エレクトロポレーションによる細菌エフェクタータンパク質の哺乳動物細胞への導入

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特定のグラム陰性菌病原体は宿主細胞に接触し、分泌系を利用してエフェクタータンパク質を注入し、細胞の浸潤を促進します。

フェクタータンパク質をin vitroで哺乳類細胞に送達するには、哺乳類細胞を冷やしたキュベットにピペットで入れます。ストレプトアビジン結合ペプチドタグ付き細菌エフェクタータンパク質を加えて混合します。

エレクトロポレーションを行います。実行中、短い電気パルスが宿主細胞膜の脂質二重層を破壊して一過性の細孔を形成し、エフェクタータンパク質の細胞侵入を促進します。培地を含むガラス板に細胞をプレーティングし、細胞が回復してプレートに付着できるようにします。毛穴が再密閉され、内部のタンパク質が閉じ込められます。

細胞回収後、細胞内標的への抗体アクセスのために細胞を固定および透過処理します。タンパク質含有ブロッキング溶液とインキュベートして、非特異的抗体結合を防ぎます。細胞内エフェクタータンパク質のストレプトアビジン結合ペプチドタグに特異的に結合する一次抗体を追加します。

視覚化のためにエフェクタータンパク質に結合した一次抗体に結合する蛍光色素タグ付き二次抗体を導入します。蛍光色素結合小麦胚芽凝集素とDAPIを添加して、それぞれ細胞膜糖タンパク質とDNAを染色します。

共焦点顕微鏡を使用して、エフェクタータンパク質、細胞膜、およびDNAからの蛍光シグナルを視覚化します。

エレクトロポレーションに成功した細胞は、エフェクタータンパク質からの有意な細胞内蛍光シグナルを示し、細胞内局在を示唆しています。

この手順を開始するには、400マイクロリットルの細胞懸濁液を事前に冷却されたキュベットに移し、次に20マイクログラムの選択されたタンパク質を加えて、最終濃度50マイクログラム/ミリリットルに達します。キュベットを約10回軽くフリックして混合し、セルを損傷しないようにします。その後、エレクトロポレーター内の電気アークを避けるために、キュベットの外側をペーパータオルで乾かします。

サンプルをエレクトロポレーターに入れ、0.3キロボルトに1.5〜1.7ミリ秒に設定します。エレクトロポレーションの直後に、キュベットを約10回軽くフリックしてサンプルを完全に混合してから、固定と免疫蛍光染色またはアフィニティー精製に進

みます。

エレクトロポレーションから4時間回復した後、細胞を滅菌PBSで洗浄します。次に、細胞を室温で2分間100%メタノールに固定します。続いて、細胞を滅菌PBSでさらに3回洗浄します。PBS中の0.4%Triton X-100で細胞を15分間透過処理します。透過処理の長さとTriton X-100の強度は、標的タンパク質のエピトープと位置に応じて調整します。次に、室温で1時間PBS中の5%BSAで細胞をブロックします。

その後

、PBSで3回洗浄します。次に、抗体結合溶液中の一次抗体とともに、摂氏4度で穏やかに揺らしながら一晩インキュベートします。

翌日、PBSで細胞をさらに4回洗浄します。次に、抗体結合溶液中で適切な蛍光結合二次抗体とインキュベートします。必要に応じて、Alexa 647またはDAPIに結合し、光から保護した5マイクロモルの小麦胚芽凝集素(WGA)などの他の染色剤を追加します。次に、細胞をPBSで5回洗浄し、画像化の準備が整うまで光から保護して摂氏4度で保存します。

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最終更新:15 8月 2026