Name: 実験的転移とCTLの養子移入免疫療法のマウスモデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-26T15:03:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: 学ぶ実験的転移とCTL養子移入免疫療法のマウスモデル。マウスに腫瘍細胞を移植し、細胞傷害性Tリンパ球を用いて治療効果を定量的に評価する手法を解説します。インドインクによる腫瘍結節の可視化も含みます。

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国立衛生研究所（KLへCA133085）と米国癌学会からの補助金（KLにRSG - 09 - 209 - 01 - TBG）によってサポートされています。

1。実験的転移モデルマウス<ol><li>腫瘍細胞の注射の前日に、シードone T75フラスコ上で1 × 10 7〜急成長中の腫瘍細胞を得るために、10％血清を含むRPMI培地10mLに細胞をCMS4 - MET。 37℃で一晩インキュベート℃、 </li><li>注射の日に、培地を除去し、PBSで細胞を1回洗い流した後、37℃で0.05％トリプシン- EDTAで腫瘍細胞を収穫℃で5分間。 10％血清を含むRPMI培地10mlで反応を停止します。コニカルチューブに細胞を移す。 </li><li>室温で3分間ソーバルレジェンドRT遠心機で1300 rpmで細胞をスピンダウン。上清を取り除く。洗浄に10mLの新鮮な1X HBSSで細胞を再懸濁し、再度スピンダウンと同じように再懸濁します。 </li><li>血球計算板上で腫瘍細胞を数える。それぞれの注入に必要な細胞を100μLの全体積に再懸濁しているように、HBSSで細胞を希釈する。 </li><li>尾静脈を拡張させるために温水に浸漬ビーカーに6〜8週齢のBALB / cマウスを温める。ベンチ上で尾静脈の現像抑制剤の上にマウスを置きます。外側尾静脈内に腫瘍細胞を100μLを注入するためにマイクロシリンジを使用してください。感染を避けるために、無菌操作を使用してください。出血が停止するまで注入した後、注射部位にわずかな圧力を適用する。 </li><li>ケージにマウスを返し、そして腫瘍が目的の段階に成長することができます。 </li></ol> 2。細胞傷害性Tリンパ球（CTL）の養子移入免疫療法<ol><li>移転の日に、精製されたT -リンパ球細胞傷害性、またはCTLは、テキストで説明したように調製を再懸濁するために上下にピペッティングし。つのプレートから15 mLコニカルチューブに細胞のすべてを譲渡する、ボリュームがチューブの2 / 3以上を超えてさせることではない。 </li><li>コニカルチューブに滅菌パスツールピペットを挿入し、総容量は14 mLのに近づくまで、セルの下に、リンパ球分離媒体、またはLSMを置く。 </li><li>層を乱さないように注意してください。室温で20分間2000rpmで遠心する。スピンした後ローターを減速させるブレーキを使用しないでください。 </li><li>新しい15 mLコニカルチューブにCTLを転送する。洗浄に約10mlの体積にHBSSを追加。 </li><li>細胞を数える。室温で5分間1300 rpmでスピンダウン。 100μLに注入あたりの​​総容積を保ち、注射のために必要な細胞密度にHBSSに再懸濁します。 </li><li>担癌マウスにCTLを注入する前のこのビデオで見たのと同じテールのインジェクションの手法を使用してください。 </li><li>ケージにマウスを返す、とCTLsは腫瘍と対話することができます。マウスは、通常14-21日CTL治療後の分析のために犠牲にされています。 </li></ol> 3。肺転移の可視化<ol><li>肺転移を可視化するために、発泡スチロールのボードに、その裏に犠牲にマウスを置きます。気管に遮るもののないアクセスを確保するために足を固定。 70％エタノールで腹側を吹き付けます。 </li><li>半ば腹部から始まる、正中線に沿って、胸郭を介して、とまで唾液腺に向かってカットするはさみを使用してください。