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タンパク質と薬物の相互作用を研究するには、電極として機能する薄い金層でコーティングされた圧電セラミック材料で構成される水晶マイクロバランス(QCM)センサーチップから始めます。
電極を試験薬溶液で重ねて、均一な層を形成します。
センサーチップをQCM装置に挿入します。緩衝液を含むキュベットに浸します。電界を印加すると、セラミック結晶がセンサーチップ上の薬物分子の質量に基づいて一定の周波数で振動します。
ファージのカプシドタンパク質と融合したペプチドバリアントを示す遺伝子組み換えファージの混合物を含むT7ファージライブラリーを追加します。特定のペプチドを示すファージは、高い親和性で薬物分子に結合し、センサーチップに固定化されます。このT7ファージのパンニングは、センサーチップ上の質量を増加させ、その結果、時間の経過とともに結晶振動が減少します。
平衡化後、ファージ結合センサーチップを湿ったシャーレに移します。チップに細菌溶液を重ねてインキュベートします。ファージは細菌に感染して複製し、溶液中に放出される特定のペプチド発現ファージを生成します。
これらのファージを回収し、薬物親和性で選択されたペプチドのアミノ酸配列を分析します。このペプチドのアミノ酸配列を標的タンパク質と比較します。
類似性の高い領域は、薬物間相互作用に重要な潜在的な薬物相互作用部位を表します。
QCMセンサーチップを作製するには、27メガヘルツのQCM装置の発振器にセラミックセンサーチップを取り付け、小分子固定化前の空気相の固有周波数を記録します。
記録後、チップを取り外し、70%エタノールに1ミリモルの低分子誘導体溶液を20マイクロリットルの滴を慎重に加えて、センサーチップの金電極上に自己組織化した単層を作成します。チップを、湿らせた組織で裏打ちされたペトリ皿に置き、室温で1時間光から保護した後、電極表面を超純水で優しく洗浄します。
空気を
穏やかに流してチップを乾燥させ、QCM装置にチップをロードします。1時間後、気相の頻度の減少を記録して、固定化された小分子の量を測定します。
T7ファージライブラリーのバイオパンニングでは、毎分1,000回転に設定されたQCMバイオセンサーに専用のマグネチックスターラーを備えたキュベットを置き、キュベットに8ミリリットルの反応バッファーを加えます。
バッファーを撹拌している間に、QCMセンサーチップを発振器に取り付けます。発振器のアームを引き下げてチップをバッファに浸し、QCM周波数の監視を開始します。センサーグラムが周波数ドリフトで毎分約3ヘルツに平衡化したら、8マイクロリットルのT7ファージライブラリをキュベットに注入し、センサーに注入点をマークします。
T7ファージが金電極表面に固定化された小分子に結合することによって引き起こされる周波数低下を監視します。10分後、QCM周波数モニターを停止し、発振器をすばやく持ち上げて、センサーチップをバッチから取り外します。センサーチップを発振器から取り外し、チップからバッファを取り外します。
乾燥したセンサーチップを湿ったペトリ皿に入れ、対数相大腸菌宿主細胞を20マイクロリットル滴下して金電極に加えます。結合したT7ファージの回収を促進するために、光から保護された30分間、摂氏37度、毎分1,000〜1,500回転の96ウェルマイクロプレートミキサーに皿をインキュベートします。
インキュベーションの最後に、20マイクロリットルの大腸菌懸濁液を200マイクロリットルのLB培地に移します。一般的な手順に従って、培地中のファージプラーク単離と、各ファージキャプシドに表示される薬物認識ペプチド配列をコードするDNAシーケンシングを行います。