0 閲覧数 • 4:22 分 • July 8th, 2025
発達中のドーパミン作動性ニューロンが豊富な胚性中脳組織をトリプシン-EDTA溶液で処理して、組織マトリックスから切り離します。
酵素活性を阻害するために不活性化培地を加え、洗浄して残留酵素を除去します。
組織を繰り返しピペットで移動します。胚性ニューロンは投起が少ないため、この障害中のストレスが軽減され、単一細胞懸濁液が生成されます。
上清を遠心分離して除去し、ニューロンを完全な培地に再懸濁します。これらのニューロンをポリマーでコーティングされたカバーガラスに移して細胞を付着させます。
カバーガラスを完全な培地を含むマルチウェルプレートに入れ、ニューロンの成長に不可欠な栄養素と成長因子を提供します。
培地中の抗生物質は細菌の増殖を防ぎ、ニューロンの生存率をサポートします。
ニューロンが成長して成熟するにつれて、軸索や樹状突起などの細胞突起が発達し、シナプス接続を形成します。
定期的に、使用済み培地の半分を取り除き、有毒な副産物を除去します。
ドーパミン作動性ニューロンの長期維持のために新鮮な培地を追加します。
ボンネットの下で、腹側中脳のコレクションからHBSSを取り除きます。次に、12個の組織に十分な溶液である温かい0.05%トリプシン-EDTAを1ミリリットル加えます。組織を摂氏37度で5〜10分間インキュベートします。ボンネットの下で、トリプシン-EDTAを1ミリリットルの不活性化培地に置き換えます。
混合物を穏やかに旋回させてから、不活性化培地を取り除きますが、解離した細胞が廃棄されないように十分な培地を残しておきます。次に、細胞を失うことなく、組織を完全培地で2回洗浄します。次に、1ミリリットルの完全培地を加えます。次に、単一細胞懸濁液が得られるまで気泡を形成せずに、火で研磨したピペットで組織を粉砕します。8〜10回程度で十分です。
粉砕後、400 gの細胞を5分間遠心分離します。培地を取り出し、細胞を1ミリリットルの完全培地に再懸濁します。懸濁液を得るために細胞を最大4回ピペットで移動させます。まず、血球計算器によるトリパンブルー排除を使用して、懸濁液中の細胞の健康状態をカウントし、評価します。
次に、細胞懸濁液をマイクロリットルあたり1,500細胞に調整します。次に、滅菌した微量遠心チューブキャップを100mmの皿に移します。準備したカバーガラスを鉗子を使用してキャップの上に置きます。カバーガラスを洗わず、乾燥させないようにしてください。各カバーガラスに100マイクロリットルの懸濁液をロードします。
このやや珍しい方法は、90%の培養生存率を提供し、成功への重要なステップです。次に、シャーレを閉じて、インキュベーターに1時間移します。インキュベーション後、培地を含むカバーガラスを、各ウェルに摂氏37度に温めた400マイクロリットルの完全培地を含む24ウェルプレートに慎重に移します。次に、細胞を一晩インキュベートします。
最初の数時間は、細胞の生存にとって最も重要です。24時間以内に、半ミリリットルの完全培地を各ウェルにそっと加えます。2週間ごとに、メディアの半分を交換します。培養物が黄色に変わった場合は、ハーフ培地の変更をより早く実行できますが、変更の頻度はまだ低いはずです。ドーパミン作動性ニューロンは、これらの条件下で 6 週間以上生存します。
本記事では、胚中脳組織からドーパミン作動性ニューロンを単離するためのプロトコルを詳述します。この手法では、慎重な取り扱いと培地管理を通じて、細胞生存能を維持し、ニューロンの増殖を促進することの重要性を強調しています。
信頼性の高いドパミン作動性ニューロン培養系の構築は、パーキンソン病の標的妥当性確認およびアッセイ開発におけるメカニズム的なリスク低減を可能にします。本手法は、化合物のニューロンの生存および機能への影響を評価するための疾患関連システムを提供することで、フェノタイプスクリーニングを支援します。長期的な維持能力により、前臨床モデルの開発およびトランスレーショナルなバイオマーカー研究が促進されます。
本手法は、早期創薬段階におけるターゲットバリデーションを可能にし、リード化合物同定のためのスクリーニングへと進み、さらに持続的なニューロン培養を通じて前臨床評価をサポートします。
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最終更新:29 8月 2026