$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
iPS細胞由来の胸腺移住者、3D胸腺器官培養システム中の未熟T細胞からのiTEを生成するには、デオキシグアノシン、dGUO処理されたマウス胎児胸腺葉を適切な培地に摂取します。
dGUOは胸腺環境に入り、内因性胸腺リンパ球を破壊し、共培養中のiPS細胞由来の未熟T細胞への干渉を防ぎます。
各胸腺葉の中心に深い切開を行います。ローブを、成長因子幹細胞因子、FLT3リガンド、およびインターロイキン-7を添加した培地を含む新鮮な培養皿に移します。
胸腺葉含有培地を3D培養プレートのウェルにピペットで入れます。iPS細胞由来の未熟T細胞を添加します。インキュベート。T細胞は切開部を介して胸腺葉に移動します。
胸腺環境内では、成長因子であるFLT3リガンドとIL-7が未熟T細胞上のそれぞれの受容体に結合し、転写因子の活性化と特定の遺伝子の発現につながります。
その結果、未熟なT細胞は一連の変化を経て特定の特性を獲得し、最終的にCD8αβ+T細胞に成熟し、CD8分子、T細胞受容体、MHCクラスI分子を表面に発現します。
葉への移動に失敗した未熟なT細胞を取り除きます。
成熟したiTEは胸腺葉から移動し、光学顕微鏡下で葉を取り巻くハローのようなパターンとして視覚化できます。
dGUO治療の7日目に、新しい10センチの皿を4つ取り出します。各皿にミリリットルの完全な培地を入れます。胸腺葉を持つすべてのニトロセルロース膜を1つの10センチメートルの皿に移します。鉗子を使用して、個々のローブを膜から切り離し、培地に沈
めます。
ローブを室温で1時間インキュベートします。次に、胸腺葉を完全な培地を含む新しい10センチメートルの皿に移し、室温で1時間インキュベートします。この移送とインキュベーションをさらに2回繰り返します。
鉗子を使用して胸腺葉を皿に固定し、もう一方の手で中央に100〜200マイクロメートルの深さの切開を行い、葉の直径の半分を伸ばしてT細胞前駆細胞の葉への移動を促進します。
胸腺葉を、完全な分化培地で満たされた新しい10センチメートルの皿に移します。下段と上段のグリッドを備えた3D培養プレートを使用する場合は、ぶら下がっている滴の蒸発と乾燥を防ぐために、両方のグリッドに滅菌PBSを充填します。
次に、1つのdGUO処理胸腺葉を含む30マイクロリットルの完全培地を3D培養プレートの各ウェルに移します。OP9/DLL1共培養から非接着性T系統細胞を回収し、培地20マイクロリットルあたり2,000〜5,000個のT細胞系統細胞の密度で細胞を再懸濁します。20マイクロリットルのT系統細胞懸濁液を3D培養プレートの各胸腺葉に加えます。摂氏37度で5%の二酸化炭素で一晩インキュベートします。
翌日、P200ピペットを30マイクロリットルに設定します。各ウェルの培地を数回上下にピペットで移動させ、胸腺葉を取り囲むすべての細胞を除去します。次に、各ウェルから培地を吸引し、30マイクロリットルの完全培地と交換します。このプロセス(ピペッティング、培地の除去、交換)を5〜7回繰り返して、葉に移動しない余分な未熟T細胞を除去します。
ローブのインキュベーションを続け、毎日25〜30マイクロリットルの培地を交換するようにしてください。4日目または5日目に、光学顕微鏡を使用して、葉の周囲にiPS細胞由来の胸腺移民のハローが形成されることを確認します。ローブを破壊することなく培地をピペッティングすることにより、iTEを毎日収集します。メディアを毎日交換し、最大約12日間収集を継続します。
採取されたiTEは、分子解析やin vivo移植実験にすぐに使用できます。