気管を公開。気管の周囲の組織を削除するには、ピンセットを使用してください。 </li><li>気管の下に200μLピペットの先端を通します。片手で先端を保持する、静かに体から気管を持ち上げて。 </li><li>プラットフォームを180 °回転させる。気管から肺にインドのインクを注入するために50mLのシリンジを使用してください。あなたが強い抵抗を感じるまで、完全にインクで肺を膨らませる。 </li><li>気管をカットするはさみを使用してください。肺の下にピンセットをスライドさせ、それらをマウスから持ち上げます。水の1Lビーカーに簡単に肺をすすいでください。 </li><li>化学煙フードでは、フェケテの液5 mLを含有するガラスシンチレーションバイアルに肺を転送する。腫瘍組織は、数分後に黒の肺に白い結節として現れるだろう。腫瘍は、現在カウントし、無期限にフェケテのソリューションに格納することができます。 </li></ol> 4。視覚による肺の代表的な転移<ol><li>ここでは、乳癌細胞株4T1を注入したマウスからの肺には腫瘍を示す白い斑点を示す。 IRF8ドミナントネガティブ変異体K79Eでトランスフェクトした4T1細胞を注入したマウスは、腫瘍細胞の拡張された転移能を示す。 </li><li>これらのイメージは、CTLの養子移入免疫療法の有効性の組織学的分析を示しています。生理食塩水を注射した担癌マウスでは、黄色の矢印（）で示される、6日後に複数の腫瘍を認めた。腫瘍特異的T細胞を注射したマウスは、その一方で、腫瘍（B）の減少を示した。 </li><li>同じ実験では、インドのインクの治療は、CTL養子免疫伝達の有効性を測定する簡単な方法を提供します。ここでは、担癌肺の白い腫瘍結節は、明らかに成功したCTLの養子移入を受けた肺からそれらを区別し、結節を数える度を可能に組織学と定量の可能性ではない。 </li></ol> 5。代表的な結果<img src="/files/ftp_upload/2077/2077fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1実験的な腫瘍転移およびCTL適応転送免疫療法のマウスモデルの実験スキーム。赤い点は、腫瘍細胞と緑のドットはCTLを示して示している。 <img src="/files/ftp_upload/2077/2077fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。IRF8機能の破壊は、腫瘍細胞の転移能を増強した。マウス乳癌細胞株4T1は安定してベクトル（4T1.Vector）またはIRF8ドミナントネガティブ変異体K79E（4T1.IRF8K79E）（15,16）を発現ベクターでトランスフェクトした。腫瘍細胞は、マウスの外側尾静脈に静脈注射された。腫瘍のある肺は腫瘍結節を視覚化するインドのインクで膨らませていた。腫瘍結節は、簡単に黒の肺組織の背景に白い斑点として見られている。 <img src="/files/ftp_upload/2077/2077fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。CTLの養子移入免疫療法の有効性の組織学的分析。マウス肉腫細胞株CMS4 - Metはマウス側面尾静脈に静脈注射した。三日後、生理食塩水（）または腫瘍特異的T細胞は、（B）担癌マウスに注入した。肺は6日、従来のH＆E組織染色により、CTL治療後に分析した。腫瘍結節は、矢印で示されている。 <img src="/files/ftp_upload/2077/2077fig4.jpg" alt="図4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図4"> 図4。水墨インフレによる腫瘍結節の可視化。マウス肉腫細胞株CMS4 - Metはマウス側面尾静脈に静脈注射した。三日後、生理食塩水（コントロール）または腫瘍特異的T細胞は、（+ CTL）担癌マウスに注入した。肺は14日CTL治療後に分析した。腫瘍結節ている白い点は、、CTL治療の有効性を簡単に定量化が可能になります。

