0 閲覧数 • 3:55 分 • July 8th, 2025
培地中で不死化多能性耳前駆細胞(iMOP)を培養します。
培地中の成長因子は、iMOPの増殖とコロニー形成を促進し、耳球を作成します。
耳球を集めて重力で落ち着かせます。
培地を取り除き、成長因子を欠く分化培地を追加します。耳球をメッキします。
成長因子が存在しないと、感覚上皮細胞への iMOP 分化が開始されます。
分化した耳球を集めて落ち着かせます。
培地を取り除き、固定剤を加えて細胞形態を維持します。
次に、細胞膜と核膜を透過性化する界面活性剤を加えます。
非特異的抗体結合を防ぐためにブロッキングバッファーを追加します。
特定の分化マーカーを標的とする一次抗体を導入します。
一次抗体を標的とする蛍光色素結合二次抗体、アクチンを染色するための蛍光標識ファロイジン、および核を染色するためのDNA結合色素を追加します。
耳球を取り付けます。
蛍光顕微鏡を使用して、染色を視覚化し、iMOPの区別を確認します。
めっきの3日後、重力沈降を利用して、前述のように耳球を採取します。上清を吸引し、細胞を2ミリリットルの感覚上皮分化培地に穏やかに再懸濁します。次に、10ミリリットルの大口径ピペットを使用して、耳球を新しい60ミリメートルの皿に移します。耳球を10日間分化させ、2ミリリットルの新鮮な分化培地を1日ごとに培養物に加えます。
その後、重力と沈降によって耳球を再び収穫し、使用済み培地を吸引します。次に、耳球を1X PBS中の4%パラホルムアルデヒドに室温で15分間固定します。次に、ホルムアルデヒド溶液を除去し、0.1%Triton X-100を含む1X PBSで細胞を洗浄します。10%ヤギ血清と0.1%Triton X-100を添加した1X PBSで耳球をブロックすることによって続行します。
1時間後、ブロッキングバッファーをCdkn1bまたはCdh1抗体の適切な希釈液を含むバッファーと交換します。次に、一次抗体中の細胞を摂氏4度で一晩インキュベートし、翌日、他の場所で説明するように、蛍光標識された二次抗体、ファロイジン、およびヘクストを使用して免疫染色を継続します。
イメージングの準備をするには、スライドガラス上に封入剤を置き、染色した耳球を培地に導入します。次に、サンプルの上にカバーガラスを置きます。封入剤を摂氏4度で一晩乾燥させた後、16ビットCCDカメラを搭載した倒立顕微鏡のステージにスライドを置きます。20X 0.75対物レンズを使用して、青、緑、赤、赤外チャネルからデータを収集して落射蛍光画像を取得します。
本記事では、不死化多能性耳前駆細胞(iMOP細胞)の感覚上皮細胞への分化について説明します。このプロセスには、iMOP細胞の培養、分化誘導、および蛍光顕微鏡を用いた結果の可視化が含まれます。
本手法では、不死化された耳前駆細胞株から感覚上皮細胞を生成することが可能となり、内耳生物学を研究するための再生可能なin vitroシステムが提供されます。これにより、分化経路やマーカー発現のメカニズム的な解析が可能となり、聴覚研究におけるターゲットバリデーションを支援します。また、本アプローチは、疾患に関連する細胞コンテキストにおいて、耳保護薬や再生化合物をスクリーニングするための予測的価値を提供します。
この手法は、ターゲットバリデーションからリード化合物同定に至る創薬の連続的なプロセスに適合しており、聴覚研究におけるメカニズム解析および表現型スクリーニングのためのプラットフォームを提供します。
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最終更新:22 8月 2026