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$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
嫌気性チャンバー内に置かれたバイアルを含むアッセイセットアップから始めます。
各バイアルには、硝酸ナトリウム、水銀イオン、およびさまざまな濃度の硫酸マグネシウムを添加した培地が含まれています。
セットアップを回転させて成分を混合し、インキュベートします。
インキュベーション中、硫酸マグネシウムは生物学的に利用できない水銀錯体の形成を促進し、濃度依存的に遊離の生物学的に利用可能な水銀イオンを還元します。
次に、プラスミドを運ぶ遺伝子組み換え細菌である誘導バイオセンサーを加え、混合します。
プラスミドには、水銀応答性転写調節因子と蛍光レポーター遺伝子に結合したプロモーターが含まれています。
嫌気性条件下では、細菌は呼吸に硝酸塩を利用します。
遊離水銀イオンが細胞に入り、転写調節因子に結合し、蛍光遺伝子を活性化して蛍光タンパク質を生成します。
各バイアルからマルチウェルプレートにアリコートを移します。
プレートリーダーを使用して、蛍光強度を測定します。
硫酸マグネシウム濃度の増加に伴う蛍光の低下は、バイオセンサーが生物学的に利用可能な水銀の変化を検出する能力を裏付けています。
実験を開始する前に、嫌気性モニターをチェックして、嫌気性チャンバー内に酸素がないことを確認します。96ウェルテンプレートに従ってプレートレイアウトを設計します。3つの技術的反復で実験を実行するには、32の異なる処理が可能になり、バイアルをセットアップするための4×8のグリッドで最もよく表されます。
アッセイプレートのレイアウトに従って、4×8のグリッドを設定します。次に、7ミリリットルのPTFE標準バイアルをトレイに入れます。バイアルは、バイアルの外側を操作することによってのみ取り扱う必要があります。
各処理に対応する各バイアルに露光培地の容量を追加します。各バイアルに、プレートレイアウトに従ってテストする化学変数の対応する容量を追加します。次に、最終濃度が200マイクロモルになるように、各バイアルに硝酸塩を加えます。
構成的バイオセンサー処理ブランクについては、このステップを除外します。
バイアルに水銀を加えるには、まず4〜8マイクロモルのストックを取り、よく振ってください。溶液と露光媒体を7ミリリットルのPTFEバイアルで100〜250ナノモルの濃度に希釈して、機能する水銀溶液を作ります。
この作業溶液から、プレートのレイアウトに従って必要なバイアルに水銀を追加します。水銀またはカドミウムを加えた後、プレートを軌道運動で手動で振ってください。水銀またはカドミウムが溶液中でスペシエーション化するのに必要な時間に応じて、実験を一時停止することができます。
実験を再開したら、バイオセンサーストックを前後にそっとピペットで移動させて、均一性を確保します。次に、100マイクロリットルのバイオセンサーストックを各バイアルに加え、以前と同様に手動でプレートを振ってください。プレートリーダーを摂氏37度にウォームアップし、2ポイント5〜5分ごとに読み取り、10時間のキネティックランを設定します。
測定値の間に軌道が揺れ、440ナノメートルの蛍光励起と500ナノメートルの発光で蛍光測定を行うようにランを設定します。次に、4 x 8グリッドの各PTFEバイアルから200マイクロリットルを96ウェルプレートの対応するウェルにピペットで入れます。
200マイクロリットルを移す前に、5回前後にピペットを移します。96ウェルプレートをプレートリーダーのトレイに入れます。次に、96ウェルプレートに蓋を置き、アッセイを開始します。