ヒト化メディエーター酵素放出アッセイ:in vitroで好塩基球脱顆粒反応をモニタリングすることにより、試験抗原のアレルギー性をスクリーニングする免疫化学的方法

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アレルゲン(非病原性抗原)にさらされると、抗原提示細胞はアレルゲンを処理し、2型ヘルパーTリンパ球に提示します。これらのTリンパ球は、Bリンパ球を形質細胞に分化させ、循環好塩基球(顆粒含有分泌細胞)の表面にある高親和性IgE特異的Fc受容体に結合する免疫グロブリンE、IgE抗体を産生します。

その後、アレルゲンにさらされると、IgE-Fc 複合体はアレルゲンを認識して架橋し、好塩基球を活性化してサイトカインやβ-ヘキソサミニダーゼを含むリソソーム酵素などのメディエーターを含む顆粒を放出し、強力な炎症反応を引き起こします。

試験抗原のアレルギーの可能性をin vitroでスクリーニングするには、ヒトIgE特異的Fc受容体を発現する形質導入されたラット癌性好塩基球の懸濁液から始めます。アレルギードナーからのIgE含有ヒト血清で治療します。IgE抗体は好塩基球Fc受容体に結合して感作します。

次に、感作好塩基球に緩衝液と適切な量の試験抗原を追加します。抗原は、Fc受容体に結合したIgEに対する親和性に応じて、抗体と架橋し、好塩基球の脱顆粒を開始し、β-ヘキソサミニダーゼを含むメディエーターを溶液中に放出します。

溶液をβ-ヘキソサミニダーゼの蛍光基質を含む新鮮なマルチウェルプレートに集め、インキュベートします。β-ヘキソサミニダーゼは基質を加水分解し、蛍光生成物を生成します。インキュベーション後、高pHバッファーを加えてβ-ヘキソサミニダーゼ活性を阻害し、反応を停止します。

マイクロプレートリーダーを使用して、形成された生成物の蛍光を測定し、放出されたβ-ヘキソサミニダーゼ活性を示し、次に好塩基球の脱顆粒を誘導する抗原のアレルギーの可能性を測定します。

事前にインキュベートしたAg8 /血清懸濁液を遠心分離し、Ag8細胞ペレットを乱すことなく、50マイクロリットルの遠心分離したAg8 /血清懸濁液をヒト化RBL細胞を含む各ウェルに移します。

抗原を含まない感作、刺激されていない細胞を、ボトムシグナルプラトーまたはバックグラウンドを示すための無抗原コントロールとして使用し、バックグラウンドおよび最大溶解コントロールウェルを感作しないでください。プレートに蓋をして、摂氏37度、二酸化炭素5%〜7%で一晩インキュベートします。

血清含有細胞培地を吸引します。プレートを反転させて吸収紙に軽くたたき、ヒト化RBL細胞を洗浄するためのプレートを空にします。ウェルあたり200マイクロリットルのTyrodeバッファーを加えて細胞を3回洗浄し、最初の2回の洗浄で洗浄ごとに約30秒間インキュベートします。Tyrodeのバッファーを3回目に添加した後、バッファーを吸引し、抗原希釈液を追加する準備ができるまで溶液をウェルに残します。

100マイクロリットルの抗原溶液を、前感作されたヒト化RBL細胞を含む各ウェルに移しますが、抗原で最大溶解および非感作バックグラウンド細胞を刺激しません。

100マイクロリットルのTyrodeバッファーを最大溶解コントロールウェル、非感作バックグラウンドコントロールウェル、および感作無抗原ウェルに加えます。細胞を摂氏37度、二酸化炭素5%〜7%で1時間インキュベートします。

最大溶解コントロールウェルをウェルあたり10マイクロリットルの10%Triton X-100で処理し、適切に混合して細胞を完全に溶解し、ベータ-ヘキソサミニダーゼを100%放出します。50マイクロリットルの基質溶液を新しい非結合性96ウェルプレートに加えます。

50マイクロリットルの上清をヒト化RBL細胞含有プレートのウェルから基質溶液を含む新しいプレートに移し、プレートを摂氏37度で1時間インキュベートして、蛍光基質の変換を可能にします。

ウェルあたり100マイクロリットルの停止液を加え、テキスト原稿に記載されているように蛍光を測定します。

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最終更新:15 8月 2026