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巨核球は、血液凝固に不可欠な血小板を産生する大きな多核細胞です。
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vitroで血小板を産生するには、ヒト臍帯血に由来する造血幹細胞および前駆細胞(HSPCs)の懸濁培養を行います。
トロンボポエチンを加え、生理学的条件でインキュベートします。トロンボポエチンは HSPC 上の受容体に結合し、HSPC が未熟な巨核球に分化するシグナル伝達イベントを引き起こします。
未熟な細胞は成熟プロセスを経て、成熟した巨核球を形成します。成熟した細胞は大きく、細胞質分泌顆粒を含んでいます。それらは、細胞質に多葉倍数体核と陥入膜系を持っています。
成熟した巨核球は、長くて細い細胞質延長、つまり前血小板を生成します。前血小板(薄い細胞質架橋で結合された複数の血小板サイズの腫れ)が培地に放出されます。
細胞質架橋が壊れ、個々の血小板が放出されます。遠心分離して血小板をペレットとして得ます。上清を廃棄し、血小板活性化用のアデノシン二リン酸と蛍光標識抗体を含む緩衝液にペレットを再懸濁して、活性化された血小板を同定します。
アデノシン二リン酸は、血小板上の特定のGタンパク質共役受容体に結合します。結合によりシグナル伝達カスケードが開始され、血小板の活性化が引き起こされます。活性化は、血小板膜上のインテグリン複合体を活性化する細胞内シグナル伝達を誘導します。蛍光標識抗体は、活性化された複合体に結合します。
フローサイトメトリーを使用して細胞を分析します。抗体特異的蛍光シグナルの存在は、活性化された血小板を示します。
巨核球の分化のために、12ウェルプレートに組換えヒトトロンボポエチンを添加した2ミリリットルの無血清培地に5 x 105 CD34陽性細胞を1ミリリットルに播種し、摂氏37度、二酸化炭素5%で加湿雰囲気中でインキュベートします。
適切な分化モニタリング時点で、他のウェルの細胞を乱すことなく、時点ごとに2〜3ウェルから細胞を回収し、採取した細胞を抗CD41抗体および抗CD42a抗体で染色して、培養物内の成熟巨核球の割合を決定します。
細胞表面マーカーを顕微鏡で視覚化するには、採取した細胞を1ミリリットルの分離バッファーで洗浄し、ペレットを100マイクロリットルの新鮮なバッファーに再懸濁します。サイトスピンを使用して細胞をスライドガラスに播種し、メタノールに30秒間浸漬して細胞をスライドに固定します。自然乾燥後、20マイクロリットルのDAPIを添加した封入剤で細胞を標識し、蛍光顕微鏡で視覚化するために細胞をカバーガラスで覆います。
前血小板を数えるには、分化の8日目または9日目に細胞を回収し、収集した細胞を48ウェルプレートに組換えヒトトロンボポエチンを添加した新鮮な無血清培地200マイクロリットルあたり1 x 104細胞に播種します。摂氏37度、二酸化炭素5%で5日後、10倍または20倍の対物レンズを使用して、倒立光学顕微鏡でウェルあたりの前血小板含有巨核球の数を数えます。
血小板の活性化を分析するには、培養の14日目または15日目に、パスツールピペットで細胞を穏やかに混合し、100マイクロリットルの細胞を収集します。1ミリリットルのTyrodeバッファーを細胞に加え、遠心分離によってペレット化します。遠心分離のために上清を収集して血小板サイズの粒子をペレット化し、粒子を100マイクロリットルの新鮮なTyrodeバッファーに再懸濁します。次に、粒子を抗PAC-1抗体で標識します。室温で20分間アデノシン二リン酸で活性化し、フローサイトメトリーでPAC-1陽性イベントの割合を分析します。