Name: 細胞星状に7つのステップ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: 学ぶ肝星状細胞の分離法。マウス肝臓から消化酵素灌流と密度勾配遠心分離を用いて高純度の細胞を単離し、光学・免疫蛍光顕微鏡で純度を評価する技術を解説します。

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この作品は、生物医学研究とNIH RO1 AI083426 - 01（FW）の卓越性のためのスミスファミリー賞によって資金を供給された。パトリックMaschmeyerとメラニーフラックは、ベーリンガーインゲルハイム財団からの博士課程の奨学金によってサポートされています。

C57BL / 6マウスは〜20週齢以上で使用してください。 25〜30グラムの重さ、雄マウスの使用が推奨されています。星状細胞の収量は、細胞の分離を星状に先立って2ヶ月のためにマウスにビタミンAに富む食事を供給することにより増加することができます。 Balb / cマウスからの肝星細胞の収率がかなり高いのに対し、約2 × 10 5肝星細胞は、一つC57BL / 6マウスの肝臓から精製することができる。以下のプロトコルは、5匹のマウスに調整されます。動物のケアと実験が承認された動物実験に基づき行われ、委員会のプロトコルを使用していた。 （1）マウスの肝臓の in situ灌流の消化酵素で<ol><li> 37℃の水浴中でSC1バッファーと酵素の灌流液を温める。 </li><li>蠕動ポンプのシリコンチューブにセット翼の注入をマウントします。 </li><li>肝臓の現場灌流のために使用される流量である6.5ml/min、の層流を得るためにPBSでポンプのキャリブレーション。 SC1溶液をシリコンチューブを平衡化する。 </li><li>ケタミン（90 mg / kg体重）及びキシラジン（10 mg / kg）のソリューションと深いnarcotizationを確保するために反射の消失のためのテストの腹腔内注射によってマウスを麻酔。 </li><li>適当な塩基での仰臥位でマウスを修正。 </li><li>腹部皮膚に縦切開を行い、腹膜を露出させるハサミとピンセットを使用してください。 </li><li>慎重に門脈を露出させるために腹膜を開き、腹腔の動物の左側に腸を動かす。 </li><li>門脈に設定された注入のカニューレを挿入します。このステップでは、実体顕微鏡の使用が推奨されます。 </li><li> 30ミリリットルSC1液と肝臓の灌流を開始します。フローの開始直後に下大静脈を開きます。肝臓の成功したフラッシュは肝臓の組織の色の消失によって示されます。 </li><li> 30ミリリットルプロナーゼE溶液を用いて肝臓を灌流。成功した消化されると、肝臓の葉が膨張します、と小葉は、カプセルを介して異なる表示されます。 </li><li> 30ミリリットルコラゲナーゼP溶液で肝臓を灌流。この時点で肝臓はその形を失い、弛緩と非晶質に見えるしている。 </li><li>慎重に横隔膜と周囲の臓器から肝臓を分離し、氷上で70ミリリットルSC2ソリューションに格納します。 </li><li>追加のマウスのための手順を繰り返します。 </li></ol> 2。マウスの肝臓の in vitro消化において それ以後のすべての作業手順は、層流フードで無菌条件下で行う必要があります。 <ol><li>良く切れるはさみを使用して約2x2x2mm 3の部分に肝臓を切り取ります。 </li><li>プロナーゼE -コラゲナーゼP溶液50mlのある肝臓の作品を含む70ミリリットルSC2のサスペンションを組み合わせるとDNase I溶液の1mlを加える。 </li><li> 37℃20分のための肝臓を消化° Cで撹拌しながら。 </li></ol> 3。密度勾配遠心<ol><li> 6 50ミリリットルのファルコンチューブに70μmセルストレーナーを通して細胞懸濁液を濾過し、SC2バッファーで50ミリリットルまで追加。 600グラムと4℃で10分間遠心</li><li>注意深く上清の40ミリリットルを吸引し、各チューブに150μLDNase I溶液を追加し、細胞を懸濁します。 </li><li> 4 50ミリリットルファルコンチューブにプール細胞懸濁液をし、600グラムと4℃で10分間GBSS - B、遠心機で洗う℃に</li><li>慎重にペレットと各チューブへ追加150μLDNase I溶液を乱すことなく、可能な限り上清のを吸引除去する。チューブあたり10ミリリットルGBSS - Bの細胞ペレットを再懸濁します。 </li><li>プールは2 50ミリリットルファルコンチューブに細胞や試験管当たり36ミリリットルの合計体積にGBSS - Bを追加します。各チューブに14ミリリットルナイコデンツのソリューションを加え、よく混ぜる。 </li><li>合計で10本で、その結果、一12ミリリットル勾配遠心チューブに細胞懸濁液10mlのを転送する。優しくチューブあたり1.5ミリリットルGBSS - Bで細胞懸濁液を重ねます。 </li><li> 1500グラムと4℃で15分のための勾配を遠心° Cブレーキなし。星状細胞は白い輪のような相間で発見されているのに対し、その後、肝細胞がチューブの底にペレット化されます。 </li><li>慎重に星状細胞を含む中間相を収穫し、GBSS - Bでそれらを洗って、10分間遠心するを600グラムと4℃ </li><li>上清を吸引除去し、10％熱不活性化FBS、1％ペニシリン/ストレプトマイシン、2mMのL -グルタミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、及び10mMのHEPESを添加した20ミリリットルDMEMで細胞を懸濁します。 2 × 10 4細胞/ cm 2の濃度で組織培養フラスコに細胞を移す。 37℃、5％CO 2で細胞をインキュベートする。 </li><li>とすぐに肝星細胞は死細胞と細胞残渣を洗い流すために（約2時間の準備の後に）接着なので、メディアを変更します。 </li><li>翌日、星状細胞でsは核周囲ビタミンAを格納する脂質小胞との特徴的な星型の形態を開発する必要があります。 </li><li>その後の実験では、肝星細胞は容易にそのようなAccutase、などなど、軽度の酵素的ソリューションを使用して、非コーティングプラスチック表面から切り離すことができます。 </li></ol> 4。代表的な結果： 提供するプロトコルを使用して肝星細胞の調製後、孤立した個体群の純度は、3等星のような形としてこの細胞型の主な特性は、核周囲の脂質滴、およびグリア線維性酸性タンパク質（GFAPの発現を考慮してテストすることができます）。特徴的な細胞分離後の肝星細胞の2Hの外観だけでなく、in vitro培養の1日目及び3のための代表的な写真を図1に示されている。図2は、細胞の単離後3日間培養された肝星細胞におけるGFAPのための代表的な免疫蛍光染色を示す。肝星細胞は、in vitro培養時の筋線維芽細胞へと分化する。それらの活性化星細胞の特徴特徴は、α平滑筋アクチン（αSMA）の式です。図3は、in vitro培養の7日目に活性化星細胞のアスマとミオシンIIAのための免疫蛍光染色を示す。 <img src="/files/ftp_upload/2710/2710fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1肝星細胞の特徴的な形態。星状細胞は、提供されるプロトコルを使用してマウスの肝臓から単離された。画像は、星状細胞の細胞単離後2H（A、B）、ならびに1日目（C）とin vitro培養の3日目（D）上を表しています。肝星細胞は、核周辺部位での脂質小胞の高い量を示し、in vitro培養の最初の日（倍率200倍）の間に彼らの独特のアストラル様形態を獲得する。 <img src="/files/ftp_upload/2710/2710fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2肝星細胞は、特に肝臓でのGFAPを発現している。星細胞は、in vitro培養の3日目に単離され、immunofluorescently GFAP（赤）で染色した。細胞核は青色（ヘキスト染色）に示されている。 <img src="/files/ftp_upload/2710/2710fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。肝星細胞が筋線維芽細胞に分化する。 C57BL / 6マウスから単離した肝星細胞は7日間培養した。その後、彼らは、チャンバースライドに移し、そしてアスマ（赤で表示）とミオシンIIA（緑で示される）のために染色した。細胞核はヘキスト（青色）で対比染色した。 <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> SC1バッファ </td></tr><tr><td> EGTA </td><td> 190mg </td></tr><tr><td>グルコース</td><td> 900mg </td></tr><tr><td> HEPES </td><td> 1Mストック溶液10mlを</td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td> 400mgを</td></tr><tr><td>のNa 2 HPO 4 × 2 H 2 O </td><td> 151mg </td></tr><tr><td> NaClの</td><td> 8グラム</td></tr><tr><td>のNaH 2 PO 4 × H 2 O </td><td> 78mg </td></tr><tr><td> NaHCO 3の </td><td> 350mg </td></tr><tr><td>フェノールレッド</td><td> 6mgを</td></tr><tr><td>のdH 2 O </td><td> 1リットルに一杯に</td></tr><tr><td colspan="2"> SC2バッファ </td></tr><tr><td>塩化カルシウム2 × 2H 2 O </td><td> 560mg </td></tr><tr><td> HEPES </td><td> 1Mストック溶液10mlの</td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td> 400mgを</td></tr><tr><td>のNa 2 HPO 4 × 2 H 2 O </td><td> 151mg </td></tr><tr><td> NaClの</td><td> 8グラム</td></tr><tr><td>のNaH 2 PO 4 × H 2 O </td><td> 78mg </td></tr><tr><td> NaHCO 3の </td><td> 350mg </td></tr><tr><td>フェノールレッド</td><td> 6mgを</td></tr><tr><td>のdH 2 O </td><td> 1リットルに一杯に</td></tr><tr><td colspan="2"> GBSS -バッファ </td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td> 370mg </td></tr><tr><td>塩化カルシウム2 × 2H 2 O </td><td> 225mg </td></tr><tr><td>グルコース</td><td> 991mg </td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> 30mgを</td></tr><tr><td>のMgCl 2 × 6 H 2 O </td><td> 210mg </td></tr><tr><td> MgSO 4を 365 H 2 O </td><td> 70mg </td></tr><tr><td>のNa 2 HPO 4 × 2 H 2 O </td><td> 75mg </td></tr><tr><td> NaHCO 3の </td><td> 227mg </td></tr><tr><td>フェノールレッド</td><td> 6mgを</td></tr><tr><td>のdH 2 O </td><td> 1リットルに一杯に</td></tr><tr><td colspan="2">GBSS - Bバッファ </td></tr><tr><td>塩化カルシウム2 × 2H 2 O </td><td> 225mg </td></tr><tr><td>グルコース</td><td> 991mg </td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td> 370mg </td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> 30mgを</td></tr><tr><td>のMgCl 2 × 6 H 2 O </td><td> 210mg </td></tr><tr><td> MgSO 4を 365 H 2 O </td><td> 70mg </td></tr><tr><td>のNa 2 HPO 4 × 2 H 2 O </td><td> 75mg </td></tr><tr><td> NaClの</td><td> 8グラム</td></tr><tr><td> NaHCO 3の </td><td> 227mg </td></tr><tr><td>フェノールレッド</td><td> 6mgを</td></tr><tr><td>のdH 2 O </td><td> 1リットルに一杯に</td></tr><tr><td colspan="2"> プロナーゼEの灌流液 </td></tr><tr><td>プロナーゼE </td><td> 100mgの（4000 PU / MG分） </td></tr><tr><td> SC2バッファ</td><td> 200ミリリットル</td></tr><tr><td colspan="2"> コラゲナーゼPの灌流液 </td></tr><tr><td>コラゲナーゼP </td><td> 85mg（1.78 U / mgのlyo） </td></tr><tr><td> SC2バッファ</td><td> 200ミリリットル</td></tr><tr><td colspan="2"> プロナーゼE -コラゲナーゼPソリューション </td></tr><tr><td>プロナーゼE </td><td> 50mgの（4000 PU / MG分） </td></tr><tr><td>コラゲナーゼP </td><td> 85mg（1.78 U / mgのlyo） </td></tr><tr><td> SC2バッファ</td><td> 50ミリリットル</td></tr><tr><td colspan="2"> DNase I溶液 </td></tr><tr><td> DNase Iを</td><td> 6mgを（約2000U/mg） </td></tr><tr><td> GBSS - B </td><td> 3ミリリットル</td></tr><tr><td colspan="2"> ナイコデンツソリューション </td></tr><tr><td>ナイコデンツ</td><td> 8グラム</td></tr><tr><td> GBSS - </td><td> 28ミリリットル</td></tr></tbody></table> 表1。バッファと肝星細胞を分離するために必要な酵素のソリューション。すべてのバッファのpHは7.3から7.4に調整する必要があります。さらに、すべてのバッファの滅菌濾過することをお勧めします。特定の酵素活性に応じて使用される酵素の量を調整することが重要です。

