Name: ライブの磁気共鳴分光法キイロショウジョウバエマジックアングルスピニングを使用して (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-04-15T16:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 33 s
Description: 学ぶHRMAS ¹H-MRS法による生きたDrosophila melanogasterの分子特性評価。14.1テスラ分光計を用いて非侵襲的に代謝プロセスを解析し、神経科学・生化学研究における生体試料の詳細な分子情報取得に貢献します。

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この作品は、ロナルドG.トンプキンス（A.アリアTzika、取締役に衛生研究所（NIH）の助成金ローレンスG. Rahme、衛生研究所（NIH）センターグラント（P50GM021700）の国立研究所研究所のAI063433の国立研究所によって部分的にサポートされていましたA.アリアTzikaの子供の研究助成金（＃8893）のためのNMRのコア）、およびシュリナーの病院。我々はDionyssios Mintzopoulos博士に感謝するこのプロトコルとOvidiu C. Andronesi博士号を開発の初期段階における支援のためのTOBSYパルスシーケンスの支援のための。

パート1：HRMAS測定のための準備ショウジョウバエ <ol><li>標準flylab手順1を使用して 、3日間、新たにeclosingハエを収集し、新鮮なフライ食品を含むバイアルを飛ぶためにそれらを転送する。ハエが直前に実験に5-8日の古いとなるように5日間に収集ハエをインキュベートする。唯一の性別は、（通常は男性）の実験に使用されます。 </li><li>健康的な使用、無傷の野生型は、例えば外傷または遺伝的にハエ1を変更扱わと比較して飛ぶ。 </li><li>実験に先立って、フライ食品24時間の一部（〜0.2ミリリットル）を含む2ミリリットルチューブに単一のハエを置きます。これらの管は、火炎加熱インスリンの注射針を使用して作られたチューブのカップに穴を負うものとします。 </li><li>高精度のバランスを使用してフライの挿入前と直後にチューブの重量を測定し、後者からの最初の値を減算することにより、各フライの重みを定義する。シングル男性のフライは、通常、0.7から1ミリグラムの重量を量る。 </li></ol>パート2：HRMASのローターの準備。 <ol><li>フライの内側に麻酔する分未満の氷の上に単一のチューブを置きます。 </li><li>氷上に置かれたアルミ箔の層の上にフライを置くとハエの傷害を回避しながら、完全なハエの挿入を確実にするために柔らかいブラシを使用してNMRローター挿入の半球状の中空空間にそっとフライを押してください。 </li><li>ローターのローターを挿入し、底部（図1を参照）の間にハエを見つけるために酸化ジルコニウム（ZrO 2）ローターチューブ（直径4mm、50μlの）への挿入を置きます。 </li><li> δトリメチルシリル-プロピオン- 2 ,2,3,3 - D4酸、分子量= 172、：フライとTSP標準溶液（TSPとの間の接触を防ぐために、ネジ付きインサートを閉じて（図1を参照）パラフィルムをかぶせます= 0.00 ppmの、重水- D 2 O、共鳴の化学シフトと定量の両方のリファレンスとして機能する）で50mMの。 </li><li>ローター挿入の上にTSP標準溶液の8μlを添加します。 （図1参照）。 </li><li>固定し（図1参照）トップキャップとローターで設定全体を締めます。 </li></ol>パート3：HRMASデータ収集<ol><li> HRMASプローブにローターを紹介し、マジック角54.7 °（図1参照）に配置します。 </li><li> MASの空気圧ユニットとの組み合わせでBTO - 2000ユニットで4℃で温度を設定します。麻酔を維持するために分光器中にハエを4℃で保存されています。 </li><li> 2 kHzのMASでHRMAS 1 H MRS紡糸速度を設定します。 </li><li> MASのスピードコントローラ（回転周波数）が2.0 ± 0.001 kHzでMASの回転数を安定させます。 </li><li>磁石の準備のための：チューニングと最適なパフォーマンスとシムスペクトルの最適な品質のための磁石のコイルと一致している。 </li><li>にT 2のフィルタとして機能する[N -買収- - （ττ- 180 °）90 °]、カーパーセル- Meiboom -ギル（CPMG）スピンエコーパルスシーケンス2、同期ローターを用いて一次元1 Hスペクトルを取得する全てのサンプルで一次元のデータを取得するために、スペクトルの広がり1 H NMRシングルフライスペクトルを削除します。 MASの回転数（2 kHz）にパルス間の遅延時間（τ=500μsの）を同期する。 32,768（32K）のデータ点で256でトランジェントの数を設定します。アクイジション時間9分。 </li><li>断熱パルスを3でTOBSYシーケンスを使用して、すべてのサンプルの2次元（2D）1 H - 1 H HRMAS NMRシングルフライスペクトルを取得する。買収のパラメータは次のとおりです。