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レポータールシフェラーゼ酵素を発現する弱毒化マイコバクテリウム・ウシの遺伝子組み換え生物発光株であるMycobacterium bovis BCG luxの解凍培養から始めます。
抗生物質ハイグロマイシンを添加した増殖培地を含む培養フラスコに懸濁液を接種します。インキュベート。BCG lux にはハイグロマイシン耐性遺伝子が含まれており、その生存と成長を促進します。
インキュベーション後、ルミノメーターチューブ内のバッファーを使用して適切な培養希釈液を調製します。長鎖脂肪族アルデヒド基質溶液を充填したルミノメーターに移します。実行中、アルデヒドは細胞に入るマイコバクテリア懸濁液に注入されます。
細菌のルシフェラーゼは、内因性還元フラビンモノヌクレオチドとアルデヒドの酸化を触媒し、青緑色の発光をもたらします。測定された生物発光強度は、BCG ルクスの代謝活性を示し、生菌またはコロニー形成単位 CFU の測定値と相関します。
次に、残りの抗酸菌培養物を遠心分離します。抗酸菌の凝集を防ぐために、非イオン性界面活性剤を含む緩衝液に抗酸菌ペレットを再懸
濁します。
生物発光測定を使用して、懸濁液を希釈して所望の細胞密度を取得します。マイコバクテリアの連続希釈液を調製し、ハイグロマイシンを添加した栄養寒天プレートにプレートします。インキュベートして、BCGラクスがコロニーを形成できるようにします。
CFUを計算して、生物発光強度との相関を確認します。調製したBCGルクス接種物は、感染研究に使用できます。
まず、Mycobacterium bovis BCG luxの冷凍1.2ミリリットルグリセロールストックを解凍します。モントリオールワクチン株は、luxAB遺伝子を運ぶシャトルプラスミドPSMT-1で形質転換しました。ラベル付けされた250ミリリットル三角フラスコに、15ミリリットルのMiddlebrook 7H9ブロスに解凍した1.2ミリリットルのBCGルクスアリコートを接種します。
フラスコを密閉されたバイオセーフティ容器に入れ、オービタルシェーカーインキュベーターで摂氏37度で220 RPMで72時間インキュベートします。インキュベーション後、ルミノメーターチューブ内のリン酸緩衝生理食塩水中で培養物の1〜10希釈液を調製します。ボルテックスし、ルミノメーターチューブをルミノメーターにロードします。
無水エタノール中の基質1%n-デシルアルデヒドをインジェクタープラットフォームにロードし、生物発光を測定します。生物発光をコロニー形成単位に変換して、BCG lux培養物の成長を確認します。
培養物を遠心分離管に移し、室温で2,175倍gで10分間遠心分離して細胞をペレット化します。上清を、既知の殺菌活性を持つ適切な消毒剤に廃棄します。細菌の凝集を防ぐために、2,175 倍 g で 10 分間遠心分離することにより、細胞ペレットを 50 ミリリットルの PBS-T で 2 回洗浄します。
最終洗浄後、廃上清をデカントし、抗酸菌細胞ペレットを必要な量のPBS-Tに再懸濁して、抗酸菌懸濁液を所望の細胞密度に希釈します。次に、PBS-Tを使用して、24ウェルプレートで接種物の10倍の連続希釈液を調製します。
各希釈液10マイクロリットルをMiddlebrook 7H11寒天プレートに2回にプレーティングして、接種CFU数を列挙します。