分子分析のための水サンプルからの抗生物質耐性菌の単離

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水系細菌を含む水サンプルから始めて、ろ過して破片を取り除きます。

希釈した濾液を、それぞれに特定の抗生物質を添加した低栄養寒天プレートに移します。濾液を広げてインキュベートします。

特定の抗生物質耐性遺伝子を保有する細菌は、対応する抗生物質プレート上で増殖し、コロニーを形成します。

コロニーを数えて、抗生物質耐性菌の数を表すコロニー形成単位(CFU)を決定します。

各プレートから単一のコロニーを選択し、滅菌蒸留水に懸濁します。

懸濁液を加熱して細胞を溶解し、抗生物質耐性遺伝子を含む細菌DNAを含む細胞内内容物を放出します。

チューブを遠心分離して破片を分離し、DNAを含む上清を収集します。

抽出したDNAに増幅試薬を加えます。

チューブをサーマルサイクラーに入れ、プログラムを実行して細菌DNAの特定の領域を増幅します。

増幅されたDNAは、抗生物質耐性遺伝子を特定するための配列解析の準備が整います。

水サンプルを滅菌モスリン布でろ過して粒子状物質を除去し、無菌処理します。次に、ろ過された水サンプルを段階的に希釈して、さらに分析します。抗生物質耐性菌数を決定するには、摂氏約40度で修飾された20ミリリットルの滅菌溶融R2A寒天培地を含むチューブに抗生物質を個別に追加します。

寒天が固まる前に、旋回して均一に混合し、滅菌ペトリプレートに注ぎます。100マイクロリットルの細菌懸濁液を、R2A寒天修飾プレートを含むそれぞれの抗生物質に広げます。プレートを摂氏35〜37度で48時間インキュベートし、細菌数を測定します。

PCR用に分離株からDNAテンプレートを調製するには、滅菌つまようじを使用して、ペトリプレート上で増殖する分離株の単一の単離された純粋なコロニーを取ります。細菌コロニーをマイクロ遠心分離管内の100マイクロリットルの滅菌二重蒸留水に懸濁し、沸騰水浴または乾浴で摂氏100度で10分間沸騰させます。懸濁液を10,000 gで2分間遠心分離して破片をペレット化し、上清を新鮮な滅菌マイクロ遠心チューブに移して粗DNAテンプレートとして使用します。

PCRによって16S rRNA遺伝子のV3領域を増幅するには、PCRチューブに40マイクロリットルの反応混合物を調製します。チューブをサーマルブロックに入れ、PCRサーマルサイクラーで適切なプログラムを実行します。

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最終更新:1 8月 2026