<ol><li>Ryan, M. H., Bristol, J. A., McDuffie, E., Abrams, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regression+of+extensive+pulmonary+metastases+in+mice+by+adoptive+transfer+of+antigen-specific+CD8%28%2B%29+CTL+reactive+against+tumor+cells+expressing+a+naturally+occurring+rejection+epitope%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Regression of extensive pulmonary metastases in mice by adoptive transfer of antigen-specific CD8(+) CTL reactive against tumor cells expressing a naturally occurring rejection epitope.</a> J Immunol. 167 (8), 4286-4292 (2001).</li>
<li>Caldwell, S. A., Ryan, M. H., McDuffie, E., Abrams, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Fas%2FFas+ligand+pathway+is+important+for+optimal+tumor+regression+in+a+mouse+model+of+CTL+adoptive+immunotherapy+of+experimental+CMS4+lung+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">The Fas/Fas ligand pathway is important for optimal tumor regression in a mouse model of CTL adoptive immunotherapy of experimental CMS4 lung metastases.</a> J Immunol. 171 (5), 2402-2412 (2003).</li>
<li>Liu, K., Caldwell, S. A., Greeneltch, K. M., Yang, D., Abrams, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CTL+Adoptive+Immunotherapy+Concurrently+Mediates+Tumor+Regression+and+Tumor+Escape%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">CTL Adoptive Immunotherapy Concurrently Mediates Tumor Regression and Tumor Escape.</a> J Immunol. 176 (6), 3374-3382 (2006).</li>
<li>Yang, D., Stewart, T. J., Smith, K. K., Georgi, D., Abrams, S. I., Liu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Downregulation+of+IFN-gammaR+in+association+with+loss+of+Fas+function+is+linked+to+tumor+progression%5BTitle%5D)+AND+%22International+journal+of+cancer%22%5BJournal%5D)">Downregulation of IFN-gammaR in association with loss of Fas function is linked to tumor progression.</a> International journal of cancer. 122 (2), 350-362 (2008).</li>
<li>Pages, F., Berger, A., Camus, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effector+memory+T+cells%2C+early+metastasis%2C+and+survival+in+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Effector memory T cells, early metastasis, and survival in colorectal cancer.</a> N Engl J Med. 353 (25), 2654-2666 (2005).</li>
<li>Galon, J., Costes, A., Sanchez-Cabo, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Type%2C+density%2C+and+location+of+immune+cells+within+human+colorectal+tumors+predict+clinical+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Type, density, and location of immune cells within human colorectal tumors predict clinical outcome.</a> Science. 313 (5795), 1960-194 (2006).</li>
<li>Strater, J., Hinz, U., Hasel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+CD95+expression+predisposes+for+recurrence+in+curatively+resected+colon+carcinoma%3A+clinical+evidence+for+immunoselection+and+CD95L+mediated+control+of+minimal+residual+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">Impaired CD95 expression predisposes for recurrence in curatively resected colon carcinoma: clinical evidence for immunoselection and CD95L mediated control of minimal residual disease.</a> Gut. 54 (5), 661-665 (2005).</li>
<li>Camus, M., Tosolini, M., Mlecnik, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordination+of+intratumoral+immune+reaction+and+human+colorectal+cancer+recurrence%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Coordination of intratumoral immune reaction and human colorectal cancer recurrence.</a> Cancer research. 69 (6), 2685-2693 (2009).</li>
<li>Dudley, M. E., Wunderlich, J. R., Yang, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adoptive+cell+transfer+therapy+following+non-myeloablative+but+lymphodepleting+chemotherapy+for+the+treatment+of+patients+with+refractory+metastatic+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Adoptive cell transfer therapy following non-myeloablative but lymphodepleting chemotherapy for the treatment of patients with refractory metastatic melanoma.</a> J Clin Oncol. 23 (10), 2346-2357 (2005).</li>
<li>Srivastava, M. K., Sinha, P., Clements, V. K., Rodriguez, P., Ostrand-Rosenberg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myeloid-derived+suppressor+cells+inhibit+T-cell+activation+by+depleting+cystine+and+cysteine.+Cancer+research%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Myeloid-derived suppressor cells inhibit T-cell activation by depleting cystine and cysteine. Cancer research.</a> 70 (1), 68-77 (2010).</li>
<li>Nagaraj, S., Gabrilovich, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+escape+mechanism+governed+by+myeloid-derived+suppressor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Tumor escape mechanism governed by myeloid-derived suppressor cells.</a> Cancer research. 68 (8), 2561-2563 (2008).</li>
<li>Nguyen, D. X., Bos, P. D., Massague, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metastasis%3A+from+dissemination+to+organ-specific+colonization%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews%22%5BJournal%5D)">Metastasis: from dissemination to organ-specific colonization.</a> Nature reviews. 9 (4), 274-284 (2009).</li>
<li>Heijstek, M. W., Kranenburg, O., Rinkes, B. orel, H, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+colorectal+cancer+and+liver+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Digestive+surgery%22%5BJournal%5D)">Mouse models of colorectal cancer and liver metastases.</a> Digestive surgery. 22 (1-2), 1-2 (2005).</li>
<li>Yang, D., Ud Din, N., Browning, D. D., Abrams, S. I., Liu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+lymphotoxin+beta+receptor+with+tumor-specific+T+lymphocytes+for+tumor+regression%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Targeting lymphotoxin beta receptor with tumor-specific T lymphocytes for tumor regression.</a> Clin Cancer Res. 13 (17), 5202-5210 (2007).</li>
<li>Yang, D., Thangaraju, M., Browning, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IFN+Regulatory+Factor+8+Mediates+Apoptosis+in+Nonhemopoietic+Tumor+Cells+via+Regulation+of+Fas+Expression%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">IFN Regulatory Factor 8 Mediates Apoptosis in Nonhemopoietic Tumor Cells via Regulation of Fas Expression.</a> J Immunol. 179 (7), 4775-4782 (2007).</li>
<li>Yang, D., Thangaraju, M., Greeneltch, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repression+of+IFN+regulatory+factor+8+by+DNA+methylation+is+a+molecular+determinant+of+apoptotic+resistance+and+metastatic+phenotype+in+metastatic+tumor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Repression of IFN regulatory factor 8 by DNA methylation is a molecular determinant of apoptotic resistance and metastatic phenotype in metastatic tumor cells.</a> Cancer research. 67 (7), 3301-3309 (2007).</li>
<li>Wexler, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accurate+identification+of+experimental+pulmonary+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+National+Cancer+Institute%22%5BJournal%5D)">Accurate identification of experimental pulmonary metastases.</a> Journal of the National Cancer Institute. 36 (4), 641-645 (1966).</li>
</ol>

