$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
調節タンパク質は、転写因子と同様に、プロモーター領域の特定のDNA配列を認識して結合し、遺伝子発現を調節します。
電気泳動移動度シフトアッセイを使用して特定の転写因子とDNAの相互作用を検出するには、目的の転写因子と特定の短い赤外蛍光色素標識DNAプローブを含むチューブを結合バッファーに含めます。暗所でインキュベートし、染料の光退色を防ぎます。
バッファーのイオン強度とpHは、転写因子がDNAプローブ上の特定の結合配列を同定して結合するための適切な条件を提供します。バッファー中のマグネシウムイオンは、タンパク質-DNA複合体をさらに安定化します。
混合物に適切なローディング色素を加えると、電気泳動の進行を視覚化できます。この混合物とDNAプローブをプレキャストの非変性ポリアクリルアミドゲルのウェルにロードします。
暗闇の中で電気泳動を行います。
印加された電界により、低分子量で結合していない負に帯電したDNAプローブがゲルを通って正に帯電した陽極に向かって移動します。しかし、分子量が高い大きなタンパク質-DNAプローブ複合体はゆっくりと移動するため、ゲル内のDNAの移動が遅れ、移動が変化します。
電気泳動後、赤外線イメージングシステムを使用してゲルをスキャンし、赤外蛍光色素標識DNAプローブを視覚化します。
遊離DNAプローブバンドはゲルの底にあり、タンパク質-DNA複合体はゲル上にシフトしたバンドとして現れ、タンパク質-DNA複合体の形成を示します。
Tris-HCl、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、EDTA、DTT、BSA、および二重蒸留水を混合して、1ミリリットルの5X結合バッファーを調製します。
結合反応を設定する前に、5%天然ポリアクリルアミドゲルを0.5X TBEおよび2.5%グリセロールで事前に流して、80ボルトで30分から1時間、または電流が時間とともに変化しなくなるまで、過硫酸アンモニウムの痕跡をすべて除去します。
次に、4マイクロリットルの5X結合バッファー、80〜200ナノグラムの精製プロテインA、1マイクロリットルの0.1マイクロモル色素共役プローブ、および二重蒸留水を混合します。混合物を室温で暗所で15分間インキュベートします。
インキュベーション後、すべての結合反応をゲルにロードし、ゲルを1センチメートルあたり10ボルトで所望の距離まで実行します。ゲル装置をアルミニウムで覆い、ゲルをできるだけ暗所に保ちます。
赤外線イメージングシステムのスキャナーベッドを蒸留水で洗浄します。ゲルの入ったガラス板を拭き取って乾かし、スキャナーベッドの上に置きます。赤外線イメージングソフトウェアを開き、「取得」タブをクリックします。
厚めのプレートの場合は、「チャンネル」に「700」、「強度」に「自動」、「解像度」に「84マイクロメートル」、「品質」に「中」、「フォーカスオフセット」に「3.5ミリ」の設定を使用します。スキャナー上でゲルが占める領域を選択します。最後に、「開始」をクリックしてスキャンを開始します。