2kのデータポイントの直接の次元（11 ppmのスペクトル幅）、1秒リラクゼーションディレイの間に水プレ飽和、インクリメントあたり8スキャン、128ずつ、2秒の総繰り返し時間、45ミリ秒混合時間、および合計獲得29分の時間。 </li></ol>パート4：データ処理/解析<ol><li> MestReCソフトウェアを使用して、標本のMRspectra（Mestrelab研究、www.mestrec.com）を分析する</li><li> 0.5 Hzのライン拡大アポダイゼーション関数を使用し、前にフーリエ変換のすべてのHRMAS 1 HのFIDがに適用されます。 </li><li> δ= 0.0 ppmの（外部標準）でTSPに関連してMRスペクトルを参照する。 </li><li>手動でのスペクトル位相と前のピーク面積の計算にベースラインの広範な成分を減算するホイッタカーのベースラインの推定を適用する。 </li><li> MestReCソフトウェアを使用してピーク面積を推定する。に関する規模のピーク高さはそれぞれ取得したスペクトル（TSPピークの高さ= 1）のためにTSPに。の間に、グループの比率に、グループ内で比較するt検定（両側検定、P &lt;0.05）を使用してください。 </li><li> 2D TOBSYのプロセスパラメータは次のとおりです：両方の次元QSINE = 2窓関数、直接の次元と二次元目、2番目の次元の両方の次元とベースライン補正の位相補正に1kにゼロ充填した2kポイントとFT。 </li><li>スパーキープログラム（TDゴダードとDGネラー、スパーキー3、USCF、使用して2次元スペクトルを得る<a href="http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/">http://www.cgl.ucsf.edu/</a>ホーム/スパーキー/） </li></ol>パート5：ライブキイロショウジョウバエからの代表的なスペクトルハエ手順は、ライブキイロショウジョウバエのハエから再現性のスペクトルを収集することを許可上記の。野生型（WT）オレゴン- Rで取得した図2と図3に代表的なMRスペクトルが飛ぶ。図2プレゼント1D 1 H HRMAS CPMGスペクトルを。主要な脂質成分[C H 3（0.89 ppm）を、（C H 2）N（1.33 ppm）を、C H 2 C - CO（1.58ppm）、C H 2 C = C（2.02 ppm）を、C H 2 C = O（2.24 ppm）を、C H = C H（5.33 ppm）の]、グリセロール（1,3 - C H 4.10 ppmと4.30 ppmの、2 - CH 2 5.24 ppm）を、と小さな代謝物：β-アラニン（β-アラ、2.57 ppm）を、酢酸（AC、1.97 ppm）を、ホスホコリン（PC、3.22 ppm）とphophoetanolamine（PE、3.23ppm）を検出し、事前の報告4、5に準拠して割り当てられていました。 2.02 ppmのシグナルは、モノ不飽和脂肪酸（すなわち、パルミトレイン）のC H2 - CH = CHの部分のメチレンプロトンに割り当てられていた。不飽和脂肪酸は、- CH = CH -基のプロトンによって生産さ5.33 ppmのシグナルにより同定した。割り当てられていないか、1Dスペクトルを使用して表示されていたことが、小さな代謝物は2次元1 H - 1 Hを用いて検出した TOBSY HRMAS（図3参照）。 <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1実験では生体内での設定 重水14.1 T.外部標準トリメチルシリルプロピオン- 2 ,2,3,3 - D4酸（TSP / D 2 O）でのライブショウジョウバエの調査のためのHRMAS 1H MRS。 HRMASプローブでマジック角での回転子位置：正方形で。 <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。ライブキイロショウジョウバエ重量フライの生体 1D HRMAS 1 H CPMGスペクトルで 。脂質成分：C H 3（0.89 ppm）を、（C H 2）N（1.33 ppm）を、C H 2 C - CO（1.58ppm）、酢酸（AC）、C H 2 C = C（2.02 ppm）を、C H 2 C = O（2.24 ppm）を、β-アラニン（β- Ala）を、ホスホコリン（PC）とphophoetanolamine（PE）、グリセロール（1,3 - C H 4.10、4.30 ppmの、2 - C H 2 5.22 ppm）の、C H = C H（5.33 ppm）を。 <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。 生体 2D 1H - 1H の 14.1 T.小型代謝と脂質成分のライブキイロショウジョウバエ重量フライのTOBSY HRMASスペクトルが同定された。代謝産物：アラニン（Ala）、β-アラニン（β- Ala）を、アルギニン（Arg）、グルタミン（Gln）、グルタミン酸（GLU）、PCホスホコリン（PC）、phophoetanolamine（PE）、タウリン（TAU）、α-グルコース（α-グルコース）とグリセリン。脂質成分：C H 3（0.89 ppm）を、（C H 2）N（1.33 ppm）を、C H 2 C - CO（1.58 ppm）を、C H 2 C = C（2.02 ppm）を、C H 2 C = O （2.24 ppm）を、C H = C H（5.33 ppm）を。

