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$$\longleftharp{xx}$$,
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蛍光タンパク質発現ニューロンを含むトランスジェニックマウス皮質を取ります。
サンプルホルダーに固定します。
組織の生理学的状態を維持するために、酸素化された aCSF を含むビブラトーム トレイにホルダーを取り付けます。
設定されたパラメータを使用して、冠状スライスを取得します。
スライスを酸素化aCSFと活性遮断薬を含むメッシュホルダーに入れ
て安定させます。
スライスをプロテアーゼで処理して、細胞外マトリックスを消化し、細胞を緩めます。
aCSFで洗浄してプロテアーゼを除去します。
スライスをaCSFと血清の入った培養プレートに移します。
蛍光顕微鏡下で、蛍光ニューロンを含むスライス領域を解剖します。
解剖した断片をaCSFと血清を含むチューブに移します。
組織を機械的に解離して単一細胞懸濁液を形成します。細胞をaCSFを含む培養プレートに移します。
蛍光顕微鏡下で、キャピラリーピペットを使用して蛍光ニューロンを収集します。
これらのニューロンを、さらなる分析のためにaCSFを含む培養プレートに分注します。
安楽死させたマウスから、小さなハサミで頭蓋骨を開き、皮質を損傷することなく細い鉗子を使用して新鮮な脳を抽出します。脳を冷やして酸素化された aCSF に入れ、切片化の全期間中、5% の二酸化炭素バランス酸素に空気石を付着させたままにします。
脳を振動原子チャックに置き、冠状または矢状切片を300ミクロンの厚さで切断します。必要な数の切片を収集して、最低10〜50個の標識細胞を取得します。ビーカーの中に置かれた綿メッシュのスライスホルダーにスライスを置き、酸素を含んだaCSFを浴びさせます。
スライスを活性ブロッカーを含むaCSFの入ったビーカーに移動し、エアストーンを使用して酸素を泡立てながら室温で15〜20分間ブロックします。スライスをプロテアーゼ溶液でaCSFを含むビーカーに移動し、室温で穏やかな消化を行います。消化後、スライスを活性遮断薬溶液を含むaCSFを含むビーカーに室温で5〜10分間戻してプロテアーゼを洗い流します。酸素を泡立て続けます。
次に、室温で1%FBSを含むaCSFを含む100ミリメートルのペトリ皿を準備し、個々の切片をマイクロダイセクションのために皿に移動します。蛍光解剖スコープの下で、一対の細い鉗子を使用して、少なくとも10〜50個の細胞を持つ関心のある領域と層をマイクロ解剖します。
パスツールピペットを使用して、微量解剖した破片を、aCSF溶液中に約0.8ミリリットルの1%FBSを含む2ミリリットルの微量遠心チューブに移動します。室温でマイクロフュージチューブ内の解剖組織を粉砕します。
火炎したパスツールピペットのそれぞれで、最大のものから始めて、最小の出口直径で終了する約10ストロークを実行します。解離した細胞を酸素化aCSFを含む100ミリリットルのペトリ皿に分注し、細胞が徐々に沈降するまで5〜7分待ちます。
解剖顕微鏡でGFPおよびRFP信号を観察します。明視野照明下での形態を調べて破片を同定します。破片の少ない細胞の領域が特定されたら、毛細管と取り付けられたチューブを使用して、チューブバルブの端を舌で塞いで細胞をピックします。次に、毛細血管を細胞の近くに配置します。毛細管のブロックを解放し、再び素早くブロックし、毛細管現象を利用して細胞を捕捉します。
キャピラリーを新鮮な酸素化されたaCSFを含む100ミリメートルのペトリ皿に移動し、蛍光光学系で毛細管の先端を観察しながらチューブにそっと息を吹き込み、細胞を皿に分注します。100〜150個の細胞が収集されるまで収集手順を繰り返し、明視野示差干渉コントラスト光学系で破片などの汚染物質が最小限に抑えられることを確認します。