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キメラ発癌性融合タンパク質は、転写因子タンパク質のDNA結合ドメインDBDと融合したRNA結合タンパク質のN末端低複雑度ドメインLCDを含んでいます。これらのタンパク質はタンパク質凝縮物を形成し、RNAポリメラーゼ-IIを動員して発癌を促進します。
単一分子イメージングによってタンパク質凝縮物の集合を視覚化するには、DNAフローセル(入口と出口の注入ポートが取り付けられた溶融シリカガラススライド)から始めます。フローセルの表面は、表面を保護するためにビオチン化脂質二重層でコーティングされ、ジグザグバリアで製造されています。
マイクロ流体システムに接続します。脂質層上の高結合親和性リガンドであるビオチンに結合するストレプトアビジンの溶液を導入します。融合タンパク質結合配列の複数の繰り返しを含むビオチンタグ付き二本鎖ラムダDNAを注入します。脂質二重層のストレプトアビジンは、DNAのビオチンに結合し、ラムダDNAを二重層に結合します。
適切なバッファーでフラッシュします。その流れの流体力学的力により、固定されたDNA分子がまっすぐになり、DNAカーテンとして障壁の上にぶら下がることができます。
フローセルを蛍光顕微鏡下に置きます。DNA結合緑色蛍光色素の溶液を注入します。次に、タンパク質結合マゼンタ蛍光色素にタグ付けされた融合タンパク質の溶液をLCDドメインを介して注入し、インキュベートします。
タグ付けされた融合タンパク質は、ラムダDNA上の標的配列に結合し、DNAの長さに沿って凝縮物を形成します。励起されると、DNA結合蛍光色素とタンパク質
結合蛍光色素が発光します。
融合タンパク質凝縮物は、緑色の蛍光標識二本鎖DNA上にマゼンタ色の涙点として現れます。
DNAカーテン上のEWS-FLI1凝縮形成を画像化するには、イメージングソフトウェアを開き、明視野下の9つのジグザグパターンの位置を見つけてマークします。次に、毎分0.2ミリリットルでフローをオンにして、二本鎖DNA色素でDNAを10分間染色します。
次に、mCherry-EWS-FLI1タンパク質をイメージングバッファーで100ナノモルおよび100マイクロリットルの濃度で希釈します。次に、100マイクロリットルのガラス注射器でタンパク質サンプルをバルブにロードし、流量を毎分0.4ミリリットルに変更します。
488ナノメートルのレーザーをオンにした後、各領域を事前にスキャンしてDNA分布状態を確認し、DNA分子が均一に分布する領域を選択します。そして、レーザー出力を488ナノメートルレーザーは10%、561ナノメートルレーザーは20%に設定し、パワーメーターを使用してプリズム付近の実際のレーザー出力を測定します。
488 ナノメートルと 561 ナノメートルの両方のレーザーで同時に 2 秒間隔で画像の取得を開始します。次に、バルブを手動モードから注入モードに変更し、60秒後にイメージングバッファーがタンパク質サンプルをフローセルに洗い流します。
遊離したEWS-FLI1を除去するには、561ナノメートルのレーザーのみをオンにした状態で、イメージングバッファーでフローセルを5分間洗浄し続けます。その後、流れを止め、摂氏37度で10分間インキュベートします。
10分後、毎分0.4ミリリットルでフローをオンにしてDNAを伸ばし、異なるフレーム間で2秒間隔で画像を取得して、EWS-FLI1凝縮物形成のハイスループットデータを取得します。