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$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
独特の抗原組成を示す細胞外小胞(EV)と呼ばれる細胞由来の膜結合粒子を運ぶチューブから始めます。
蛍光標識Fabフラグメントと結合した捕捉抗体を含む磁性ナノ粒子(MNP
)を導入します。
イン
キュベートして、MNPとEVの特定の抗原との相互作用を促進し、MNP-EV複合体を形成します。
免疫グロブリン-Gを添加してFc結合部位をブロックし、蛍光標識検出抗体を導入して、捕捉された粒子上の他の抗原を染色します。
この混合物を、磁気分離器に入れられた事前に洗浄された磁気カラムにロードします。
磁場は、MNPで捕捉された粒子をカラム内に保持します。バッファーを交換して、結合していない抗体を除去します。
磁気分離器からカラムを取り出し、MNPで捕捉した粒子をバッファーで溶出し、構造的完全性を維持するために固定します。
免疫捕捉粒子をフローサイトメトリーで分析します。染色抗原からの異なる蛍光シグナルは、EVの固有の抗原特性と相関しています。
まず
、条件ごとに60マイクロリットルのMNPと、目的の捕捉抗体のアイソタイプに特異的な5マイクロリットルの標識Fabフラグメントを1.5ミリリットルの微量遠心チューブで組み合わせます。溶液を室温で30分間インキュベートし、連続混合します。次に、100k濃縮器を300マイクロリットルのPBSで予湿らせ、濃縮器を微量遠心分離機で回転させます。
遠心分離の最後に、標識複合体を100kカラムで精製し、続いて別の遠心分離を行い、ペレットを200マイクロリットルの新鮮なPBSに再懸濁します。目的の粒子を捕捉するには、抗体標識されたMNPを目的の粒子と一緒に適切なインキュベーション期間と温度でインキュベートします。
次に、適切な種のIgG抗体による非特異的FC結合をブロックし、穏やかにボルテックスし、粒子溶液を室温で3〜5分間インキュベートします。次に、各検出抗体のメーカー推奨濃度を粒子に添加するか、アイソタイプコントロール抗体をアイソタイプコントロールサンプルに加え、室温でさらに20分間インキュベートします。
結合
していない抗体からMNPで捕捉された粒子を分離するには、まず、磁気分離カラムをセパレーターマグネットに入れ、500マイクロリットルの洗浄バッファーでカラムを事前に濡らします。洗浄バッファーがカラム内を流れるようにします。次に、MNP粒子複合体をカラムに加え、フロースルーを廃棄物容器に回収します。
すべての複雑な溶液がカラムを通過したら、500マイクロリットルの洗浄バッファーでカラムを3回洗浄します。次に、カラムを 12 x 75 ミリメートルのチューブに移します。3分後、200マイクロリットルのPBSを加え、ビーズを重力で溶出させます。
すべてのPBSがカラムを通過したら、200マイクロリットルの新鮮なPBSをチューブに加え、200マイクロリットルの4%パラホルムアルデヒドで粒子を固定します。次に、0.22ミクロンでフィルタリングされたPBSをフローサイトメーターにロードし、フィルタリングされたPBSがゼロからごくわずかなイベントを示すまで、サイトメーターのPMT電圧を調整します。次に、標準の0.2ミクロンのシースフィルターの後ろに直列に配置されたシース液用の0.04ミクロンのインラインフィルターを使用して、低流量を使用してMNPで捕捉された粒子を実行し、誤ったイベントをさらに排除します。