0 閲覧数 • 3:05 分 • July 8th, 2025
酸素化されたaCSFを灌流した電気生理学記録チャンバーで固定化されたトランスフェクトされたマウス脳スライスを取ります。
このスライスには、蛍光タンパク質に融合した感光性イオンチャネルを発現する視床ニューロンの軸索末端が含まれています。
蛍光視床ニューロン軸索を視覚化し、錐体ニューロンを選択します。
細胞内溶液中の電極を含む記録ピペットを、わずかな陽圧で選択したニューロンに向かって前進させます。
陽圧は、接触すると神経膜にくぼみを作ります。
圧力を解放して高抵抗シールを形成します。
膜電位を一定の負の値に設定します。
負圧パルスを印加して膜を破断し、全セル構成を実現します。
軸索終末を照らし、光に敏感なチャネルを活性化し、神経膜を脱分極させ、活動電位を誘発します。
興奮性神経伝達物質が放出され、記録されたニューロン上の受容体に結合し、陽イオンの流入を引き起こします。
結果として生じる興奮性シナプス後電流を記録し、ニューロン間の直接シナプス接続を示します。
全細胞パッチクランプ記録を実行するには、海馬複合体を含む脳スライスを記録チャンバーにそっと移します。毎分2〜3ミリリットルのカルボゲンで泡立った摂氏34度のACSFで記録チャンバーを連続的に灌流します。4倍倍の青色LED照明で、関心領域の軸索終末におけるクロノスGFP発現を簡単に調べます。
63倍の没入対物レンズに変更し、フォーカスを調整します。Chronos GFPを発現する軸索を確認し、パッチ記録用の錐体ニューロンを選択します。次に、ピペットにグルコン酸カリウムベースの内部溶液を入れます。ヘッドステージのピペットホルダーに取り付けます。電圧クランプ構成でセルにパッチを当てます。
同定されたニューロンに近づき、ピペットチップを体細胞にそっと押し付けます。陽圧は膜表面にくぼみを生成するはずです。次に、圧力を解放してギガオームシールを作成します。密閉したら、保持電圧をマイナス 65 ミリボルトに設定します。
負圧の鋭いパルスで膜を壊します。クロノスを発現する求心性線維の475ナノメートルLED全場刺激に対する電流または電圧クランプシナプス後応答を記録します。20ヘルツで2ミリ秒の持続時間の10回の刺激で刺激します。
本記事では、マウス脳切片におけるピラミッドニューロンからのホールセルパッチクランプ記録法について詳述します。この手法では、光感受性イオンチャネルを用いてニューロン活性を可視化および刺激します。
本手法により、疾患に関連する神経回路におけるシナプス結合の精密な検証が可能となり、神経経路の機能的な確認を通じてターゲットのバリデーションを支援します。光遺伝学的刺激と電気生理学的読み出しを組み合わせることで、回路メカニズムに関する定量的かつ因果的な証拠が得られ、前臨床段階におけるターゲット選択の予測信頼性が向上します。このアプローチは、化合物スクリーニングの前に直接的なシナプス結合を確立することで、ターゲット仮説のリスクを軽減します。
本手法は、リード化合物の同定に先立って回路レベルでのターゲットバリデーションを行う初期創薬ワークフローに適しており、化合物スクリーニングキャンペーンの前にメカニズム的な知見を提供します。
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最終更新:22 8月 2026