2010年11月7日
このプロトコルは、フローサイトメトリーにより細胞質から細胞の形質膜へのGLUT4のトランスロケーションを定量化するために迅速なテクニックを説明します。
この手順の全体的な目的は、インスリン曝露に応答した哺乳類細胞の細胞膜へのGLUT4の転移を検出することです。細胞内にのみGLUT4タンパク質を持つ血清飢餓状態の筋芽細胞を、まず24ウェル培養プレートに播種します。次に、蛍光標識二次抗体でプレインキュベートしたGLUT4の外部エピトープに対する抗体を細胞に添加し、続いてインスリンを添加します。
細胞表面のインスリン受容体が活性化されると、GLUT4が細胞膜表面へと転移します。その後、培地中の抗体がGLUT4を認識します。この時点で細胞を固定し、フローサイトメトリーによって蛍光染色の強度を測定することができます。
この手法は、ggl 4転位およびグルコース代謝の研究に使用できるだけでなく、膜上のCD 1 0 7 Aの露出を介したNK細胞の脱顆粒などの他の系にも適用可能です。本手順では、活発に増殖しているか、あるいはコンフルエンシーが60~80%であり、かつ一晩血清飢餓状態にした細胞を使用することが重要です。トリプシンで細胞を回収した後、洗浄し、通常の増殖培地で200,000 cells/mLの密度で再懸濁させ、24ウェルプレートに1ウェルあたり500 µLで0.1 million cellsずつ播種します。その後、トリプシンから細胞を回復させるため、37 °Cで1時間インキュベートします。
その間に、一次抗体anti glute fourとAlexa Fluor 4 8 8標識二次抗体chicken antigo IgGを5:1の比率で混合します。各ウェルに抗体混合液を10 µL使用することを考慮して、必要な最終容量を算出してください。抗体混合液を室温の暗所で10分間インキュベートします。インキュベートしている間に、インスリンを増殖培地で目的の濃度まで希釈し、2倍濃度のワーキングストックを調製します。
細胞を1時間インキュベートした後、インキュベーターから取り出します。細胞が入った各ウェルに、抗体溶液を10 µLずつ静かに加えます。少なくとも1つのウェルは未染色で残しておくようにしてください。
この陰性サンプルは、後でフローサイトメーターのセットアップに使用します。次に、GLUT4の細胞表面への転位を誘導するため、各ウェルに2倍濃度のインスリンストック液を500 µL加え、プレートを37 °Cの暗所で30分間インキュベートします。インキュベーターから細胞を取り出した後、各ウェルに1 mLの1% PFA含有PBSを加えて固定し、プレートを室温の暗所で20分間インキュベートします。セルリフターを用いて固定された細胞をウェルの底面から穏やかに剥離させ、各ウェルから個別のファコチューブに回収します。
チューブを遠心分離して細胞をペレット化し、ボルテックスして1 mLのPBSで再懸濁して洗浄した後、再度遠心分離します。この洗浄工程を計2回繰り返し、洗浄の合間には上清を捨ててください。
最後に、洗浄した細胞を400 µLの1% PFA含有PBSに再懸濁します。これで、フローサイトメーターを用いてGlut4の細胞表面発現を解析することが可能です。サンプルを持ってフローサイトメーターに到達したら、まず未染色コントロールのデータ取得を開始してください。
前方散乱光(FSC)および側方散乱光(SSC)のパラメータを用いて、広範な生細胞ゲートを設定します。次に、ヒストグラムの範囲内にネガティブピークが表示されるように、FL1チャンネルの電圧設定を調整します。これらのパラメータを設定後、各実験サンプルを測定し、1チューブあたり少なくとも10,000個の生細胞イベントを記録します。
このヒストグラムは、0、1、10、または100 nanomolarのインスリンに曝露した筋芽細胞における表面GLUT4染色のアップレギュレーションを示しています。対照的に、インスリン抵抗性個体由来の筋芽細胞では、100 nanomolarのインスリンに反応してGLUT4をアップレギュレートすることができません。刺激した細胞の平均蛍光強度を非刺激細胞の強度で正規化すれば、正常な筋芽細胞とインスリン抵抗性筋芽細胞のMFIを直接比較することが可能です。
本手順を用いることで、細胞の表面または細胞内にある追加のマーカーを染色し、混合集団における異なる細胞サブセットを同定することが可能です。
このプロトコルでは、フローサイトメトリーを用いて、細胞の細胞質から細胞膜へのGLUT4の転位を定量化する迅速な手法について解説します。本手法により、哺乳類細胞におけるインスリン曝露に応答したGLUT4の転位を検出することが可能です。
GLUT4のトランスロケーションを定量化することで、代謝性疾患モデルにおけるインスリンシグナルの有効性を機能的なリードアウトとして直接的に得ることができます。このフローサイトメトリーベースのアッセイにより、インスリン感受性細胞におけるターゲットエンゲージメントおよびパスウェイ活性化の迅速かつ定量的な評価が可能になります。これにより、分子介入を生理学的なグルコース取り込みメカニズムに関連付けることで、糖尿病および肥満治療薬の初期段階におけるターゲット検証とメカニズムのデリスキングを支援します。
このアッセイは、標的の確認から代謝性疾患モデルにおける機能的検証に至るまで、インスリン経路調節剤の評価を可能にし、創薬から前臨床試験までの連続的なプロセスに適合します。