$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
細胞分化培地で培養した神経細胞から始めます。
金ナノロッドを培地に加えます。
イン
キュベートして、エンドサイトーシスと呼ばれるプロセスを通じて細胞がナノロッドを飲み込むことができます。
レーザーでナノロッドを刺激します。
レーザービームはナノロッド上の表面電子を励起します。励起された電子は基底状態に戻り、熱エネルギーを放出します。
この熱は神経細胞を刺激して、βIII-チューブリンと呼ばれる特定の細胞骨格タンパク質によって支持される突起を生成します。
使用済み培地を取り除きます。
セルを修正します。膜を透過性化するために適切な洗剤を追加します。
抗体の非特異的結合を防ぐためにブロッキング剤を追加します。
βIII-チューブリンを標的とする一次抗体で細胞を標識します。
一次抗体と相互作用する蛍光タグ付き二次抗体を追加します。
核を青色蛍光色素で染色します。
落射蛍光顕微鏡を使用して、青い核を持つ赤色の細胞を観察します。
細胞の細長い突起は、神経細胞の分化を示しています。
NG108-15ニューロン細胞をT75フラスコ中の10ミリリットルの細胞培養培地で増殖させ、その後、加湿雰囲気中で摂氏37度でインキュベートします。細胞が70%から80%コンフルエントになったら、培地を温かく新鮮な培地に変更します。
その後、コンフルエントフラスコの底をそっと叩いてセルを機械的に切り離します。細胞懸濁液を600gで5分間遠心分離し、細胞ペレットを2ミリリットルの温かい細胞分化培地に再懸濁します。次に、200マイクロリットルの細胞分化培地を入れた96ウェルプレートに細胞を播種します。
サンプルを摂氏37度で1日インキュベートします。翌日、金ナノロッド溶液を加え、さらに24時間インキュベートします。この手順では、レーザーをシングルモード光ファイバーと結合し、FCコネクタで終端します。出力レーザー出力は、標準のパワーメーターで測定します。
ナノロッドインキュベーションの3日目に、FCコネクタをウェルに固定し、サンプルを照射し、対照を室温で異なるレーザー出力の連続波で1分間照射します。5日目に、サンプルから細胞分化培地を取り出し、体積あたり3.7%の体積ホルムアルデヒド溶液で10分間固定します。
次に、体積あたり0.1%の体積Triton X-100で細胞を20分間透過処理します。その後、体積あたり3%の重量BSAをサンプルに60分間加えて、未反応のタンパク質結合部位をブロックします。サンプルを抗ベータ-3-チューブリンで摂氏4度で一晩標識します。
翌日、適切な二次抗体を使用して、暗闇で細胞を90分間インキュベートします。続いて、細胞核をDAPIで10分間標識し、少なくとも20倍の対物レンズを使用して、落射蛍光または共焦点顕微鏡でサンプルを画像化します。二次抗体に応じて顕微鏡フィルターを選択し、DAPIフィルターを選択して細胞核を視覚化します。