<ol><li>Friedman, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hepatic+stellate+cells%3A+protean%2C+multifunctional%2C+and+enigmatic+cells+of+the+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Hepatic stellate cells: protean, multifunctional, and enigmatic cells of the liver.</a> Physiol Rev. 88, 125-172 (2008).</li>
<li>Geerts, A. H. istory <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((heterogeneity%2C+developmental+biology%2C+and+functions+of+quiescent+hepatic+stellate+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Liver+Dis%22%5BJournal%5D)">heterogeneity, developmental biology, and functions of quiescent hepatic stellate cells.</a> Semin Liver Dis. 21, 311-335 (2001).</li>
<li>Gressner, A. M. &amp, Weiskirchen, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modern+pathogenetic+concepts+of+liver+fibrosis+suggest+stellate+cells+and+TGF-beta+as+major+players+and+therapeutic+targets%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Modern pathogenetic concepts of liver fibrosis suggest stellate cells and TGF-beta as major players and therapeutic targets.</a> J Cell Mol Med. 10, 76-99 (2006).</li>
<li>Reynaert, H., Thompson, M. G., Thomas, T., Geerts, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hepatic+stellate+cells%3A+role+in+microcirculation+and+pathophysiology+of+portal+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">Hepatic stellate cells: role in microcirculation and pathophysiology of portal hypertension.</a> Gut. 50, 571-581 (2002).</li>
<li>Winau, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ito+cells+are+liver-resident+antigen-presenting+cells+for+activating+T+cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Ito cells are liver-resident antigen-presenting cells for activating T cell responses.</a> Immunity. 26, 117-129 (2007).</li>
<li>Minicis, S. D. e <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profiles+during+hepatic+stellate+cell+activation+in+culture+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Gene expression profiles during hepatic stellate cell activation in culture and in vivo.</a> Gastroenterology. 132, 1937-1946 (2007).</li>
<li>Knittel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+liver+myofibroblasts+and+hepatic+stellate+cells+in+normal+and+diseased+rat+livers%3A+distinct+roles+of+%28myo-%29fibroblast+subpopulations+in+hepatic+tissue+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Histochem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Localization of liver myofibroblasts and hepatic stellate cells in normal and diseased rat livers: distinct roles of (myo-)fibroblast subpopulations in hepatic tissue repair.</a> Histochem Cell Biol. 112, 387-401 (1999).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

