$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
目的の形状のマイクロパターンを持つシリコンウェーハを取り、定義された形状で細胞を成長させます。
ポリマー混合物を注ぎ、固化させます。
ポリマーの正方形のスタンプを切り取ります。
スタンプの模様のある表面にタンパク質層をコーティングすると、細胞の付着が容易になります。
空気の流れを使用して、無限のタンパク質を除去します。
ポリマーでコーティングされたカバーガラスを取ります。
その上にスタンプの模様のある面を置きます。
スタンプを押すと、パターンが転写されます。スタンプをはがします。
カバーガラスを界面活性剤を含むウェルに移し、むき出しの表面をコーティングします。これにより、表面疎水性が向上し、不要な細胞の接着が防止されます。
界面活性剤を取り除き、リン酸緩衝液で洗浄します。
シュワン細胞を加え、マイクロパターンに付着させます。
緩衝液で洗浄して、付着していない細胞を除去します。
培地を加えてインキュベートします。
細胞が表面に沿って成長すると、細胞はマイクロパターン形状になり、シュワン細胞の表現型の研究が可能になります。
マイクロパターン基板を準備するには、直径150mm×高さ15mmの円形のペトリ皿内にパターン化されたシリコンウェーハを置き、脱気したPDMSをウェーハに注ぎます。PDMSを摂氏60度のオーブンで一晩固化します。PDMSを室温まで冷ましてから、手術用メスを使用して、シリコンウェーハを傷つけないように注意しながら、正しいパターンを含む30×30ミリメートル四方のスタンプを切断します。PDMSスタンプと調整可能なカバーガラスを70%エタノールに30分間浸漬して滅菌します。
マイクロパターンの有効性を確認するには、ろ過された気流を使用してPDMSスタンプの表面を乾燥させ、1ミリリットルあたり50マイクログラムのBSA溶液をピペットで入れて、スタンプのパターン化された面全体を覆います。スタンプをBSA溶液とともに室温で1時間インキュベートしてタンパク質を吸着させ、スタンプを自然乾燥させてBSA溶液を除去します。ろ過された気流を使用して、調整可能なカバーガラスの表面を乾燥させます。
スタンプのパターン面を調整可能なカバーガラスに等しく接触させて、カバーガラス表面にBSAを吸収させ、スタンプをカバーガラスに5分間そっと押し付けます。FITCフィルター付きの蛍光顕微鏡を使用してマイクロパターンを調べます。蛍光パターンではなく細胞接着領域を印刷するには、BSAタンパク質をラミニンに置き換えます。
カバーガラスからスタンプを取り外し、カバーガラスを滅菌した6ウェルプレートに移します。2ミリリットルの0.2%プルロニックF127溶液を各ウェルに加えてカバーガラスの表面を覆い、プレートを室温で1時間インキュベートします。F127溶液を吸引し、カバーガラスをPBSで5回洗浄し、細胞培養培地で1回洗浄し、次にシュワン細胞を1,000細胞/センチメートル平方の播種密度で播種します。細胞播種の45分後、細胞培養培地を取り出し、カバーガラスをPBSで2回洗浄して、複数の細胞が同じパターンに付着するのを防ぎます。定量する前に、細胞を所望の細胞培養環境に48時間維持します。