<ol><li>Apidianakis, Y., Rahme, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+melanogaster+as+a+model+host+for+studying+Pseudomonas+aeruginosa+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Drosophila melanogaster as a model host for studying Pseudomonas aeruginosa infection.</a> Nat Protoc. 4, 1285-1294 (2009).</li>
<li>Meiboom, S., Gill, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+spin-echo+method+for+measuring+nuclear+relaxation+time%5BTitle%5D)+AND+%22Rev+Sci+Instrum%22%5BJournal%5D)">Modified spin-echo method for measuring nuclear relaxation time.</a> Rev Sci Instrum. 29, 688-691 (1958).</li>
<li>Andronesi, O. C., Mintzopoulos, D., Struppe, J., Black, P. M., Tzika, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solid-state+NMR+adiabatic+TOBSY+sequences+provide+enhanced+sensitivity+for+multidimensional+high-resolution+magic-angle-spinning+1H+MR+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson%22%5BJournal%5D)">Solid-state NMR adiabatic TOBSY sequences provide enhanced sensitivity for multidimensional high-resolution magic-angle-spinning 1H MR spectroscopy.</a> J Magn Reson. 193, 251-258 (2008).</li>
<li>Astrakas, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proton+NMR+spectroscopy+shows+lipids+accumulate+in+skeletal+muscle+in+response+to+burn+trauma-induced+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Faseb+J%22%5BJournal%5D)">Proton NMR spectroscopy shows lipids accumulate in skeletal muscle in response to burn trauma-induced apoptosis.</a> Faseb J. 19, 1431-1440 (2005).</li>
<li>Fan, T. W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolite+profiling+by+one-+and+two+dimensional+NMR+analysis+of+complex+mixtures%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Nuc+Magn+Reson+Spec%22%5BJournal%5D)">Metabolite profiling by one- and two dimensional NMR analysis of complex mixtures.</a> Prog Nuc Magn Reson Spec. 28, 161-219 (1996).</li>
<li>Null, B., Liu, C. W., Hedehus, M., Conolly, S., Davis, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution%2C+in+vivo+magnetic+resonance+imaging+of+Drosophila+at+18.8+Tesla%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">High-resolution, in vivo magnetic resonance imaging of Drosophila at 18.8 Tesla.</a> PLoS One. 3, e2817-e2817 (2008).</li>
<li>Zektzer, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+signal+to+noise+in+high-resolution+magic+angle+spinning+total+correlation+spectroscopy+studies+of+prostate+tissues+using+rotor-synchronized+adiabatic+pulses%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Improved signal to noise in high-resolution magic angle spinning total correlation spectroscopy studies of prostate tissues using rotor-synchronized adiabatic pulses.</a> Magn Reson Med. 53, 41-48 (2005).</li>
</ol>

