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ヒト人工多能性幹細胞に由来する胚様体(EB)を取り上げます。これらのEBは3つの胚葉で構成されています。
EBを適切な培地を含むマトリックスコーティング培養皿に移し、インキュベートします。
マトリックスにより、EBを培養皿に付着させることができます。
培地中の成長因子と栄養素は、EBの外胚葉細胞がロゼットと呼ばれる円形パターンに配置された神経上皮凝集体を形成することを促進します。
ロゼットの破片を切り取り、皿から取り外します。
破片を集めて回転させます。
上清を捨て、フラグメントを再懸濁します。
ピペットを使用して、断片を上下に動かして解離させます。
分化培地を含むマトリックスコーティングウェルプレートに所望の数の細胞を追加します。
分化培地の成分は、神経上皮細胞が神経系の初代細胞である完全に機能する神経細胞およびグリア細胞への変換を促進します。
2日目に、事前に準備した60ミリリットルのディッシュから標準マトリックスコーティング溶液を吸引し、5ミリリットルの完全神経上皮誘導培地またはNRIをディッシュに加えます。実体顕微鏡下で4倍の倍率で作業し、200マイクロリットルのピペットを使用して、約50個の浮遊胚様体を収集し、1つのコーティングされた皿に移します。次に、皿を摂氏37度、二酸化炭素5%でインキュベートします。
翌日、分化手順の3日目に、10倍の倍率で顕微鏡で皿をチェックし、胚様体がすべて付着していることを確認します。次に、完全なNRI培地で静かに培地全体交換を行います。ロゼット状の神経上皮凝集体が見える7日目まで、NRI培地を1日おきに交換します。
7日目に、培地で希釈した100マイクロリットルの標準マトリックスを各ウェルにピペッティングして、96ウェルプレートをコーティングします。8日目に、ロゼット状の凝集体を実体顕微鏡下で無菌状態で10倍の倍率で断片に切断します。
ロゼットは針で触れると皿から簡単に外れる傾向があることに注意してください。この場合、切り離されたロゼットを針先で部分的に分解します。ロゼットが部分的に付着したままになる場合は、200マイクロリットルのピペットを使用してロゼット断片の剥離を完了します。
ロゼットの切断には、非神経外胚葉派生物の切断を避けるために、優れた手作業のスキルと精度が必要です。
次に、ロゼットの断片とその培地を15ミリリットルの円錐形のチューブに集めます。皿を2ミリリットルのNRI培地ですすぎ、すべてのフラグメントを回収します。次に、ロゼットの断片を112倍gで1〜2分間回転させます。
上清を吸引した後、カルシウムとマグネシウムを含まない予熱した1x DPBSの1ミリリットルにペレットを穏やかに再懸濁します。ロゼットの断片を上下にそっとピペットで移動させ、部分的に解離させます。次に、4ミリリットルの完全NRI培地を加え、トリパンブルーと自動セルカウンターを使用して細胞をカウントします。
次に、96ウェルプレートから標準マトリックスコーティング溶液を吸引し、NRI培地中で1平方センチメートルあたり約15,000細胞の密度で細胞をウェルに沈着させます。プレートを摂氏37度、二酸化炭素5%で一晩インキュベートします。10日目に、完全なニューロン分化培地を使用して全培地交換を行います。