ヒト人工多能性幹細胞の微小電極アレイ上のニューロンへの分化

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抗生物質のドキシサイクリン誘導系によって駆動されるニューロゲニン-2を過剰発現する形質導入されたヒト誘発多能性幹細胞またはhiPS細胞を取ります。

それらをマルチウェル微小電極アレイのウェル内の接着タンパク質でコーティングされた活性電極領域に移します。

hiPS細胞がコーティングされた活性電極領域に付着できるようにします。

神経特異的転写因子であるニューロゲニン-2の過剰発現を誘導するドキシサイクリンを添加した培地を追加します。

ニューロゲニン-2は分子経路を誘発し、hiPS細胞の神経前駆細胞への分化を引き起こし、培地成分は細胞の生存を助けます。

アストロサイトを微小電極アレイウェルに導入し、そこで電極の活性領域に付着します。

培地を神経原性成長因子、ドキシサイクリン、および細胞増殖阻害剤を含む神経基底培地に置き換えます。

この

阻害剤は、星状細胞の増殖を防ぎ、未分化hiPS細胞を排除します。

時間の経過とともに、持続的なニューロゲニン-2の発現と成長因子が神経前駆細胞のニューロンへの分化を促進します。

さらに、培地をアストロサイトの生存のための血清を含む神経基底培地に置き換えます。

アストロサイトは、ニューロンの成熟とシナプス形成を促進する成長因子を分泌し、ニューロンネットワークを形成します。

6ウェルMEAの場合、細胞を希釈して、1ミリリットルあたり7.5 x 105細胞の細胞懸濁液を得る。希釈したラミニンを6ウェルMEAから吸引します。6ウェルMEAの場合、各ウェルの活性電極領域に100マイクロリットルの細胞懸濁液を加えて細胞をプレーティングします。

次に、6ウェルMEAを摂氏37度の加湿インキュベーターに入れます。2時間後、調製したE8培地500マイクロリットルを6ウェルMEAの各ウェルに慎重に加えます。続いて、6ウェルMEAを摂氏37度の加湿インキュベーターに一晩置きます。

3日目に、0.05%トリプシン-EDTAを室温まで温めます。DPBSをDMEM/F-12で1%ペニシリン-ストレプトマイシンで摂氏37度まで温めます。次に、ラット星状細胞培養の使用済み培地を吸引します。5ミリリットルのDPBSを加えて培養液を洗浄し、そっとスイッシュします。

その後、DPBSを吸引し、5ミリリットルの0.05%トリプシン-EDTAを加えます。トリプシン-EDTAをそっと振り回します。次に、加湿した摂氏37度のインキュベーターで細胞を5〜10分間インキュベートします。その後、顕微鏡で細胞が剥がれていないか確認します。

フラスコを数回叩いて最後のセルを剥がします。次に、5ミリリットルのDMEM / F-12をフラスコに加えます。10ミリリットルのピペットでフラスコ内の細胞を穏やかに粉砕します。その後、細胞懸濁液を15ミリリットルのチューブに集めます。チューブを200回gで8分間回転させます。

その後、上清を吸引し、細胞を1ミリリットルのDMEM / F-12に再懸濁します。血球計算盤を使用してミリリットルあたりの細胞数を決定します。

次に、6ウェルMEAの各ウェルに7.5 x 104アストロサイトを追加し、24ウェルプレートの各ウェルに2 x 104アストロサイトを追加します。細胞を摂氏37度の加湿インキュベーターで一晩インキュベートします。

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最終更新:22 8月 2026