蛍光活性化核ソーティングを用いた脳組織からの細胞集団の単離

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新鮮な凍結ヒト脳組織の一部を、コールドライシスバッファーを含む適切なグラインダーに移します。

乳棒を上下に動かして組織を機械的に破壊し、細胞を解放します。

溶解バッファー中の界面活性剤分子が細胞膜を破壊し、核を放出します。

内容物を適切な遠心分離管に移し、チューブの底に冷たいスクロース緩衝液を加えて密度勾配を作成します。

高速で遠心分離して、チューブの底にある核を分離します。

上清を廃棄し、核を緩衝生理食塩水に再懸濁します。

標的特異的蛍光色素結合抗体を核に添加し、インキュベートして抗体が標的核タンパク質に結合できるようにします。

核染色色素を添加して、無傷のDNAを視覚化します。

蛍光活性化核選別を実行して、異なる蛍光シグナルに基づいて異なる細胞集団の核を選別します。

新鮮な凍結ヒト成人皮質組織サンプルから約200〜400ミリグラムの組織の解剖を開始します。4ミリリットルの氷冷溶解バッファーを含む7ミリリットルのガラスティッシュダウンサーに組織を氷上に置き、組織を約50回粉砕します。

ホモジネートを12ミリリットルの超遠心ポリプロピレンチューブに移します。5ミリリットルのピペットを使用して、スクロースと組織ホモジネートの間の界面を乱すことなく、6.5ミリリットルの氷冷スクロース緩衝液を超遠心チューブの底に加えます。

核を採取するには、ライセートを101,814倍gで1時間超遠心分離しペレットを乱さずに上清と破片を注意深く吸引します。PBSを超遠心チューブに加え、核ペレットを再懸濁します。

単離された核の蛍光活性化選別を行うには、再懸濁したサンプルを約20マイクロリットルを、AlexaFlour555結合マウス抗NeuN抗体を含む抗体溶液に加えます。再懸濁したサンプルを約20マイクロリットルを、APC結合マウス抗PAX6抗体を含む抗体溶液に加えます。1時間のインキュベーション後、光から保護した加振しながら摂氏4度で、すべてのサンプルとコントロールに1対1,000の比率でDAPIを加えます。

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Last updated: 18 July 2026