肝星細胞は肝臓に不可欠な生理学的および病態生理学的プロセスを調節する。また、星状細胞は、それらを肝免疫応答の重要な構成要素をレンダリングする、抗原提示特性を有する。肝星細胞が肝臓の総細胞数の10〜15％を占めるが、これらの細胞の分離は、Disseの類洞周囲腔に局在のために挑戦している。 ここでは、 現場消化およびその後の勾配遠心分離のことで、マウスの肝臓から肝星細胞を分離する簡単な方法を提示する。このプロトコルは、免疫学的アッセイに適した高純度の星状細胞の単離を可能にします。 単離された細胞の実体は、星状、核周囲のビタミンを格納する脂質小胞、およびGFAPの発現を含む、肝星細胞の三大特徴を、考慮して制御することができます。免疫蛍光染色およびフローサイトメトリーによって評価されるようにこれらの基準によると、記述されたプロトコルを使用して得られる星状細胞は、日常的に〜99％純粋です。星状細胞のアイソレーションの潜在的な汚染物質は、クッパー細胞と肝臓の樹状細胞（DC）です。したがって、我々は、表面...

<table border="1"><tbody><tr><th>試薬の名前</th><th>会社</th><th>商品番号</th></tr><tr><td> 70μmセルストレーナー</td><td> BD </td><td> 352350 </td></tr><tr><td>塩化カルシウム2 × 2H 2 O </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> C3306 </td></tr><tr><td>コラゲナーゼP </td><td>ロッシュ</td><td> 11249002001 </td></tr><tr><td> DMEM </td><td>ギブコ</td><td> 11960 </td></tr><tr><td> DNase Iを</td><td>ロッシュ</td><td> 10104159001 </td></tr><tr><td> DPBS </td><td> Cellgro </td><td> 21から031 - CV </td></tr><tr><td> EGTA </td><td>フルカ</td><td> 3777 </td></tr><tr><td>ウシ胎仔血清</td><td>ギブコ</td><td> 16000 </td></tr><tr><td>グルコース</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> G7528 </td></tr><tr><td>勾配遠心チューブ</td><td>グライナーバイオワン</td><td> 163160 </td></tr><tr><td> HEPES </td><td>ギブコ</td><td> 15630 </td></tr><tr><td> KCL </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P9541 </td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P9791 </td></tr><tr><td> L -グルタミン</td><td>ギブコ</td><td> 25030 </td></tr><tr><td>のMgCl 2 × 6H 2 O </td><td>フルカ</td><td> 63068 </td></tr><tr><td>し、MgSO 4 × 7H 2 O </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> M2773 </td></tr><tr><td>のNa 2 HPO 4 × 2H 2 O </td><td>フルカ</td><td> 71643 </td></tr><tr><td> NaClの</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> S3014 </td></tr><tr><td>のNaH 2 PO 4 × H 2 O </td><td>フルカ</td><td> 71507 </td></tr><tr><td> NaHCO 3の </td><td>フルカ</td><td> 71628 </td></tr><tr><td>ナイコデンツ</td><td> Accudenz AG </td><td> AN7050/BLK </td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>ギブコ</td><td> 15140 </td></tr><tr><td>蠕動ポンプ</td><td>コー​​ルパーマー</td><td> HV - 7523〜70 </td></tr><tr><td>フェノールレッド</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P4633 </td></tr><tr><td>プロナーゼE </td><td>カルビオケム</td><td> 7433から2 </td></tr><tr><td>シリコンチューブ</td><td> Masterflex </td><td> HV - 96440〜14 </td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td>ギブコ</td><td> 11360 </td></tr><tr><td>組織培養フラスコ（25センチメートル2） </td><td> BD </td><td> 353108 </td></tr><tr><td>翼の輸液セット</td><td>テルモ</td><td> 1SV27EL </td></tr></tbody></table>

細胞星状に7つのステップ

Seven Steps to Stellate Cells

肝星細胞は星状形態の肝臓常駐細胞であり、肝類洞内皮細胞と肝細胞の1,2の間にDisseの空間に配置されています。星状細胞は、骨髄の前駆体に由来し、全身のビタミン1、2の80％にまで保存されています。活性化されると、星状細胞は、このように肝線維症3に貢献し、細胞外マトリックスを生成するために筋線維芽細胞に分化する。契約する能力に基づいて、筋線維芽細胞星状細胞は、門脈圧亢進症4に関連血管緊張を調節することができる。最近、我々は、肝星細胞は、強力な抗原提示細胞であり、NKT細胞だけでなく、従来のTリンパ球5をアクティブにすることができます示した。 ここでは、マウスの肝臓から肝星細胞の効率的な製造方法を示す。そのperisinusoidalローカライズのために、肝星細胞の分離は、マルチステップのプロセスです。 Disseのスペースから分離へのアクセス星状細胞をレンダリングするためには、マウスの肝臓は、消化酵素のプロナーゼEとコラゲナーゼP.以下の血流とその場で灌流され、肝臓の組織は、プロナーゼEとコラゲナーゼP の持つ追加の酵素処理に供される試験管 。その後、このメソッドは、肝星細胞のビタミンA -を格納する脂肪滴の膨大な量を利用しています。この機能は8％ナイコデンツの勾配で遠心分離によって、他の肝細胞型から星状細胞を分離することができます。ここで説明するプロトコルは、星状細胞の非常に純粋で均一な人口をもたらします。調剤の純度は、蛍光顕微鏡またはフローサイトメトリーによる分析の前にマーカー分子グリア線維性酸性タンパク質（GFAP）、のために染色によって評価することができる。さらに、光学顕微鏡では脂肪滴を大量に抱いて星型肝星細胞のユニークな外観を明らかにする。 一緒になって、我々は、その形態学的外観および星状細胞の実体を定義するために役立つGFAPの発現の代表画像を含む肝星細胞の効率的な分離のための詳細なプロトコールを提示する。

ここでは、マウスの肝臓から肝星細胞の単離のための方法を説明します。星状細胞の精製のために、マウスの肝臓は、消化されています<em&gt;その場で</em&gt;と<em&gt; in vitroで</em&gt;密度勾配遠心分離の前にプロナーゼ、コラゲナーゼ処理による。この手法は、高純度の肝星細胞が得られます。