動物実験は、マサチューセッツ総合病院動物実験の研究レビュー委員会の委員会が定めるガイドラインおよび規則に従って行った。

果実における in vivo MRI での実現可能性の最近の報告を除いて6ハエ、 ショウジョウバエを用いるin vivo MRS研究ではまだ報告されていない。現在のプロトコルでは、我々は生物学的に重要な分子を検出するためのin vivoで HRMAS 1 H - MRSのアプローチで小説の実装について説明します。ゼロフライ死亡率を達成しながら、具体的には、ライブショウジョウバエで脂質と小さな代謝物を検出すると、十分な収集時間を可能にする約45分、14.1 Tで飛行。 TOBSYのローター同期ソーセージ- 8断熱パルス（C9 1〜15）の使用は、以前と合意の上で、十分なSNRと等方性混合パルス（MLEV - 16）を使用するために相対的な組織スペクトルの優れた分解能を得るために私達を許可レポート3,7。 ショウジョウバエの改良代謝プロファイルを検出するためにTOBSY使用する当社の能力は、...

<table><tbody><tr><td>重水</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7789-20-0</td><td></td></tr><tr><td>3-(トリメチルシリル)プロピオン酸-2,2,3,3-d&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; 酸</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>24493-21-8</td><td></td></tr><tr><td>アガー、スクロース、酵母、コーンミール</td><td>餌</td><td>Genesee Scientific</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://www.flystuff.com/&quot;&gt;http://www.flystuff.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>Oregon RSまたはCanton-S系統のショウジョウバエ</td><td>成虫のショウジョウバエ系統</td><td>ブルーミントン・ストック・センター</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://flystocks.bio.indiana.edu/&quot;&gt;http://flystocks.bio.indiana.edu/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>ペイントブラシ</td><td>装置</td><td></td><td></td><td>(サイズ 0)</td></tr><tr><td>2mlチューブ</td><td>装置</td><td>Fisher Scientific</td><td>K749521-1590</td><td></td></tr><tr><td>ショウジョウバエ用インキュベーター</td><td>装置</td><td></td><td></td><td>高湿度条件下（60-75%）、温度調節可能、および12時間明期：12時間暗期の明暗サイクル。</td></tr><tr><td>Bruker Bio-Spin Avance NMR分光計 (600.13 MHz) 4mm トリプルレゾナンス (&lt;sup&gt;1&lt;/sup&gt;H, &lt;sup&gt;13&lt;/sup&gt;C, &lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;H) HRMASプローブ </td><td>装置</td><td>Bruker Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MAS空気圧ユニットと組み合わせたBTO-2000ユニット</td><td>装置</td><td>Bruker Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>4mmジルコニアローター（容量50μl）</td><td>装置</td><td>Bruker Corporation</td><td>B3829 (Bruker store)</td><td></td></tr><tr><td>MestReC (Mestrelab Research) </td><td>ソフトウェア</td><td></td><td></td><td>1D NMRスペクトル解析&lt;br/&gt;&lt;a href=&quot;http://mestrelab.com/&quot;&gt;http://mestrelab.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>SPARKY 3, USCF</td><td>ソフトウェア</td><td></td><td></td><td>2D NMRスペクトル解析&lt;br/&gt;&lt;a href=&quot;http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/&quot;&gt;http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/&lt;/a&gt;</td></tr></tbody></table>

ライブの磁気共鳴分光法キイロショウジョウバエマジックアングルスピニングを使用して

Magnetic Resonance Spectroscopy of live Drosophila melanogaster using Magic Angle Spinning