マウスは、国立癌研究所（Friderick、MD）から購入し、ジョージア州の動物施設の医科大学に収容された。実験と医療/福祉は連邦政府の規制との契約とグルジアIACUC委員会の医科大学によって承認されたプロトコルでいた。

ソリューション： インドのインク液（17）： <ol><li> 250mlのフラスコに蒸留水150mlを注ぐ。 </li><li> 4滴を蒸留水に水酸化アンモニウムを追加。 </li><li>アンモニアと水の混合物に30ミリリットルインドのインク株式（すなわちサンフォードブラックマジック防水ドローイングインク4465アイテム44011）を追加します。 </li><li> 200mlの量を蒸留水で仕上げる。解決策は、注射の準備ができています。 </li></ol>フェケテのソリューション（17）： フェケテのソリューションは、正常組織の背景を黒から白の腫瘍結節を区別するために漂白剤墨汁-水増し担癌肺に使用されます。 <ol><li> 1Lガラス瓶に350ミリリットルの95％EtOHを追加します。 </li><li> 150ミリリットルの蒸留水を追加します。 </li><li> 50ミリリットルホルムアルデヒドを追加</li><li> 25ミリリットルの氷酸性酸を追加</li></ol>

実験的転移とctlの養子移入免疫療法のマウスモデル

Experimental Metastasis and CTL Adoptive Transfer Immunotherapy Mouse Model

実験的転移のマウスモデルは、生理学的に関連はまだシンプルと転移モデルです。循環の生存率、遠位臓器の血管外漏出と植民地化：腫瘍細胞は腫瘍細胞自然転移の最後のステップに似て、それによって、マウスの尾静脈に（IV）静脈内に注射し、肺に植民地化されています。遠位臓器で確立された転移性腫瘍：治療の目標はしばしば転移のエンドポイントであるので、治療的観点から、実験的転移モデルは最も単純で理想的なモデルです。このモデルでは、腫瘍細胞は、マウスの尾静脈に静脈注射し、肺に植民地化と拡張されます。腫瘍特異的CTLは、その後、転移、担癌マウスに静脈注射されています。肺転移の数と大きさが注入される腫瘍細胞の数と腫瘍の成長の時間によって制御することができます。したがって、転移の様々な段階では、広範な転移への最小限の転移から、モデル化することができます。肺転移は、このように簡単に目視観察および定量を可能に、インクでインフレによって分析されています。

