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まず、膜透過性が高まる電気能力を持つ細菌細胞の懸浮液を含む冷蔵したキュベットから始めます。
懸濁液には有機蛍光色素でタグ付けされた生体分子も含まれています。
高電圧の電気パルスを施して一時的な膜孔を作り出し、生体分子が細胞質に侵入できるようにします。
栄養豊富な培地を加え、細胞をチューブに移します。膜修復を促進するために培養してください。
細胞を遠心分離し、その後、体内化されていない生体分子を含む上清液を廃棄します。
細胞を洗剤を含む高塩バッファーに再懸浮させ、表面に付着した生体分子を剥離します。
再度遠心分離し、上澄液を捨ててバッファー内の細胞を再懸濁させます。
懸濁液をフィルターと遠心分離機に移し、内部化されていない生体分子を含む流出物を廃棄します。その後、新しいバッファーで細胞をすいで再懸濁させます。
細胞をアガロースパッドに取り付け、カバースリップを敷きます。蛍光標識された細菌は可視化の準備が整いました。
低イオン強度バッファーで調製した蛍光生体分子のストックから始め、最大5マイクロリットルの生体分子を20マイクロリットルの有能な細菌または50マイクロリットルの有能な酵母細胞に移します。細胞で培養された蛍光生体分子の量は、電気穿孔後に細胞あたりに内部化された生体分子の量と直接相関しています。
混合物を氷で最大10分間孵化させます。同時に、適切な電極間隔のエレクトロポレーションクヴェットを選び、氷で冷やします。セル混合物を冷やしたキュベットに移します。
キューベットを数回優しく叩いて、溶液の泡を取り除きます。キュベットの水分をペーパータオルで取り除き、クヴェットをエレクトロポレーターに入れます。セルに高電圧パルスをかけてください。
このプロセスの直後、エレクトロポレーターに表示される時間定数が4ミリ秒から6ミリ秒の間であることを確認します。時間定数が低いのは、キュベット内に過剰な塩分や気泡が存在することが原因であり、これにより生体分子の細胞への取り込みが減少または完全に抑制されることがあります。より高い電圧パルスはセルの負荷を改善しますが、セルの生存能力にも影響を及ぼします。
電気穿孔直後、リッチ培地500マイクロリットルを加え、細胞を新しい1.5ミリリットルのチューブに移します。細胞膜を37度Cで、または酵母を29度Cで2〜10分間培養して細胞膜を回復させます。生体分子の取り込みと成長回復の後、細胞を4度の温度で1分間スピンダウンし、上清液を廃棄します。
ペレットを500マイクロリットルのバッファーに再懸浮させ、スピンダウン、上清液除去、バッファー再懸濁のプロセスをさらに3回繰り返します。これらの洗浄工程により、細胞懸濁液から内部化されていない生体分子の痕跡をすべて除去します。
標識されたタンパク質内部化の場合、追加の精製工程として細胞懸濁液を1.5ミリリットルのチューブにピペット移し、その上に0.22ミクロンの膜フィルターを取り付けます。セルを遠心分離でバッファーから分離しつつ、フィルターの上に十分な液体が残っていることを確認してセルが乾燥しないようにし、流れる部分は廃棄します。フィルターの下に500マイクロリットルの新鮮PBSを加え、スピンダウンと新しいPBS添加を2回繰り返します。
3,300gで最後のスピンダウンを行い、1分間前のPBSウォッシュを除去します。細胞を150マイクロリットルのPBSで再懸濁させます。
最後に、以前に作ったアガロースパッドの上部カバースリップを取り外します。細胞をパッドに積み込み、10マイクロリットルの細胞懸濁液をドロップごとにピペットします。新しく洗浄したカバースリップをアガロースパッドの上に置くと、サンドイッチされた細胞は蛍光顕微鏡検査の準備が整います。