高分解能マジック角スピニング（HRMAS）プロトン磁気共鳴分光法（<sup&gt; 1</sup&gt; H - MRS）のスペクトル線幅を向上させ、抽出、無傷の細胞、細胞培養、および代謝と細胞のプロセス間の関係を調査するため、さらに重要な無傷の組織から得られるため、高分解能スペクトルを可能にする新たな非破壊手法です。<em&gt; in vivoで</em&gt; HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H - MRSの研究では、ライブショウジョウバエで報告されてこなかった<em&gt;キイロショウジョウバエ。</em&gt;<em&gt;ショウジョウバエ、</em&gt;単純な遺伝的生物として、複数の生物学的機能と様々な進化的に保存されたシグナル伝達経路は、全体の生体レベルで確認することができますし、それは遺伝学と生理学を調査するための有用なモデルです。この目的のために、我々は、開発と実装<em&gt; in vivoで</em&gt; HRMAS<sup&gt; 1</supライブ調査する&gt; H - MRS法<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;ここでは14.1 Tで、我々はHRMASを概説<sup&gt; 1</supの分子特性評価のための&gt; H - MRSプロトコル<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt; HRMASプローブを備えた従来のMRスペクトロメータを持つ。この手法は、小説です。<em&gt; in vivoで、</em&gt;非破壊<em&gt;ショウジョウバエ</emしたがって、疾患のバイオマーカーの同定を可能にし、&gt;代謝物測定のアプローチは、新規治療開発に貢献するかもしれない。

この手法は、ライブの分子特性評価のためにプロトンMRスペクトロスコピー（HRMAS 1H - MRS）を回転の高分解能マジック角の使用を可能にする<em&gt;キイロショウジョウバエ</em&gt; HRMASプローブを備えた従来の14.1テスラ分析計と。

高分解能マジック角回転（HRMAS）プロトン磁気共鳴分光法（1H-MRS）は、スペクトルの分解能を向上させる新しい非破壊的技術であり、...