腫瘍細胞- T細胞相互作用の分析のための実験的肺転移とCTL免疫療法のマウスモデル<em&gt; in vivoで</em&gt;。

実験的転移とCTLの養子移入免疫療法のマウスモデル

実験的転移マウスモデルは、簡便でありながら生理学的に妥当な転移モデルである。腫瘍細胞を静脈内（i.v.）に注入し、...

本手順の全体的な目的は、腫瘍特異的T細胞養子移送免疫療法のin vivoにおける有効性を検証することです。まず、マウスの側尾静脈に腫瘍細胞を注入して移植し、肺転移を成立させます。次に、腫瘍を担持したマウスに対して、腫瘍特異的細胞傷害性Tリンパ球（CTLs）を用いて治療を行います。最終ステップは、腫瘍結節を可視化および定量化するための手段としてインディアインクを使用することです。最終的に、腫瘍サイズの測定と腫瘍結節数の定量化を通じて、さまざまな治療法のCIEを示す結果を得ることができます。こんにちは、私はMary Zimmermanです。ジョージア医科大学のDr. Kevin Luの研究室に所属しています。こんにちは、シェリーン・フーです。私は大学院2年次生で、ルー博士の研究室に所属しています。生存曲線などの従来の手法と比較したこの技術の主な利点は、この手順が定性と定量の両面から解析可能であることです。この技術の意義は、ヒトのがん患者におけるT細胞養子免疫療法を模倣しているため、がん治療へと応用できる可能性があります。それでは開始しましょう。腫瘍細胞を注入する前日に、10%血清を含む10 mLのRPMI培地を用いて、1×10⁷個のCMS4met細胞をT75フラスコに播種します。増殖速度の速い腫瘍細胞を得るため、注入当日まで37°Cで一晩インキュベートします。培地を除去し、細胞をPBSで1回洗浄した後、37°Cで5分間、0.05%trypsin EDTAを用いて腫瘍細胞を回収します。10%血清含有RPMI培地10 mLを加えて反応を停止させます。その後、細胞をコニカルチューブに移します。Val Legend RT遠心機を用い、1300 RPMで3分間細胞を遠心分離します。室温にて上清を除去し、洗浄のため細胞を10 mLの新鮮な1 XHB Ssに再懸濁します。その後、同様の手順で再度遠心分離し、再懸濁します。hemo.Cytometerを用いて腫瘍細胞数をカウントします。HBSSで細胞を希釈し、1回あたりの注入に必要な細胞数を再懸濁します。合計100 µLの溶液をビーカーに入れ、温水に浸して加温し、6〜8週齢のB SEAマウスに投与します。尾静脈を拡張させるため、マウスをベンチ上の尾静脈用拘束具に固定します。マイクロシリンジを用いて、100 µLの腫瘍細胞を尾静脈の外側に注入します。注入後の感染を防ぐため、無菌操作を行ってください。出血が止まるまで、注入部位を軽く圧迫します。マウスをケージに戻し、腫瘍が目的の段階まで成長するまで待ちます。移植当日、ピペッティングにより、調製済みの精製細胞傷害性Tリンパ球（CTL）を再懸濁します。本文の記載に従い、すべての細胞を1枚のプレートから15 milliliterのコニカルチューブに移します。このとき、液量がチューブの3分の2を超えないようにしてください。滅菌済みのパステールピペットをコニカルチューブに差し込み、全量が14 milliliterに近づくまで、リンパ球分離培地（LSM）を細胞の上に層状に加えます。層を乱さないように注意してください。室温で2000 RPMで20分間遠心分離します。回転後のローターの減速にブレーキを使用せず、CTLを新しい15 milliliterコニカルチューブに移します。HBSSを約10 mL加えます。洗浄するため、室温で1300 RPMで5分間遠心分離して細胞を回収します。その後、注入に必要な細胞密度になるようHBSSで再懸濁します。1回あたりの注入総量を100 µLに維持します。本ビデオの前の段階で示したものと同じ尾静脈注射の手法を用いてください。CTLを腫瘍担持マウスに注入した後、マウスをケージに戻し、CTLを腫瘍に作用させます。通常、CTL投与の14日から21日後にマウスを犠牲にして解析を行います。肺転移を可視化するためには、犠牲にしたマウスをスタイロフォームボードの上に仰向けに置きます。気管へのアクセスを妨げないよう、脚をピンで固定してください。腹部の中央から、腹面を70% ethanolでスプレーします。はさみを用いて、正中線に沿って肋骨を通り、唾液腺に向かって切開します。気管を露出させます。ピンセットを使用して、気管周囲の組織を除去します。片手で200 µLピペットチップを持ち、気管の下に差し込みます。気管をゆっくりと持ち上げ、体から離します。プラットフォームを180度回転させます。50 milliliterのシリンジを使用して、気管から肺にインディアインクを注入します。強い抵抗を感じるまで、インクで肺を完全に膨らませてください。ハサミで気管を切断します。ピンセットを肺の下に滑り込ませ、マウスから肺を取り出します。化学薬品用フード内で、1 Lの水が入ったビーカーを用いて肺を軽く洗浄します。肺を5 mLのFTI溶液が入ったガラス製容器に移します。腫瘍組織は、黒い肺上の白い結節として現れます。数分後、腫瘍の計数が可能になり、その後はFTI溶液内で無期限に保存することができます。乳癌を転移させたマウスの肺。細胞株4T1では、腫瘍を示す白いスポットが見られる。IRF8ドミナントネガティブ変異体K79Eを導入したマウスでは、腫瘍細胞の転移能の亢進が認められる。これらの画像は、CTL養育移入免疫療法の有効性に関する組織学的解析を示しています。生理食塩水を注入した腫瘍担持マウスでは、6日後に矢印で示される複数の腫瘍が認められました。一方、腫瘍特異的T細胞を注入したマウスでは、同様の実験において腫瘍の減少が認められました。インディアインク処理により、CTL養子移入の有効性をより簡便に測定することが可能です。ここでは、腫瘍担持肺上の白い腫瘍結節により、CTL養子移入が成功した肺との明確な区別が可能となり、結節数をカウントすることで、組織学的解析では不可能な程度の定量化が行えます。この手順を実施する際は、尾静脈注入をより容易かつ正確に行うため、マウスを温めておくことが重要です。このビデオを視聴することで、腫瘍の大きさおよび数を定量化するこの簡便な手順を通じて、治療の有効性を評価する方法を十分に理解できたはずです。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

