0 閲覧数 • 3:58 分 • July 8th, 2025
骨髄間質細胞の接着培養から始めます。
細胞を低酸素症(酸素レベルの低下を特徴とする状態)を必要な期間さらします。
低酸素状態で前処理された細胞を単離し、遠心分離して上清を除去します。神経成長因子を含む神経前駆細胞培地に細胞を再懸濁します。
細胞を低付着培養プレートに移し、インキュベートします。
低酸素プレコンディショニングと神経成長因子は、間質細胞を神経前駆細胞に分化させます。
低付着プレート表面は前駆細胞を懸濁状態に維持し、前駆細胞の増殖と三次元神経球への
凝集を促進します。神経球を採取し、遠心分離し、上清を除去します。グリア特異的成長因子を含むグリア誘導培地に細胞を再懸濁します。
神経球を、細胞外マトリックス成分であるラミニンと、正に帯電した合成ポリマーであるポリ-D-リジンでコーティングされた培養プレートに移します。
コーティングされた表面は細胞の接着を促進し、神経球の付着を促進します。
グリア特異的成長因子は、シュワン細胞の特徴的な先細りの形態を示すシュワン細胞様細胞へのニューロン前駆細胞の分化を刺激します。
低酸素プレコンディショニングの場合は、まずリングクランプを解放し、露出した部分を70%エタノールで洗浄します。さらに、低酸素チャンバーをコンポーネントに分解し、層流フードに入れて紫外線下で15分間滅菌します。
次に、先ほど示したように、80%〜90%のコンフルエントMSC培養物を10ミリリットルのPBSで洗浄し、25ミリモルのHEPESを添加した新鮮なMSC増殖培地で培養物を処理します。処理した培養物を再組み立てした低酸素チャンバーに入れ、リングクランプを締めます。チャンバーの接続端を密閉してガス漏れがないことを確認し、99% 窒素と 1% 酸素の混合ガスを毎分 10 リットルの流量でチャンバー内に洗い流します。
5分後、チャンバーを細胞培養インキュベーターに16時間入れます。翌朝、先ほど示したように細胞を切り離し、遠心分離で収集します。ペレットを神経前駆細胞培地に再懸濁し、1平方センチメートルあたり6 x 103細胞を低付着の6ウェルプレートに播種し、摂氏37度、5%CO2で12日間培養します。
細胞のかなりの非接着球は、6〜7日目までに観察されるべきであり、10〜12日目までに正常酸素状態下にあるものよりも低酸素条件培養でより多くの神経球が明らかになります。12日目に、10ミリリットルのピペットを使用して神経球を15ミリリットルの円錐形のチューブに移し、遠心分離によって神経球を収集します。
球体をDMEM / F12に再懸濁し、1平方センチメートルあたり5〜10個の神経球を、ウェルあたり1.5ミリリットルのグリア誘導培地でポリ-D-リジンラミニンでコーティングされた6ウェルプレートにプレートします。球体細胞培養を少なくとも7日間維持し、3日ごとに培地をリフレッシュします。
本研究では、低酸素条件下における骨髄基質細胞から神経前駆細胞およびシュワン細胞様細胞への分化について調査します。手法として、低酸素プレコンディショニングを行い、その後、細胞の増殖および分化を促進するための特定の培地で培養します。
本手法により、骨髄ストローマ細胞からシュワン細胞様細胞を生成することが可能となり、末梢神経系疾患のモデリングおよび再生医療への応用に向けたスケーラブルな細胞源を提供します。低酸素プレコンディショニングは分化効率を向上させ、神経障害性疼痛および神経損傷モデルにおける標的バリデーションを支援します。このアプローチは、前臨床スクリーニングやバイオマーカー探索に有用な疾患関連グリア細胞を産生することで、メカニズム的なリスク低減をサポートします。
本手法では、入手容易な間葉系ストローマ細胞をグリア系細胞に変換することで、下流のターゲットおよびフェノタイプスクリーニングに向けた早期探索ワークフローへの統合を可能にします。
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最終更新:22 8月 2026