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まず、複数のタンパク質検出用のタンパク質特異的捕捉抗体を含む明確なスポットを持つ前処理済みマイクロアレイアッセイスライドを組み立てます。
タンパク質標準試料の希釈液と希釈前の血清サンプルを別々のウェルにロードします。これらの希釈により、正確な定量のためにさまざまなタンパク質濃度が生成されます。
タンパク質と抗体の相互作用を促進するためにインキュベートします。結合していないタンパク質を洗浄して除去し、スライドを分解して乾燥させます。
アッ
セイスライドと同じ位置にタンパク質特異的ビオチン化検出抗体をスポットした再水和転写スライドを含むスナップ装置でアッセイスライドを反転させます。
装置を閉じて、を押してスライドを互いにスナップします。これにより、検出抗体をアッセイスライド上の対応するスポットに移すことが容易になり、交差反応性が最小限に抑えられます。
スライドを分離して、検出抗体と結合タンパク質との相互作用を可能にし、免疫複合体を形成します。
アッセイスライドを再組み立てし、すすぎ、ビオチン化抗体と相互作用する蛍光色素結合ストレプトアビジンを導入します。
スキャナーを使用して、さまざまな場所の蛍光スポットを検出し、血清サンプル中の複数のタンパク質を示します。スポット強度をタンパク質定量の標準と比較します。
イムノアッセイを開始するには、準備したアッセイスライドを冷凍庫から取り出し、密封された袋に入れて室温まで30分間温めます。0.05%ポリソルベート-20を含むPBS中のタンパク質の7つの連続希釈溶液を調製します。同じバッファーで適切に希釈したサンプル溶液を調製します。
24ウェルシリコンガスケットを室温アッセイスライドにクランプします。7つのタンパク質希釈液をカラム内の8つのウェルのうち7つにロードします。0.05% ポリソルベート-20 を含むタンパク質フリー PBS を、そのカラムの最後のウェルにロードします。サンプル溶液を残りのウェルにロードします。
スライドを室温で450 RPMで1時間、または摂氏4度で一晩振ってください。次に、スライドを3回洗浄します。ガスケットを取り外し、窒素ガスの流れの下でスライドを乾燥させます。
次に、検出抗体転写スライドを密閉袋に入れて室温まで30分間温めます。次に、相対湿度60%の密閉チャンバーでスライドを20分間インキュベートし、アレイを再水和します。ポゴピンを使用して、検出転送スライドをスナップ装置に表向きに固定します。
アッセイスライドをポゴピンに裏向きに置き、スライドをまっすぐなピンに合わせます。装置を閉じ、検出抗体をアッセイスライドにスナップ転送します。装置からスライドを取り出し、アッセイスライドを1時間インキュベートします。
24ウェルシリコンガスケットをスライドにクランプし、スライドを3回洗浄します。次に、PBS中のストレプトアビジン蛍光色素の2.5マイクログラム/ミリリットル溶液を各ウェルに80マイクロリットルロードします。スライドを450RPMで20分間振ってください。
スライドをPBS中の0.1%ポリソルベート-20溶液で3回洗浄し、蒸留水で1回洗浄します。次に、ガスケットを取り外し、スライドを乾燥させます。蛍光スキャナーでスライドをスキャンし、スポット強度を測定します。検出限界とタンパク質濃度を決定します。