マウス胚性脳組織からのドーパミン作動性ニューロンの培養と維持

0 閲覧数4:22 • July 8th, 2025

発達中のドーパミン作動性ニューロンが豊富な胚性中脳組織をトリプシン-EDTA溶液で処理して、組織マトリックスから切り離します。

酵素活性を阻害するために不活性化培地を加え、洗浄して残留酵素を除去します。

組織を繰り返しピペットで移動します。胚性ニューロンは投起が少ないため、この障害中のストレスが軽減され、単一細胞懸濁液が生成されます。

上清を遠心分離して除去し、ニューロンを完全な培地に再懸濁します。これらのニューロンをポリマーでコーティングされたカバーガラスに移して細胞を付着させます。

カバーガラスを完全な培地を含むマルチウェルプレートに入れ、ニューロンの成長に不可欠な栄養素と成長因子を提供します。

培地中の抗生物質は細菌の増殖を防ぎ、ニューロンの生存率をサポートします。

ニューロンが成長して成熟するにつれて、軸索や樹状突起などの細胞突起が発達し、シナプス接続を形成します。

定期的に、使用済み培地の半分を取り除き、有毒な副産物を除去します。

ドーパミン作動性ニューロンの長期維持のために新鮮な培地を追加します。

ボンネットの下で、腹側中脳のコレクションからHBSSを取り除きます。次に、12個の組織に十分な溶液である温かい0.05%トリプシン-EDTAを1ミリリットル加えます。組織を摂氏37度で5〜10分間インキュベートします。ボンネットの下で、トリプシン-EDTAを1ミリリットルの不活性化培地に置き換えます。

混合物を穏やかに旋回させてから、不活性化培地を取り除きますが、解離した細胞が廃棄されないように十分な培地を残しておきます。次に、細胞を失うことなく、組織を完全培地で2回洗浄します。次に、1ミリリットルの完全培地を加えます。次に、単一細胞懸濁液が得られるまで気泡を形成せずに、火で研磨したピペットで組織を粉砕します。8〜10回程度で十分です。

粉砕後、400 gの細胞を5分間遠心分離します。培地を取り出し、細胞を1ミリリットルの完全培地に再懸濁します。懸濁液を得るために細胞を最大4回ピペットで移動させます。まず、血球計算器によるトリパンブルー排除を使用して、懸濁液中の細胞の健康状態をカウントし、評価します。

次に、細胞懸濁液をマイクロリットルあたり1,500細胞に調整します。次に、滅菌した微量遠心チューブキャップを100mmの皿に移します。準備したカバーガラスを鉗子を使用してキャップの上に置きます。カバーガラスを洗わず、乾燥させないようにしてください。各カバーガラスに100マイクロリットルの懸濁液をロードします。

このやや珍しい方法は、90%の培養生存率を提供し、成功への重要なステップです。次に、シャーレを閉じて、インキュベーターに1時間移します。インキュベーション後、培地を含むカバーガラスを、各ウェルに摂氏37度に温めた400マイクロリットルの完全培地を含む24ウェルプレートに慎重に移します。次に、細胞を一晩インキュベートします。

最初の数時間は、細胞の生存にとって最も重要です。24時間以内に、半ミリリットルの完全培地を各ウェルにそっと加えます。2週間ごとに、メディアの半分を交換します。培養物が黄色に変わった場合は、ハーフ培地の変更をより早く実行できますが、変更の頻度はまだ低いはずです。ドーパミン作動性ニューロンは、これらの条件下で 6 週間以上生存します。

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最終更新:29 8月 2026