテルの先端をトレースし、結紮縫合部位まで総頸動脈に向かって逆行する大動脈を慎重に切開します。縫合糸の結び目をそっと切断して挿入点を露出させ、カテーテル全体を取り出します。

7. 送信機の現場洗浄と再滅菌

  1. 組織と破片の除去:1%ターガザイム溶液を調製します。トランスミッターを溶液に24時間浸して、血液、血清タンパク質、組織破片を除去します。流水でよくすすいでください。
  2. 除染: ヒュームフードの下で作業します。密閉された50 mL遠心分離管内のグルタルアルデヒドにトランスミッターを24時間浸漬します。滅菌生理食塩水でよくすすぎ、滅菌パッケージに入れて保管してください。

8. Regelシリンジの準備とカテーテル充填

  1. 清潔な手袋を着用してください。針先から少量のゲルを発現することにより、シリンジから空気をパージします。
  2. HD-S10の場合は、針先をカテーテルの端に触れずに挿入します。残留材料の表面の下に進めます。先端が完全に満たされ、気泡や破片がなくなるまで針をゆっくりと引き抜きながら、穏やかな圧力でゲルを注入します。
  3. HD-X11の場合は、針の挿入を避けてください。無菌表面にゲルの小さな液滴を置きます。カテーテルバルブをそっと圧縮して、空気または血栓を排出します。オリフィスをゲル液滴に接触させます。毛細管現象と負圧による逆行性充填を可能にするためのリリース。

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結果

C57BL/6マウスにおける血圧と心拍の連続遠隔記録
8週齢の雄C57BL / 6マウスは、頸動脈カニューレ挿入(CAC)または腹部大動脈カニューレ挿入(AAC)による伝達物質移植を受けるように無作為に割り付けられました。回復の 10 日後、ベースライン血圧が記録されました。24 時間の連続モニタリングにより、予想される概日リズムで安定した信頼性の高い信号が確認され、日内値よりも夜間値がわずかに高いことが示されました。CACと比較して、AACはSBPが高く(図8A)、DBPに差はなく(図8B)、MAPがわずかに増加し(図8C)、明るい段階でも暗い段階でもHRに差がなかった(図8D)。 補足図4A-Dに示すように、SBP、DBP、MAP、およびHRの分あたりの平均も示されています。連続記録から導き出された毎日の平均SBP(

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ディスカッション

プロトコル内の重要なステップ
埋め込み型テレメトリは、意識的で自由に動くげっ歯類における継続的で忠実度の高い心血管モニタリングのゴールドスタンダードとして広く認識されています31,32。重要なステップは、実験目標に基づいて、頸動脈または腹部大動脈のいずれかのカテーテル移植部位を選択することです。頸動脈移植は技術的にシンプルで、上行大動脈へのカテーテルの進行を可能にし、忠実度の高い拍動圧の記録を行うことができ、急性期の研究や中心圧測定に適しています。ただし、このアプローチは長期研究で脳灌流に影響を与える可能性があり、血栓塞栓性合併症を防ぐために慎重な抗凝固療法が必要です33、34、35、

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開示事項

著者らは開示するものは何もない。

謝辞

この研究は、中国自然科学基金(助成金82230012、N.Wangへの81830015、助成金91939108、L.Xiaoへの82570478)によって支援されました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
APR-1 大気圧基準データサイエンス・インターナショナル(DSI)APR-1 環境圧参照は、各DSIテレメトリーシステムの必須コンポーネントであり、圧力測定が監視されるため、テレメトリーインプラントが取得する絶対(真空に対する)測定値への圧力変化の影響を動的に補正します
セルロースパッチキットデータサイエンス・インターナショナル(DSI)370-0036-001
グルタルアルデヒドメトリサイド89132-856
グラーフェ鉗子は湾曲し、歯付きデータサイエンス・インターナショナル(DSI)11054-10
インプラント(HD-S10)データサイエンス・インターナショナル(DSI)825969
インプラント(HD-S10)データサイエンス・インターナショナル(DSI)910265
インプラント(HD-X11)データサイエンス・インターナショナル(DSI)1315981
インプラント(HD-X11)データサイエンス・インターナショナル(DSI)1315986
イソフルランRWDライフサイエンスR510-22-10
レクサー・ベビー・シザーズ まっすぐ、10 cmデータサイエンス・インターナショナル(DSI)14078-10
マトリックス2.0(MX2) データサイエンス・インターナショナル(DSI)Matrix 2.0(MX2)は、PhysioTelとPhysioTelのHDテレメトリーインプラントと取得コンピュータ間の通信を管理します。
モリアの楽器ケースデータサイエンス・インターナショナル(DSI)20311-21
生理食塩水ケロン製薬C1250213B1
オルセン・ヘガー針ホルダー-超繊細データサイエンス・インターナショナル(DSI)12002-12
ペントバルビタールナトリウムシグマ・オルドリッチP3761
RPC-1受信機データサイエンス・インターナショナル(DSI)34668RPC-1受信機は、受信機の上に置けるプラスチックケージに収容された動物のモニタリングに最もよく使われます。RPC-1受信機は、デジタルテレメトリーで送信されたデータを信頼性の高い受信可能にし、送信パターンの方向性によるドロップアウトを最小限に抑えるために直角に配置された2つの受信アンテナを備えています。
RPC-1受信機データサイエンス・インターナショナル(DSI)34669
テルガザイムシグマ・オルドリッチZ273287
血管カニュレーション鉗子、長さ11cm。データサイエンス・インターナショナル(DSI)00608-11
血管拡張器 - 45度の斜め先端、長さ13.5 cmデータサイエンス・インターナショナル(DSI)00276-13
Vetbond組織接着剤ミネソタ鉱業製造会社(3M)1469SB
キシラジン20シグマ・オルドリッチX1251
ゾレティル50バーバック研究所

参考文献

  1. Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Montani, J. P. Characteristics of 24 h telemetered blood pressure in enos-knockout and c57bl/6j control mice. J Physiol. 549 (Pt 1), 313-325 (2003).
  2. Braga, V. A., Prabhakar, N. R. Refinement of telemetry for measuring blood pressure in conscious rats. J Am Assoc Lab Anim Sci. 48 (3), 268-271 (2009).
  3. Morgan, T. O., et al. Cardiac hypertrophy depends upon sleep blood pressure: A study in rats. J Hypertens. 18 (4), 445-451 (2000).
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