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このプロトコルは免疫不全のマウスの盲腸壁の患者得られた癌細胞の同所性移植を記述する。このモデルは、進行した大腸がんの転移性疾患を再現し、肺および肝臓転移の臨床的に関連するシナリオにおける新しい治療薬の評価を可能にします。...

進行性大腸癌を再現するマウスへの患者由来癌細胞の同所性移植

ここで提示する実験デザインは、リンパ節(LN)転移中の抗原特異的CD8+ T細胞の研究に有用な生殖モデルを提供し、傍観者CD8+...

腫瘍形成中の抗原特異的CD8+ T細胞の動態を評価するためのリンパ節転移モデル

マウスの腫瘍浸潤リンパ球(TIL)をフローサイトメトリーを通じて養子細胞移植に利用する方法について説明します。このプロトコルは、同系膵臓がんマウスモデルにおける腫瘍に対するTILの特異的細胞毒性を検証することを目的としており、膵臓がんの養子細胞療法の開発に関する洞察を提供します。...

膵臓癌マウスモデルにおける腫瘍浸潤リンパ球のフローサイトメトリーに基づく単離と治療的評価

学ぶ実験的転移とCTL養子移入免疫療法のマウスモデル。マウスに腫瘍細胞を移植し、細胞傷害性Tリンパ球を用いて治療効果を定量的に評価する手法を解説します。インドインクによる腫瘍結節の可視化も含みます。

実験的転移とCTLの養子移入免疫療法のマウスモデル

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