肝星細胞は、星状の形態を持つ肝臓に常在する細胞であり、肝類洞内皮細胞に挟まれたディッセ腔に位置している。

この手順の全体的な目的は、マウス肝臓から肝星細胞を単離することです。これは、まずマウス肝臓に対して消化酵素を用いた2回の灌流を行うことで達成されます。灌流後、肝臓を細かく裁断して、次に行うin vitro消化の効率を高めます。最終ステップとして、密度勾配遠心分離法により肝星細胞を他の肝細胞型から分離します。最終的に肝星細胞が得られ、その純度は光学顕微鏡および免疫蛍光顕微鏡で評価できます。本手順のデモンストレーションは、研究室の大学院生であるPatrick Meyerが行います。マウス肝臓へのNC 2灌流の準備として、まずSC 1バッファーと酵素灌流溶液を37 °Cの恒温槽で温めておきます。次に、ペリスタポンプを調整して6.5 milliliters per minuteの層流が得られるように設定し、ポンプのシリコンチューブをSC one溶液で平衡化します。ここで、反射の消失を確認し、麻酔をかけたマウスが深く鎮静されていることを確かめます。その後、マウスを適切なベースの上に仰臥位で固定します。ハサミとピンセットを用いて腹壁を縦方向に切開し、腹膜を露出させます。腹膜を慎重に開き、門脈を露出させるために腸管を腹腔内から動物の左側へと移動させます。この手順で最も困難な点は、消化酵素を用いた肝臓のゼト灌流であり、これについて実演します。次に、カニューレを挿入する際は実体顕微鏡を使用し、灌流中の肝構造の変化を注意深く観察することが重要です。実体顕微鏡下で、注入セットのカニューレを門脈に挿入します。30 mLのSC one溶液を用いて肝臓の灌流を開始します。血流の開始直後に、下大静脈を開きます。肝臓の洗浄が成功したことは、肝組織の色が抜けることで判断されます。次に、30 millilitersのPronase E溶液で肝臓を灌流します。Pronase E溶液による灌流後、肝葉が膨張し、被膜を通して肝小葉が明確に観察できるようになります。続いて、30 millilitersのcollagenase P溶液で灌流します。collagenase Pによる灌流が完了したら、横隔膜および周囲の臓器から慎重に切り離してマウスから肝臓を採取し、氷上の70 millilitersのSC two溶液に保存します。この時点で肝臓は形状を失い、緊張がなく無定形に見えます。マウス肝臓の消化手順は、層流クリーンベンチ内などの無菌条件下で実施してください。鋭い剪刀を用いて、肝臓を約2×2×2 $\text{mm}^3$の大きさに細切します。次に、70 mLのSC two懸濁液と肝臓の断片を、50 mLのプロテアーゼEコラゲナーゼP溶液と混合します。1 mLのdna, one solutionを加え、攪拌しながら37 °Cで20分間、肝臓を消化させます。肝組織を酵素消化した後、密度勾配遠心分離法により星細胞を他の肝細胞型から分離します。この手順を開始するには、細胞懸濁液を70 µmのセルストレーナーでろ過して6本の50 mLファルコンチューブに分注し、E2バッファーで細胞を洗浄した後、600 ×g、4 °Cで10分間遠心分離します。遠心分離後、各チューブから上清を40 mL慎重に吸引します。次に、各チューブに150 µLのDNA's one溶液を加え、細胞を再懸濁します。細胞懸濁液を4本の50 mL Falconチューブにまとめ、G-B-S-S-Pで洗浄後、600 ×g、4 °Cで10分間遠心分離します。ペレットを乱さないように注意しながら、上清を可能な限り慎重に吸引し、各チューブに150 µLのDNAs one溶液を加えます。各チューブの細胞ペレットを10 millilitersのG-B-S-S-Bに懸濁します。細胞を2本の50 milliliterファルコンチューブにまとめ、1本あたりの総容量が36 millilitersになるまでG-B-S-S-Bを加えます。各チューブに14 millilitersのden溶液を加え、十分に混ぜ合わせます。次に、細胞懸濁液10 millilitersを12 milliliterの密度勾配遠心管1本に分注し、計10本のチューブを作成します。各チューブの細胞懸濁液の上に、G-B-S-S-B 1.5 millilitersを静かに重層します。この勾配チューブを、1500 Gs、4 °Cで15分間、ブレーキなしで遠心分離します。その後、肝細胞はチューブの底部にペレットとして回収され、一方、星細胞は界面に白いリング状に認められます。5 mLピペットを用いて、星細胞を含む界面を慎重に回収し、50 mLチューブに移します。GBSSを加えて洗浄し、600 G、4 °Cで10分間遠心分離します。上清を吸引し、サプリメント添加DMEM 20 millilitersで細胞を再懸濁します。細胞数をカウントした後、1 cm²あたり2 × 10⁴個の濃度で組織培養フラスコに移し、37 °C、5% CO2条件下でインキュベートします。調製から約2時間後に肝星細胞が接着するため、培地を交換して死細胞および細胞残渣を洗浄します。細胞をインキュベーターに戻します。本プロトコルを用いてマウス肝臓から肝星細胞を調製した際の代表的な結果をここに示します。in vitro培養の1日目および3日目の細胞は、肝星細胞に特徴的な形態を示しています。細胞は星状の形態を呈し、脂質小胞の蓄積が認められます。核部位において、単離した肝星細胞の純度は、グリア線維性酸性タンパク質（GFAP）の発現によっても確認できます。これらの画像は、細胞単離後3日間培養した肝星細胞における GFAP の代表的な免疫蛍光染色結果を示しており、赤色で表示されています。このビデオを視聴することで、十分な収量の純粋な星細胞を得るための、マウス肝臓からの肝星細胞単離方法について十分に理解できるはずです。肝灌流時に効率的な消化が行われるようにすることが重要です。最後に、肝胆道細胞の形態および表現型を評価し、単離された細胞の適切な実体を確認することが不可欠です。

