リソスタフィンベースの酵素保護アッセイ:細胞外細菌の酵素媒介選択的死滅による細胞内黄色ブドウ球菌負荷を定量化するIn Vitro法

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適切な培地中の上皮細胞の単層から始めます。これらの細胞は、膜にまたがる表面受容体であるインテグリンを発現します。培地には、糖タンパク質である上皮細胞分泌フィブロネクチンが含まれています。

グラム陽性病原菌である黄色ブドウ球菌の懸濁液を培養プレートに加えます。これらの細菌には、細胞壁に固定されたフィブロネクチン結合タンパク質 (FnBP) が含まれています。

プレートをインキュベートして細菌感染を開始し、フィブロネクチンが細菌のFnBPおよび上皮宿主細胞上のインテグリンに結合します。この三者間のFnBP-フィブロネクチン-インテグリン相互作用は、宿主における細菌の内在化を媒介します。

細胞をリソスタフィン(エンドペプチダーゼ酵素)で処理し、インキュベートします。リソスタフィンは細胞外細菌の細胞壁に選択的に侵入します。ペプチドグリカンのペンタグリシン架橋を切断し、それによってペプチドグリカンを溶解し、細胞内細菌がリソスタフィンから保護されたままになります。

培養物にタンパク質分解酵素を補充して残りのリソスタフィンを不活性化し、ステップで細胞内細菌を殺すのを防ぎます。

培養物に溶解バッファーを添加すると、宿主上皮細胞が破裂し、細胞溶解物中の細胞内細菌が放出されます。続いて、細菌を含む細胞溶解物を適切な培養プレートにプレートし、インキュベートします。

細菌は成長して増殖して細菌コロニーを形成し、これを分析して宿主細胞における細菌の内在化の程度を推定できます。

細胞接種の前に、24ウェルプレートのすべてのウェルを低倍率顕微鏡で観察し、細胞が健康で期待どおりに成長していることを確認します。次に、使用済み細胞培養培地を24ウェルプレートから取り出して廃棄し、100%コンフルエント細胞を含む各ウェルに500マイクロリットルの細菌懸濁液を加えます。細胞を摂氏36度、二酸化炭素5%で2時間インキュベートします。

改良された酵素保護アッセイで細胞内細菌を定量するには、テキスト原稿に記載されているように、4X溶解バッファー、2%Triton X-100、トリプシン-EDTA、およびリソスタフィンストックおよび作業溶液を調製します。

次に、リソスタフィン作業溶液250マイクロリットルに6ミリリットルの完全感染培地を加えることにより、リソスタフィンを添加した6.25ミリリットルの完全感染培地を調製します。次に、リソスタフィンを添加した250マイクロリットルの完全感染培地を各ウェルに加え、プレートを手で回転させてプレートを穏やかに撹拌します。

リソスタフィンが細胞外細菌を殺すようにするには、細胞を摂氏36度、二酸化炭素5%で1時間インキュベートします。次に、10マイクロリットルのプロテイナーゼKを1ミリリットルあたり20マイクログラムで各ウェルに加え、細胞を室温で2分間インキュベートすることにより、リソスタフィンを不活性化します。

次に、250マイクロリットルの4X溶解バッファーを加えて浸透圧ショックによって細胞を溶解し、細胞を摂氏36度で10分間インキュベートします。インキュベーション後、細胞溶解液を数回上下にピペットで移動して、細胞が完全に溶解され、均質化されていることを確認します。

次に、自動スパイラルプラッターを使用して各ウェルの黄色ブドウ球菌負荷を決定し、寒天プレートを摂氏36度で18〜24時間インキュベートします。翌日、コロニーカウンターでコロニーの数を数え、各ウェルの細胞内黄色ブドウ球菌の負荷を計算します。

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最終更新:15 8月 2026