0 閲覧数 • 3:57 分 • September 26th, 2025
寒天で培養した病原菌から始めます。
細菌をこすり落とし、緩衝液に懸濁し、培地を加えて細菌の生存率を維持します。
懸濁液をマイクロプレートに分注します。
次に、病原体に対する感受性が高まったか、耐性が強化されたC .エレガンスの 幼虫の別々の株を取り、それらを定住させます。
上清を取り除き、幼虫を新鮮な培地に再懸濁し、細菌を含むマイクロプレートに移します。
マイクロプレートをガス透過性膜で密封し、インキュベートします。細菌は、ストレス経路を活性化し、細胞死を引き起こす有毒な代謝産物を分泌します。
ウェルを洗浄して細菌を除去し、細胞不透過性蛍光色素を加えてインキュベートします。
色素は、膜が破壊された死んだ幼虫細胞のみに浸透し、それらの核酸に結合します。
洗浄して余分な色素を除去し、蛍光染色されたワームを画像化して、感受性株と耐性株の死亡率を評価します。
液体キリングアッセイを実行するには、細胞スクレーパーを使用して緑 膿菌 をSKプレートから除去し、細菌を約5ミリリットルのS Basalに再懸濁します。
分光光度計を使用して、細菌懸濁液のOD 600を測定します。24ミリリットルの希釈した緑 膿菌 の希釈ストックをOD 600でS Basalに0.09に等しい調製し、次に21ミリリットルの液体SK培地を加え、マルチチャンネルピペットを使用して、45マイクロリットルの細菌と培地を384ウェルプレートの各ウェルに移します。ワームを発生源から50ミリリットルの円錐形のチューブに洗浄し、重力で沈降させます。
上清を5ミリリットルに吸引し、次に合計50ミリリットルのS基礎を使用してワームを再懸濁し、さらに2回洗浄を繰り返します。ワームソーターを使用して、テキストプロトコルに従って、約22匹のワームを384ウェルプレートの各ウェルに選別し、ガス透過性フィルムを使用してプレートを密封し、摂氏25度で24〜48時間インキュベートします。お好みの時間に、マイクロプレートウォッシャーとS Basalを使用して、384ウェルプレートを合計5回洗浄します。
最も犯しやすい間違いの1つは、ワームが完全に落ち着く前に384ウェルプレートを吸引することです。ワームが完全に落ち着いたかどうかを正確に確認するには、練習が必要です。最終洗浄後、上清を20マイクロリットルまで吸引します。
次に、ウェルあたり50マイクロリットルの0.98マイクロモル核酸染色剤を加え、最終濃度を0.7マイクロモルにします。プレートを室温で12〜16時間インキュベートします。所望のインキュベーション期間の後、マイクロプレート洗浄機を使用してプレートを最低3回洗浄します。
データ取得には、分光光度計または自動顕微鏡を使用して、透過光と蛍光の両方を画像化します。
本研究では、病原性細菌がC. elegans幼虫に及ぼす影響を調査し、さまざまな系統間における感受性と耐性の違いに焦点を当てます。手法には、細菌毒素への曝露後、蛍光染色を用いて細胞死を評価することが含まれます。
この液体ベースのC. elegans病原系により、病原細菌によって誘発される宿主の死亡率をハイスループットかつ定量的に評価でき、抗菌剤探索における初期段階のターゲット検証を支援します。蛍光による死亡率の読み取りを通じて系統特異的な感受性を測定することで、本アッセイは宿主標的治療の仮説および遺伝的耐性経路に対するメカニズム的なリスク低減を可能にします。拡張可能な384ウェル形式により、再現性のある化合物スクリーニングおよび探索パイプラインにおける部門横断的なデータ共有がサポートされます。
この手法は、ターゲット検証のための初期探索ワークフローに組み込まれ、ヒット化合物を同定するためのスクリーニングへと進み、さらにメカニズムに関連した死亡表現型を通じて前臨床段階での優先順位付けに情報を供します。
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最終更新:29 8月 2026