モノクローナル抗体の精製のためのアフィニティークロマトグラフィー技術

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抗体結合タンパク質であるプロテインAに結合したアガロースビーズを含むアフィニティークロマトグラフィーカラムを取ります。

中性pHの結合バッファーを加えて、カラムを平衡化します。

モノクローナル抗体と汚染細胞タンパク質を含む抗体産生細胞培養物から培養上清をロードします。

中性のpHは、汚染物質が通過している間、抗体のFc領域へのプロテインAの結合を促進します。

フロースルーのUV吸光度を測定して、クロマトグラムを作成します。サンプルローディング中の吸光度が高い場合は、フロースルー中のタンパク質が結合していないことを示します。

カラムを結合バッファーで洗浄し、非特異的に結合した汚染物質を除去します。

pHの溶出バッファーを加えて、プロテインA抗体の相互作用を阻害します。吸光度のピークを監視して、溶出した抗体を収集します。

pHを中和して抗体の分解を防ぎ、遠心フィルターに移します。

遠心分離して抗体を濃縮し、下流アッセイ用のバッファーに再懸濁します。

バッファを準備し、テキストプロトコルに従ってFPLCシステムを初期化した後、メソッドエディタを使用して、次のように実行ステップを設定します。5 カラム容量または結合バッファーの CV でシステムを平衡化します。

サンプルをカラムにロードし、サンプルフローを収集し、5 CV の結合バッファーを使用してシステムを洗浄します。5 CV の溶出バッファーを使用して、アイソクラティックフラクショネーションによってカラムを溶出します。そして、フラクションコレクターを使用して、精製された抗体サンプルをフラクションとして収集します。

最後に、5CVの結合バッファーでシステムを平衡化し、流れを廃棄物容器に集めます。メソッドのセットアップが完了したら、カラムに適用するコンディショニング培地の容量を指定し、メソッドを保存します。

次に、サンプルポンプチューブを調整された媒体の入った容器に沈めます。次に、指定された出口チューブを介してサンプルフローを収集するための別の容器を準備します。フラクションコレクターに収集チューブを挿入し、各収集チューブに中和バッファーを追加します。ソフトウェアのシステム制御モジュールで、使用するメソッドを開きます。次に、[開始] をクリックして実行を開始します。

精製が完了し、評価モジュールが完成したら、結果のクロマトグラムを確認します。すべてのタンパク質含有画分をチューブに結合し、PBSと30キロダルトンカットオフの遠心フィルター装置を使用してサンプルを濃縮し、バッファー交換を行います。最後に、BCA アッセイを使用して、製造元の指示に従って抗体濃度を測定します。

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最終更新:1 8月 2026