蛍光レポータータンパク質を発現する細菌を用いた環状di-GMPモジュレーターのスクリーニング

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異なる試験化合物で増殖した遺伝子組み換え病原菌とネガティブコントロールを含むマルチウェルプレートを取ります。

細菌は、緑色蛍光タンパク質またはGFPをコードする遺伝子を持つプラスミドを運びます。

遺伝子のプロモーターは、細胞内の環状di-GMPまたはc-di-GMP濃度に応答するタンパク質によって活性化されます。

プレートをプレートリーダーに置きます。

c-di-GMP阻害剤がないため、蛍光を最大限発するネガティブコントロールを使用して、最適な蛍光シグナル測定のための設定を調整します。

試験化合物がc-di-GMP形成を阻害すると、細胞内c-di-GMPレベルが低下します。

c-di-GMPレベルの低下は、タンパク質のコンフォメーション変化を引き起こし、プロモーターの抑制とGFP発現の低下につながり、その結果、蛍光が低下します。

蛍光を測定し、データを分析して、病原菌の細胞内c-di-GMPレベルを調節する試験化合物を特定します。

分光光度測定の約30分前に、結露を避けるためにプレートリーダーを摂氏37度に予熱します。読み取る前に、通気性のあるカバーシールをプレートからそっと取り外してください。

次に、ウェルあたり10回のフラッシュと0.2秒の沈降時間の設定で、600ナノメートルの波長で光学密度を測定します。蛍光を測定する前に、ネガティブコントロールウェルA24に基づいてゲインと焦点の自動調整を行い、ゲイン目標値を75%に設定します。

フォーカス調整とウィンドウの右側にあるチャンネルAを選択します。GFPレポーターからの蛍光を、最大励起485ナノメートル、発光最大520ナノメートルで、ウェルあたり10回のフラッシュと0.2秒のセトリング時間で測定します。

検査したすべてのプレートからデータを収集します。データの読み取り値は、プレートリーダー制御ソフトウェアによってデフォルトとして自動的に保存されます。

データを分析するには、制御ソフトウェア内の火星アイコンをクリックして測定値を表示し、統計分析パッケージを開きます。対象のプレート番号をダブルクリックしてデータを取得し、分析用のデータにアクセスします。

ロバストZプライム分析を使用して、アッセイの均一性と再現性を評価します。

次に、増殖阻害率を計算し、テキストプロトコルに詳述されているように、c-di-GMPの細胞内レベルの阻害率を評価します。

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Last updated: 18 July 2026