マウス胚性幹細胞からの皮質介在ニューロン前駆体の生成

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低分子阻害剤を含む無血清培地に懸濁したマウス胚性幹細胞を取ります。

細胞を非接着性培養プレートに播種し、細胞が増殖して凝集して三次元胚様体またはEBを形成できるようにします。

さらに、阻害剤は非ニューロンシグナル伝達経路を遮断し、皮質神経の運命に向けて胚性幹細胞の分化を誘導します。

EBをチューブに移し、遠心分離し、上清を除去します。

酵素カクテルとDNaseを含む溶液にEBを再懸濁します。

酵素はEBを単一細胞に解離し、DNaseは汚染されたDNAを分解します。

害剤を含む無血清培地を加えて酵素活性を停止し、酵素を含む上清を遠心分離して除去します。

細胞を低分子阻害剤を含む培地に再懸濁し、接着因子でコーティングされた培養プレートに移します。

細胞はコーティングされたプレート表面に付着します。

阻害剤はアポトーシス細胞死を防ぎ、皮質介在ニューロン前駆細胞への細胞分化を誘導します。

接着性組織培養皿のKSRN2培地に1ミリリットルあたり75,000個の細胞を添加し、摂氏37度でインキュベートすることにより、細胞を胚様体として増殖させます。DD1では、組織培養処理された皿をポリ-L-リジンで少なくとも1時間または摂氏37度で一晩コーティングすることにより、細胞ランディングの準備をします。

DD2では、ポリ-L-リジンを吸引し、プレートを摂氏37度で一晩ラミニンでコーティングします。DD3では、EB解離を開始する前に、ラミニンを吸引し、プレートを組織培養フードで完全に乾燥させます。

その後、培地を含むEBを15ミリリットルのチューブに移し、15倍gで3〜4分間、またはEBがペレット化するまで遠心分離します。培地を吸引し、DNaseを含む3ミリリットルの細胞剥離溶液を加えます。次に、サンプルを摂氏37度で15分間インキュベートします。

EBの解離を助けるために、3分ごとにチューブをそっとフリックします。EBが見えなくなったり、15分が経過したりしたら、DNaseを含むKSRN2を6ミリリットル加え、200回gで5分間遠心分離します次に、LDN193189、XAV939、およびROCK阻害剤Y27632を含むKSRN2に細胞を4.5〜5 x 104細胞/センチメートル平方でプレーニングします。

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最終更新:1 8月 2026