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感染中、肺胞マクロファージはマクロファージ細胞外トラップまたは MET を放出して病原体を排除します。
METは、ペプチジルアルギニンデイミナーゼ、PAD、マトリックスメタロプロテイナーゼ、およびシトルリン化ヒストンと複合体化されたクロマチン線維で構成されています。
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管支肺胞洗浄液からマクロファージのMETを視覚化するには、まず液体を遠心分離します。
再懸濁した細胞をマルチウェルプレートウェル内のカバーガラスにプレートします。
マクロファージはカバーガラスに付着しますが、他の細胞は浮遊したまま廃棄されます。
マクロファージを固定し、細胞構造を維持します。それらを透過して細胞標的にアクセスします。
ブロッキングタンパク質を添加し、非特異的抗体結合を防ぎます。
標的シトルリン化ヒストン、PAD、マトリックスメタロプロテイナーゼにそれぞれ結合する一次抗体カクテルを補充します。
標的METタンパク質結合一次抗体に結合するさまざまな蛍光色素タグ付き二次抗体を追加します。
DAPI含有封入剤でセルをマウントします。蛍光色素であるDAPIは、クロマチン繊維を染色します。
共焦点顕微鏡を使用して、シトルリン化ヒストン、PAD、およびメタロプロテイナーゼを含む蛍光細胞外クロマチン線維によって特徴付けられるMETを視覚化します。
テキストプロトコルに従って、気管支肺胞洗浄(BAL)によってヒトおよびマウスから肺マクロファージを取得した後、トリパンブルーと血球計算盤を使用して、BAL溶液で生細胞数を実行します。500マイクロリットルの培地中の1〜4 x 105マクロファージを24ウェルプレートのウェルのカバーガラスにピペットで移動します。次に、細胞が接着するまで、細胞を摂氏37度で一晩インキュベートします。
培地を取り出し、PBSを使用して細胞を一度洗浄します。次に、2%パラホルムアルデヒド/ヨウ素酸塩/リジンまたはPLP固定液を加え、サンプルを10分間インキュベートします。PBSを使用して細胞を短時間洗浄した後、PBSに0.2%トゥイーン-20を加え、細胞を20分間インキュベートします。
次に、細胞をブロックするために、PBSで希釈した5%BSAに10%鶏血清を加え、サンプルを室温で30分間インキュベートします。次に、ブロック溶液を1〜100濃度の一次抗体および同位体対照抗体に置き換え、細胞を室温で1時間インキュベートします。インキュベーション後、対応する二次抗体を添加する前に、PBSを使用して細胞を洗浄します。次に、サンプルを室温で40分間インキュベートします。
細胞をPBSで洗浄した後、DAPIベースの封入剤でサンプルを封印します。次に、共焦点顕微鏡を使用してサンプルを視覚化します。