マウス肺に存在する自然免疫細胞と適応免疫細胞を同定するためのin vitro法

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ミン

チしたマウス肺組織を消化バッファーに取り、生理学的温度でインキュベートします。

緩衝酵素は組織マトリックスを分解し、細胞を緩めます。

粉砕して細胞塊を解離させ、ストレーナーを使用して懸濁液をろ過して単一細胞を単離します。

心分離して、組織の破片を含む上清を除去します。細胞を溶解バッファーでインキュベートして、赤血球を溶解します。

心分離機で細胞破片を含む上清を廃棄します。細胞を再懸濁し、マイクロプレートに移します。

抗体を添加してFc受容体をブロックし、バックグラウンド染色を防ぎます。

自然免疫細胞(単球、マクロファージ、樹状細胞、ナチュラルキラー細胞、好中球、好酸球、適応免疫細胞)の特定の表面マーカーを標的とする蛍光色素標識抗体カクテルを導入します。

細胞を固定して透過化します。単球、マクロファージ、樹状細胞、好酸球の細胞内マーカーに特異的な蛍光色素標識抗体を追加します。

フローサイトメトリーを使用して、標識された免疫細胞を分類します。

肺をシャーレに移します。細いメス2本でみじん切りにし、50ミリリットルの円錐形のチューブに入れます。5ミリリットルの消化バッファーを加えてプレートを洗浄します。チューブの蓋を固定し、摂氏37度で毎分150回転の速度でオービタルシェーカーで30分間肺を消化します。10ミリリットルの冷たいBSAバッファーを加えて反応を停止します。

消化後、18ゲージの針を使用して肺片を混ぜて溶かします。新しい50ミリリットルの円錐形チューブの上に70マイクロメートルのフィルターストレーナーを置き、消化した肺混合物をストレーナーに移します。

10ミリリットルのシリンジプランジャーのゴム側を使用して、フィルターに残っている肺片を粉砕し、BSAバッファーで洗浄します。単一細胞懸濁液を350 gで摂氏7度で8分間遠心分離します。上清を廃棄し、細胞を1ミリリットルのACK溶解バッファーに再懸濁します。1ミリリットルのピペットを使用して懸濁液を混合し、室温で90秒間インキュベートします。

反応混合物に10ミリリットルの冷たいBSA緩衝液を加え、350 gで摂氏4度で7分間遠心分離します。上清を捨てます。ペレットを染色バッファーに再懸濁し、血球計算盤を使用して細胞をカウントします。表面染色のために細胞を1ミリリットルあたり500万個の細胞の濃度で再懸

濁します。

ウェルあたり200マイクロリットルの100万個の細胞を96ウェルプレートに移し、プレートを摂氏4度で7分間350 gで遠心分離します。染色バッファーで抗16/32抗体を希釈して、フローサイトメトリーブロック溶液を調製します。

細胞

を50マイクロリットルのフローサイトメトリーブロック溶液に再懸濁します。懸濁液を摂氏4度で、または氷上で15〜20分間インキュベートします。次に、150マイクロリットルの染色バッファーをプレートに加え、350 gで摂氏4度で5分間遠心分離します。

表面抗体を染色バッファーで希釈して表面抗体溶液を調製します。細胞を50マイクロリットルの表面抗体溶液に再浮遊し、暗闇の中で摂氏4度でプレートをインキュベートします。次に、染色バッファーで細胞を2回洗浄します。

固定および透過処理の希釈液の3つの部分と染色バッファーの1つの部分を混合して、固定および透過処理バッファーを調製します。96ウェルプレートのウェルあたり50マイクロリットルの予め調製されたバッファーに細胞を再懸濁し、暗所で摂氏4度で20〜25分間インキュベートします。

透過処理バッファーを精製脱イオン水で希釈して1回の透過処理バッファーを調製し、それを使用して細胞を洗浄します。1ミリリットルの透過処理バッファーで希釈して細胞内抗体溶液を調製します。96ウェルプレートのウェルあたり50マイクロリットルの希釈細胞内抗体溶液に細胞を再懸濁し、暗所で摂氏4度で40分間インキュベートします。

細胞を透過処理バッファーで洗浄し、次に染色バッファーで洗浄します。最終洗浄後、細胞を200マイクロリットルの染色バッファーに再懸濁します。フローサイトメーターでサンプルあたり最低150万個の細胞を取得します。

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最終更新:29 8月 2026