実験の24時間前に、雄のショウジョウバエを2 mLチューブに入れます。短時間の氷冷麻酔の後、ハエをNMRローターインサートに押し込み、ローターチューブに挿入します。ローターインサートの上にTSP標準溶液を加え、トップキャップでローターを閉じます。ローターをH-R-M-A-Sプローブに導入し、マジック角である54.7度で配置します。分光計を1次元および2次元実験のデータ収集に設定します。最後に、試料のMr.Spectraを解析します。私はマサチューセッツ総合病院およびハーバード医学大学の外科部のNMR外科研究室のValeria Rigiです。こんにちは、私はマサチューセッツ総合病院およびハーバード医学大学の外科部の分子外科研究室のY ABです。こんにちは、私はマサチューセッツ総合病院およびハーバード医学大学の外科部および分子外科研究室の責任者であるLawrence Achmanです。私はマリオ・ジカです。マサチューセッツ・ジャーナル病院のNMR外科研究室のディレクターであり、ハーバード医学大学院のAula Martin Centerに所属しています。本日は、メディック・アンゴ・スピニング磁気共鳴分光法を用いた、大型Melanogasterの分子特性解析の手順について解説します。当研究室では、この手法を用いて生体内の代謝物を研究し、新規治療法の開発に寄与する疾患バイオマーカーの同定を行っています。それでは、始めていきましょう。まず、新たに羽化したハエを3日間かけて収集し、新鮮なハエ用培地を含むフライバイアルに移して準備を開始します。収集したハエを5日間飼育し、実験直前で日齢5日から8日になるようにします。本実験では、オスのみを使用します。火炎滅菌したインスリン針を用いてチューブの蓋に穴を開け、ショウジョウバエ用の2 mL実験用チューブを準備します。次に、実験の24時間前に、フライフードを少量入れたチューブにハエを1匹ずつ入れます。高精度天秤を用いて、ハエを入れる直前と直後のチューブの重量を測定し、2つの値の差から各個体の体重を算出します。準備したオスのハエ1匹の体重は、通常0.7から1 mg程度です。高分解能マジック角回転（H-R-M-A-S）ローターの準備について見ていきましょう。まず、チューブ1本を1分未満の間、氷上に置きます。中のハエを麻酔させるため、氷上のアルミホイルの上にハエを置き、柔らかいブラシを用いて、NMRインサートの半球状の空洞部分にゆっくりと押し込みます。ハエを傷つけないように注意しながら、完全に挿入させてください。インサートを酸化ジルコニウム製ローターチューブに入れ、ショウジョウバエがローターインサートとローター底部の間に位置するようにします。次に、インサートをネジで閉め、パラフィルムで密封し、共鳴化学シフトおよび定量化の両方の基準として機能するTSP標準溶液中のハエが接触しないようにします。ローターインサートの上にTSB標準溶液を8 µL加え、トップキャップでローターセットアップ全体を固定し、締め付けます。それでは、HR-MASデータの収集方法を確認しましょう。ローターをH-R-M-A-Sプローブに挿入し、マジック角である54.7度に配置します。次に、H-R-M-A-S-H one MRSの回転速度を2 kHz MASに設定し、MAS速度コントローラーを使用して安定させます。BTO 2000ユニットを用いて、温度を4 °Cに設定します。MAS気圧ユニットと組み合わせて使用します。分光計内では、麻酔状態を維持するためにショウジョウバエを4 °Cに保ち、マグネットの準備、コイルの最適性能のためのチューニングおよびマッチング、そして最適なスペクトル品質を得るためのマグネットのシミングを行います。シミングが完了したら、INTERPULSE遅延をMAS回転周波数に同期させます。トランジェント数を256に、データポイント数を32,768に設定します。ローター同期車、Purcell MEO、またはCPMGスピンエコーパルスシーケンスを用いて、一次元シングルフライスペクトルを取得します。このシーケンスはT₂フィルターとして機能し、スペクトルの広がりを除去します。次に、aticパルスを用いたtopsyシーケンスにより、すべての試料について2次元のsingle flyスペクトルを取得します。ローターを開き、flyを取り出してください。それでは、データの解析方法について見ていきましょう。標本のMRスペクトルの解析にはmareソフトウェアを使用します。まず、0.5 hertzのラインブロードニング関数を用い、フーリエ変換を行う前にすべてのHR MAS 1Dスペクトルに適用します。その後、$\delta$ = 0.0 parts per millionのTSPを基準としてMRスペクトルの参照を行います。スペクトルの位相補正を手動で行い、ピーク面積の算出前にWhitakerベースライン推定法を適用して、ベースラインの幅広成分を除去します。mastreソフトウェアを用いてピーク面積を推定してください。得られた各スペクトルのピーク高さをTSPに基づいてスケーリングします。それでは、代表的なMRSの結果を見てみましょう。ここに示しているのは、ウェルタイプで取得した代表的な${span data-jove-entity="1H-NMR"}スペクトルです。主要な脂質成分であるグリセロール、および$\beta$-アラニン、酢酸、ホスホコリン、ホスホエタノールアミンなどの低分子代謝物が検出され、先行報告に基づいて同定されました。2.02 ppmのシグナルは、一価不飽和脂肪酸のプロパン部位のメチレンプロトンと同定されました。不飽和酸は、アルケン部位のプロトンによって生じる5.33 ppmのシグナルによって同定されました。1Dスペクトルでは同定できなかった、あるいは検出できなかった低分子代謝物は、2D 1H 1C TOP Z-H-R-M-A-Sを用いて検出しました。以上で、高分解能マジック角回転磁気共鳴分光法を用いて、生存しているショウジョウバエの生化学的プロファイルを解析する方法を初めてご紹介しました。この手順を行う際は、ハエを傷つけないように、柔らかいプラスチック製の器具を使用して挿入することが重要です。ネジを締めすぎないように注意し、昆虫に損傷を与えないようにしてください。また、ハエが生存できなくなる可能性があるため、1時間を超えてスペクトルを測定しないでください。以上となります。ご視聴ありがとうございました。実験の成功をお祈りしております。

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