マウス脳組織からの免疫細胞の単一細胞懸濁液の調製

0 閲覧数3:51 • July 8th, 2025

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脳の細胞外マトリックスまたはECM内に神経細胞、非神経細胞、および免疫細胞を持つマウスの脳から始めます。

組織をみじん切りにし、培地に再懸濁します。

これらの組織断片をチューブに移し、コラゲナーゼとDNase-I酵素で処理します。

コラゲナーゼはECMを消化して個々の細胞を放出し、DNase-Iは遊離DNAを分解して細胞の凝集を防ぎます。

次に、EDTAを加えてコラゲナーゼ酵素を不活性化します。

培地を追加します。遠心分離して上清を除去します。

密度勾配溶液と培地を細胞ペレットに加え、低密度勾配層を作成します。

溶液を混合し、高密度勾配溶液で下敷き、密度差を確立します。

低速で遠心分離して界面で免疫細胞を分離し、上部に軽い細胞破片、下部に重い神経細胞とグリア細胞を配置します。

上層を取り除き、免疫細胞を集めて、別のチューブに移します。

上清を遠心分離して除去し、細胞を培地に再懸濁し、下流用途用の単一細胞懸濁液を形成します。

培地を含む脳または脊髄組織を100ミリメートルのペトリ皿に注ぎ、鉗子を使用して組織を底に移動します。滅菌カミソリの刃で脳組織をみじん切りにし、プレートの底に組織を集めます。10%FCSを添加した3ミリリットルのRPMIをペトリ皿に加え、10ミリリットルの血清学的ピペットを使用して組織を培地に再懸濁し、15ミリリットルの円錐形チューブに移します。

コラゲナーゼI型とDNase Iを組織に加え、チューブを摂氏37度のウォーターバスで40分間インキュベートします。15分ごとにチューブを反転させて、組織を酵素と完全に混合します。インキュベーション後、最終濃度0.01モルになるまで各チューブにEDTAを加え、チューブをさらに5分間インキュベートしてコラゲナーゼを不活性化します。

10%FCSを添加した9ミリリットルのRPMIを各チューブに加え、チューブを摂氏4度で5分間450gで遠心分離します。真空の付いたパスツールピペットを使用して、細胞ペレットに触れないように注意しながら上清を吸引します。

3ミリリットルの100%ストック等張密度勾配溶液を細胞ペレットに加えます。次に、RPMI 10%FCS培地を追加して最終容量を10ミリリットルにし、細胞ペレットを再懸濁します。チューブを反転させてよく混ぜます。次に、1ミリリットルの70%ストック等張密度勾配溶液を入れた血清学的ピペットをチューブの底に挿入します。

泡ができないように注意しながら、ゆっくりと溶液の下に敷きます。グラジエントを乱さないように注意しながら、血清学的ピペットをチューブから取り外します。チューブを摂氏4度で30分間800 gで遠心分離し、2〜3ミリリットルがチューブ内に残るまでミエリン破片層を含む上清を吸引します。

1ミリリットルのピペットを使用して、30%から70%の密度勾配の間で細胞層を採取し、新しい15ミリリットルのチューブに移します。RPMI 10%FCS培地を加えて最終容量を15ミリリットルにし、細胞を摂氏4度で5分間450 gで遠心分離します。

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最終更新:22 8月 2026