耳前駆細胞の感覚上皮細胞への分化とそれに続く免疫染色

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培地中で不死化多能性耳前駆細胞(iMOP)を培養します。

培地中の成長因子は、iMOPの増殖とコロニー形成を促進し、耳球を作成します。

耳球を集めて重力で落ち着かせます。

培地を取り除き、成長因子を欠く分化培地を追加します。耳球をメッキします。

成長因子が存在しないと、感覚上皮細胞への iMOP 分化が開始されます。

分化した耳球を集めて落ち着かせます。

培地を取り除き、固定剤を加えて細胞形態を維持します。

次に、細胞膜と核膜を透過性化する界面活性剤を加えます。

非特異的抗体結合を防ぐためにブロッキングバッファーを追加します。

特定の分化マーカーを標的とする一次抗体を導入します。

一次抗体を標的とする蛍光色素結合二次抗体、アクチンを染色するための蛍光標識ファロイジン、および核を染色するためのDNA結合色素を追加します。

耳球を取り付けます。

蛍光顕微鏡を使用して、染色を視覚化し、iMOPの区別を確認します。

めっきの3日後、重力沈降を利用して、前述のように耳球を採取します。上清を吸引し、細胞を2ミリリットルの感覚上皮分化培地に穏やかに再懸濁します。次に、10ミリリットルの大口径ピペットを使用して、耳球を新しい60ミリメートルの皿に移します。耳球を10日間分化させ、2ミリリットルの新鮮な分化培地を1日ごとに培養物に加えます。

その後、重力と沈降によって耳球を再び収穫し、使用済み培地を吸引します。次に、耳球を1X PBS中の4%パラホルムアルデヒドに室温で15分間固定します。次に、ホルムアルデヒド溶液を除去し、0.1%Triton X-100を含む1X PBSで細胞を洗浄します。10%ヤギ血清と0.1%Triton X-100を添加した1X PBSで耳球をブロックすることによって続行します。

1時間後、ブロッキングバッファーをCdkn1bまたはCdh1抗体の適切な希釈液を含むバッファーと交換します。次に、一次抗体中の細胞を摂氏4度で一晩インキュベートし、翌日、他の場所で説明するように、蛍光標識された二次抗体、ファロイジン、およびヘクストを使用して免疫染色を継続します。

イメージングの準備をするには、スライドガラス上に封入剤を置き、染色した耳球を培地に導入します。次に、サンプルの上にカバーガラスを置きます。封入剤を摂氏4度で一晩乾燥させた後、16ビットCCDカメラを搭載した倒立顕微鏡のステージにスライドを置きます。20X 0.75対物レンズを使用して、青、緑、赤、赤外チャネルからデータを収集して落射蛍光画像を取得します。

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最終更新:22 8月 2026