0 閲覧数 • 3:19 分 • September 26th, 2025
まず、液体培地の入ったチューブに病原菌を接種します。
インキュベートして細菌の増殖を促進し、培養物を新しいチューブに移します。
細胞をペレットにスピンダウンし、上清を廃棄します。
細菌ペレットを、フラビンモノヌクレオチド(FMN)の濃度を高めた緩衝液、光増感剤、およびFMNを含まない緩衝液に再懸濁して、コントロールとして機能します。
チューブの内容物を完全に混合し、懸濁液をガラス管に移します。
チューブを可視光にさらしてFMNを光活性化し、FMNは酸素分子と反応して活性酸素種(ROS)を生成します。
ROSは細菌の細胞成分に損傷を与え、それによって細菌の生存率を低下させます。
サンプルのアリコートを固体培地に移し、均一に広げ、インキュベートして生き残った生存細菌がコロニーに成長できるようにします。
インキュベーション後、コロニーを定量化し、対照と比較した細菌生存率の減少率を計算して、FMNの用量依存効果を評価します。
黄色ブドウ球菌のコロニーを、15ミリリットルのスクリューキャップ付き試験管内の10ミリリットルの溶原性ブロスに接種します。シェーカーで摂氏37度で16時間培養します。0.5ミリリットルの培養物を1.5ミリリットルの遠心分離管に移します。
滅菌水を加えて、培養物を600ナノメートルで光学密度0.5に希釈します。次に、0.5ミリリットルの培養物を1.5ミリリットルの遠心分離管に移します。14,000 Gで10分間遠心分離し、上清をデカントします。
1ミリリットルのFMN緩衝液を細胞ペレットとボルテックスに加えます。照射制御の場合は、1ミリリットルのリン酸緩衝液を追加します。30マイクロモルFMNとリン酸緩衝液を含む1ミリリットルの細菌細胞溶液をガラス管に移します。
10ワット/平方メートルの紫色の光の下で30分間放射するためにそれらを配置します。次に、30、60、および120マイクロモルのFMNとリン酸緩衝液を含む1ミリリットルの細菌細胞溶液をガラス管に移します。120ワット/平方メートルで20分間ブルーライトを照射します。
また、1ミリリットルの120マイクロモルFMNを含むチューブを60分間照射します。照射後、0.2ミリリットルの反応液をルリア寒天プレートに加えます。L字型のガラス棒を使用して溶液を広げ、摂氏37度で一晩インキュベートします。
翌日、黄色ブドウ球菌の生存プレート数と不活性化率を計算します。
本研究では、光増感剤としてのフラビンモノヌクレオチド(FMN)が細菌の生存率に及ぼす影響を調査します。黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)をさまざまな濃度のFMNおよび光にさらすことにより、細菌の生存に対する用量依存的な影響を評価します。
この手法により、病原菌に対する光増感剤の有効性を用量依存的に評価することが可能となり、初期段階における抗菌標的のバリデーションを支援します。制御された光照射条件下で生存率の低下を定量化することで、ROSベースの治療コンセプトにおけるメカニズム的なリスク軽減が可能となります。このアプローチは、前臨床開発に向けた光増感剤候補の優先順位付けに役立ちます。
抗菌剤探索におけるヒット化合物の同定とリード最適化の間に、光増感剤のスクリーニングを位置づけます。
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最終更新:29 8月 2026