0 閲覧数 • 3:44 分 • July 8th, 2025
人工脳脊髄液(ACSF)に赤色カルシウム非感受性蛍光色素を含む刺激ピペットを取ります。
海馬スライスの標的ニューロンの近くにピペットを配置します。
赤色のカルシウム非感受性蛍光色素と緑色のカルシウム指示薬蛍光色素を含む電解液を浸した記録電極を備えたパッチピペットをターゲットの近くに置きます。
一定の陽圧を加えて組織表面を一時的に乱し、ターゲットへの近接を示します。
くぼみが神経膜に形成されたら、圧力を解放してシールを形成します。
負圧を加えてシールを締めます。
膜電位を一定の負電圧で安定させます。
陰圧で膜を破壊し、蛍光色素を含む電解質がニューロン内に広がるようにします。
標的樹状突起棘の赤色蛍光を視覚化し、刺激ピペットをその近くに合わせます。
電気パルスを印加してカルシウムチャネルを開きます。
二光子顕微鏡を使用して、緑色蛍光で示されるカルシウムレベルの一時的な変化を視覚化します。
このステップでは、レーザー走査型二光子顕微鏡の目的の下で海馬スライスを浴に移します。酸素化されたACSFノーマルで浴槽を継続的に灌流します。次に、赤外示分干渉造影顕微鏡を使用して、そのサイズ、形状、および位置を使用して目的の細胞を特定します。
その後、刺激ピペットに赤色蛍光色素を含むACSF正常溶液を充填します。先端が目的のセルと同じ領域になるように、スライスの上に下げます。その後、パッチピペットにパッチ溶液を充填し、ヘッドステージに取り付けます。先端が目的のセルの真上になるように、スライスの上にセットします。
次に、注射器を三方活栓に取り付け、プラスチックチューブを通してパッチピペットに接続します。パッチピペットに一定の陽圧を注入し、活栓を閉じた位置に保ちます。パッチピペットがターゲットセルの真上に来るまで下げます。細胞膜に接触したら、活栓を開位置に回して圧力を取り除きます。
次に、ピペットの抵抗が 1 ギガオームに達するまで、活栓に取り付けられた空のシリンジを使用してパッチ ピペットにわずかな負圧を加えます。データ収集ソフトウェアのメンブレンテストウィンドウで、セルを負60ミリボルトでクランプします。ピペットの抵抗が低下し、セル全体の構成が達成されるまで、負圧を加え続けます。
電気刺激によって誘発された樹状カルシウム過渡現象を記録するには、赤色蛍光信号を使用して目的の樹状突起を見つけます。刺激ピペットを目的の樹状突起の上のスライスの表面にセットします。刺激ピペットを樹状突起から10〜15マイクロメートルゆっくりと下げ、動きを最小限に抑えて、細胞全体の構成を乱さないようにします。
本記事では、二光子顕微鏡を用いて海馬ニューロンのカルシウム過渡応答を可視化する方法について解説します。この手法では、刺激用ピペットおよびパッチピペットを使用して、標的ニューロンの操作および記録を行います。
ホールセルパッチクランプ法と二光子カルシウムイメージングの組み合わせにより、脳スライスにおけるニューロンのカルシウムダイナミクスを精密に解析することが可能となり、中枢神経系(CNS)創薬の初期段階におけるメカニズム的なリスク低減を支援します。このアプローチは、シナプス機能とシグナル伝達に関する定量的かつ高解像度なデータを提供し、ターゲットの検証およびパスウェイ解析に寄与します。これを創薬ワークフローに統合することで、神経薬理学的ポートフォリオにおける予測の信頼性が向上します。
この手法は、初期探索と前臨床研究の交点に位置し、CNS(中枢神経系)創薬におけるメカニズム研究とトランスレーショナルな検証を橋渡しするものです。
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最終更新:29 8月 2026