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マウスの脾臓とリンパ節を細胞ストレーナーで浸軟させます。ストレーナーを適切なバッファーで洗い流し、脾細胞とリンパ球を収集します。
非
CD8+細胞に結合するビオチン化抗体カクテルおよび磁性抗ビオチンマイクロビーズで細胞をインキュベートします。
細胞懸濁液を磁気カラムに通します。磁力により、ビーズ結合した非CD8+細胞がカラム壁に結合し、CD8+ T細胞が溶出します。
溶出した細胞を人工抗原提示細胞(aAPC)とインキュベートします。これらは、抗原を負荷した主要組織適合性複合体-免疫グロブリン融合タンパク質、MHC-Ig、および抗CD28抗体で官能化された磁性ナノ粒子です。
抗原を負荷したMHC-Igsは、抗原特異的CD8+ T細胞上の異なる受容体に結合します。抗CD28抗体はT細胞CD28受容体と相互作用し、T細胞の活性化を開始します。
磁性ナノ粒子と細胞混合物の入ったチューブを磁気スタンドの上に置きます。aAPC結合CD8+ T細胞は磁場に引き寄せられますが、非特異的CD8 + T細胞は浮遊したままになります。上清を取り除きます。
磁気スタンドからチューブを取り外します。aAPC結合細胞をT細胞増殖因子含有培地に再懸濁します。それらをマルチウェルプレートに播種します。
成長因子は、抗原特異的 CD8+ T 細胞増殖を誘導します。
抗原特異的CD8陽性T細胞を単離するには、野生型C57Black/6jマウスの脾臓とリンパ節を、PBSリンスを頻繁に行う滅菌70マイクロメートルの細胞ストレーナーを通して浸軟させ、製造元の指示に従って、ノータッチCD8陽性T細胞分離キットを使用して、非CD8陽性T細胞を除去します。
カウント後、単離されたCD8陽性T細胞を遠心分離によって収集し、ペレットを100マイクロリットルのPBSに再懸濁し、0.5%ウシ血清アルブミンと2ミリモルEDTAを添加します。
次に、細胞をナノ粒子人工抗原提示細胞とインキュベートし、1 x 106単離されたCD8陽性T細胞に対して1 x 1011ペプチド負荷MHC-Igが存在するように、滅菌5ミリリットルポリスチレン丸底チューブ内で摂氏4度で1時間連続的に混合します。
インキュベーションの最後に、示されているようにナノ粒子細胞懸濁液を磁気スタンド上で3回洗浄し、人工抗原提示細胞と濃縮CD8陽性T細胞を1%T細胞増殖因子を含む500マイクロリットルの新鮮な補充培地に再懸濁します。
細胞の回収率を最大限に高めるには、細胞内の粒子を磁気カラム上に少なくとも2分間放置し、磁場にさらされる粒子や細胞を破壊することなくバッファーを慎重に吸引することが重要です。
カウント後、96ウェルU底プレートに、160マイクロリットルの補充培地と1%TCGFごとに2.5 x 105濃縮CD8陽性T細胞と磁性粒子混合物を播種します。3日目に、ウェルあたり2%のT細胞増殖因子を含む80マイクロリットルの補給培地を細胞に供給し、プレートを細胞培養インキュベーターにさらに4日間戻します。
7日目に、刺激された細胞を計数のために5ミリリットルの丸底チューブに回収し、遠心分離によって細胞を収集します。ペレットを0.05%アジ化ナトリウムと2%ウシ胎児血清を添加した0.5ミリリットルのPBSに再懸濁して計数し、抗原特異的染色のために5 x 104〜5 x 105細胞を新しい5ミリリットルの丸底チューブに分注します。
適切なチューブにビオチン化MHC-Igおよび抗マウスCD8aを摂氏4度で1時間標識し、続いて新鮮なPBSで遠心分離洗浄して、過剰なビオチン化免疫グロブリンを除去します。次に、サンプルを適切なストレプトアビジン結合二次抗体と、適切な生/死固定可能な死細胞染色で摂氏4度で15分間染色し、フローサイトメーターで細胞を読み取り、標準プロトコルに従って、抗原特異的CD8陽性T細胞の特異性と数を決定します。