0 閲覧数 • 3:14 分 • July 8th, 2025
細胞外マトリックスに支持されたヒト神経前駆細胞(NPC)の培養を取ります。
NPCは蛍光タンパク質を発現するように操作されています。
培地を廃棄し、細胞を洗浄して残留培地を除去します。
マトリックスを破壊する酵素で培養物をインキュベートし、細胞を解離させます。
剥離した細胞をチューブに移し、培地を加えて酵素作用を中和します。
遠心分離して細胞をペレット化し、上清を廃棄し、NPCをニューロン分化培地に再懸濁します。
NPCをマウス星状細胞とラット皮質ニューロンの確立された共培養物に移します。
確立された共培養によって放出される成長因子は、NPCと皮質ニューロンおよび星状細胞との細胞間接触とともに、NPCの成熟ニューロンへの分化を促進します。
成熟したニューロンは拡張された細胞プロセスを示し、シナプス接続を形成します。
共焦点顕微鏡下で、蛍光タンパク質からのシグナルを使用して、ヒトNPC由来のニューロンを視覚化します。
人工多能性幹細胞またはiPS細胞を生成した後、テキストプロトコルに従って細胞をヒト神経前駆細胞またはNPC培養物として誘導および維持します。この例では、NPCはレンチウイルスベクターSynapsin1-tdTomatoを使用して標識されています。アストロサイト培養に初代ニューロンを追加した翌日に、1X PBSを使用してヒトNPCを1回洗浄します。次に、細胞剥離溶液を加え、摂氏37度で5分間インキュベートします。
すべての細胞が剥離していることを確認し、2倍の量のDMEM / F12を含む15ミリリットルのチューブに移し、200 gで5分間遠心分離します。上清を取り除き、ニューロン分化培地を使用してペレットを単一細胞に穏やかに再懸濁します。血球計算盤を使用して細胞をカウントします。
次に、星状細胞皮質ニューロン培養物から培地を注意深く吸引します。ヒトNPCをニューロン分化培地でウェルあたり5,000細胞/平方センチメートルでプレートします。摂氏37度、5%CO2でインキュベートし、少なくとも28日間、2〜3日ごとに培地を交換します。
ヒトiPS細胞が成熟したニューロンのように振る舞うかどうかを確認するには、60倍の水浸レンズを備えた共焦点顕微鏡を使用します。tdTomatoを可視化してヒトiPS細胞から分化した細胞を見つける。
本記事では、マウスアストロサイトおよびラット皮質ニューロンとの共培養システムを用いて、ヒト神経前駆細胞(NPC)を成熟ニューロンへと分化させるプロトコルについて解説します。NPCには、共焦点顕微鏡下での可視化のために蛍光タンパク質を発現するようにエンジニアリングが施されています。
ヒト神経前駆細胞を機能的なニューロンへと分化させることは、神経変性疾患モデルのターゲットバリデーションにおける重要なステップです。この共培養技術は、治療仮説のメカニズム的なリスク低減を可能にする疾患関連システムを提供することで、予測の信頼性を向上させます。このアプローチにより、後続のアッセイ開発やスクリーニングキャンペーンに向けた、検証済みニューロン表現型のスケーラブルな調製が可能になります。
この手法は、幹細胞由来のNPC作製から機能的なニューロンアッセイに至るディスカバリー・コンティニュアムに適合しており、成熟度およびコネクティビティに対する化合物の影響を表現型スクリーニングすることで、リード化合物の同定を支援します。
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最終更新:29 8月 2026