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人工多能性幹細胞から小脳細胞の2次元単層を生成する技術

Stentor coeruleusにおける単一細胞創傷治癒中の細胞質の流れの可視化

この資料は、乳癌細胞の浸潤を定量化するための3次元（3D）のアッセイの使用のための詳細な方法論を提供する。具体的には、細胞が侵入したときに発生する膜の完全性の喪失を検査するためにこのようなアッセイ、定量化、およびデータ分析だけでなく、メソッドを設定するために必要な手順を説明します。...

3次元（3D）モデルを用いた乳癌細胞浸潤の定量化

ヒト脂肪由来の間質細胞内の転写の不均一性は、細胞表面マーカーと骨形成遺伝子を使用して単一細胞レベルで定義することができます。...

強化された骨形成のためのヒト脂肪由来間質細胞の単離および濃縮

ヒト多能性幹細胞（hPSCs）は差別化した別個の組織パターンに自己組織化するための固有の能力を持っています。これは、空間的な環境勾配の提示を必要とするが。我々はHPSC分化パターンを制御するための生化学的および機械的な勾配を生成するためのシンプルかつ堅牢な方法としてステンシル微細を提示します。...

分化運命の空間組織を探るためのヒト多能性幹細胞のステンシルマイクロパターニング

B 細胞受容体に対する抗体、初期段階のモデルをコーティングした coverslips に拡がっている B 細胞で同時にイメージ アクチン構造、微小管と微小管プラス端結合蛋白質に STED...

アクチンおよび誘導放出の枯渇 (STED) 顕微鏡を用いた B 細胞免疫シナプスにおける微小管細胞骨格の可視化

このプロトコルは、Caco2結腸腺癌細胞から3次元スフェロイドを生成し、増殖させる新規、堅牢、再現性培養システムを提示する。この結果は、化学療法への応答を含む癌幹細胞生物学を研究するためのこのアプローチの適切性に関する最初の概念実証を提供する。...

大腸癌幹細胞を研究するスフェロイドの3次元モデル

心臓自律神経系、特に交感神経の神経系における病態生理学的変化は、心室性不整脈の発症および維持に寄与する。本プロトコルでは、マウスの星状神経節を特徴付け、基礎となる分子および細胞プロセスの理解を深める方法を示す。...

ネズミ星状神経節の位置、解剖、分析

ここでは、マウス骨髄細胞を表現型造血幹および前駆細胞に単離および染色するための簡単なプロトコルと、支持するニッチ内皮および間葉系幹細胞について説明します。内膜および中枢骨髄領域に位置する細胞を濃縮する方法も含まれる。...

マウス骨髄造血幹・前駆細胞および間質ニッチ細胞のフローサイトメトリー解析

ここでは、マウスの血管線条から原発周辺細胞の分離、精製、培養および酸化ストレスおよび細胞老化の in vitro...

新生マウスからの血管条線の一次境界細胞の単離および培養

学ぶ肝星状細胞の分離法。マウス肝臓から消化酵素灌流と密度勾配遠心分離を用いて高純度の細胞を単離し、光学・免疫蛍光顕微鏡で純度を評価する技術を解説します。

細胞星状に7つのステップ

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