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マウスの脳スライスを、酸素化記録溶液で灌流した記録チャンバーに入れます。
スライスには、中継ニューロンが豊富な背側外側膝状核(dLGN)が含まれています。これらのニューロンは、網膜神経節細胞の突起で網膜膝状シナプスを形成し、視覚野からのニューロン突起を伴う皮質膝状シナプスを形成します。
刺激ピペットを視神経路に配置して網膜癌シナプスを調査するか、視床網状核に皮質癌シナプスを調査します。
記録ピペットをスライスの近くに置きます。顕微鏡を使用して、リレーニューロンを見つけます。
ニューロンに近づく際のピペットの目詰まりを防ぐために、陽圧を加えます。
陰圧に切り替えて細胞膜と密閉を形成し、細胞膜を破裂させて細胞質との連続性を確立します。
刺激ピペットを使用して、投射を誘導して興奮性神経伝達物質を放出する電気パルスを送達し、興奮性神経伝達物質は中継ニューロンシナプス受容体に結合し、記録ピペットで測定されたイオン流を引き起こします。
この手順では、ホウケイ酸ガラスキャピラリーとフィラメントプーラーを使用して記録ピペットを引っ張ります。次に、同じプロトコルを使用して刺激ピペットを引っ張りますが、引っ張った後にチップを少し壊して直径を大きくします。続いて、記録ピペットに細胞内溶液とビオシチンを充填し、刺激ピペットに記録溶液を充填します。
次に、スライスを記録チャンバーに入れ、室温で酸素化記録溶液で継続的に灌流します。IR-DICビデオ顕微鏡を備えた正立顕微鏡でスライスを可視化します。すべてのスライスをチェックし、無傷の視管を表示するスライスを選択します。記録ピペットで細胞にパッチを当てる前に、刺激ピペットをスライスに置きます。
網膜癌シナプスを調べるには、網膜神経節細胞の軸索線維が束ねられている視神経管に刺激ピペットを直接置きます。皮質膝状シナプスを分析するには、背外側膝状核に吻腹側に隣接する視状網状核に刺激電極を配置します。記録ピペットを記録溶液に浸したら、5ミリボルトのステップを適用してピペットの抵抗を監視します。
保持電位をゼロミリボルトに設定し、保持電流がゼロピコアンペアになるようにオフセット電位をキャンセルします。陽圧を加えながら記録ピペットで細胞に近づきます。ピペットが細胞膜に直接接触したら、陽圧を解放し、保持電位をマイナス70ミリボルトに設定します。
次に、わずかな負圧を加えて、細胞膜がガラスピペットに付着し、ギガオームシールが形成されるようにします。ピペットの静電容量を補償し、負圧パルスを印加してセルを開きます。シナプス機能を調査するには、刺激ピペットを介して0.1ミリ秒の電流パルスを印加します。5ミリボルトのステップを印加して、直列抵抗を連続的に監視します。
直列抵抗は、5ミリボルトを誘発電流のピーク振幅で割ることによって推定できます。分析には、直列抵抗が20メガオーム未満のセルのみを使用してください。