0 閲覧数 • 3:29 分 • July 8th, 2025
Rhoキナーゼ阻害剤を含む幹細胞培地中の筋芽細胞分化またはMYODタンパク質をコードするドキシサイクリン誘導遺伝子を含む操作されたヒトiPS細胞から始めます。
細胞をECMコーティングプレートに移し、インキュベートして細胞の付着を促進します。
一方、阻害剤は細胞内ローキナーゼ酵素を不活性化し、細胞生存率を高めます。
培地をドキシサイクリンを含む幹細胞培地と交換します。
ドキシサイクリンは細胞に入り、活性化タンパク質に結合します。これらの複合体はプロモーターに結合し、一部の細胞で遺伝子発現を誘導し、幹細胞を筋細胞に分化させる MYOD タンパク質を産生します。
筋原性分化因子を含む筋原性分化培地で細胞を処理し、多核筋細胞である筋管の形成を促進します。
その後、神経成長因子を含む神経誘導培地を導入します。
これらの要因により、残りのiPS細胞は運動ニューロンとシュワン細胞に分化し、ニューロンの周囲にミエリン鞘を形成します。
最後に、培地を神経筋接合部培地に置き換えて、運動ニューロンと筋管の間の接続を促進し、神経筋接合部を形成します。
1ミリリットルの細胞剥離溶液をペトリ皿に加える前に、3ミリリットルのPBSで細胞を洗浄します。摂氏37度で10分後、霊長類胚性幹細胞培地3ミリリットルを各ウェルに加え、3回静かにピペットで細胞をカバーガラスから解離させます。
次に、上清を含む分離した幹細胞を遠心分離のために50ミリリットルの円錐管にプールし、計数のために10マイクロモルのY27632 ROCK阻害剤を添加した3ミリリットルの新鮮な霊長類胚性幹細胞培地に幹細胞ペレットを再懸
濁します。次に、細胞を培地1ミリリットルあたり2 x 105細胞に希釈し、ROCK阻害剤濃度を添加し、細胞外マトリックスでコーティングされた6ウェルプレートの各ウェルの各カバーガラスに2ミリリットルの細胞を戻します。
24時間後、各ウェルの上清を、ドキシサイクリン1ミリリットルあたり1マイクログラムを添加した2ミリリットルの新鮮な霊長類胚性幹細胞培地と交換し、プレートを細胞培養インキュベーターに24時間戻します。
インキュベーションの最後に、上清をウェルあたりドキシサイクリンを添加した2ミリリットルの分化培地と交換し、プレートを細胞培養インキュベーターに10日間戻します。
インキュベーションの最後に、上清をウェルあたりドキシサイクリンを添加した2ミリリットルの筋原性分化培地と交換し、プレートを細胞培養インキュベーターにさらに10日間戻します。インキュベーションの最後に、上清をウェルあたり2ミリリットルの神経筋接合部培地と交換し、プレートを細胞培養インキュベーターに30日間戻します。
本研究では、遺伝子操作を施したヒトiPSCを筋肉細胞に分化させ、続いて運動ニューロンおよびシュワン細胞へと分化させる手法について概説します。このプロセスでは、細胞の接着、分化、および神経筋接合部の形成を促進するために、特定の培地と因子を使用します。
本手法では、エンジニアリングされたiPSCから機能的なヒト神経筋接合部を生成することが可能であり、神経筋のコネクティビティや疾患メカニズムをモデリングするための、スケーラブルで再現性の高いin vitroシステムを提供します。本プラットフォームは、シナプス形成および筋肉とニューロン間のコミュニケーションに対する化合物の影響を評価するためのヒト関連プラットフォームを提供することで、神経変性疾患および神経筋疾患プログラムにおけるターゲットバリデーションとメカニズムのデリスキングを支援します。段階的分化アプローチを採用することで、動物モデルへの依存度を下げ、トランスレーショナルな連続性を向上させ、初期探索における予測の信頼性を高めています。
この手法は、ターゲット検証からリード化合物の同定、さらには前臨床評価に至る創薬の連続的なプロセスに適合しており、特に神経筋疾患および神経変性疾患のプログラムに適しています。
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最終更新:29 8月 2026